SlideShare une entreprise Scribd logo
1  sur  26
Télécharger pour lire hors ligne
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
METODE SCORING: SATU CARA TERUKUR
MENDAPATKAN BENIH UDANG BERKUALITAS
Oleh:
Lisa Ruliaty
Joko Sumarwan
Retno Handayani
Adi Susanto
KEMENTERIAN KELAUTAN DAN PERIKANAN
DIREKTORAT JENDERAL PERIKANAN BUDIDAYA
BALAI BESAR PERIKANAN BUDIDAYA AIR PAYAU
JEPARA - 2014
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
METODE SCORING: SATU CARA TERUKUR MENDAPATKAN
BENIH UDANG BERKUALITAS
Oleh:
Lisa Ruliaty, Joko Sumarwan, Retno Handayani dan Adi Susanto
ABSTRAK
Beberapa metode seleksi benih telah dilakukan untuk mendapatkan benih udang
berkualitas. Metode scoring yang dikembangkan di BBPBAP Jepara menggabungkan 3
(tiga) cara seleksi benih udang yaitu pengamatan visual, pengamatan daya tahan dan
pengamatan laboratorium dengan memberi nilai (score) pada setiap parameter.
Pengamatan visual terdiri dari; 1) pengamatan populasi dengan 6 parameter, 2)
pengamatan bentuk benih dengan 3 parameter dan 3) pengamatan daya tahan benih
terhadap arus dengan 1 parameter. Pengamatan daya tahan terdiri dari; 1) tes salinitas
dengan 1 parameter, 2) tes formalin dengan 1 parameter. Pengamatan laboratorium
terdiri dari; 1) pengamatan secara mikroskopis dengan 7 parameter dan 2) tes virus
dengan 2 parameter. Persentase hasil yang di dapatkan pada setiap parameter di scoring
dengan kriteria baik (>95 %) di nilai 10, kriteria sedang (70% - 95%) di nilai 5 dan
kriteria jelek (<70 %) di nilai 0. Jumlah nilai parameter pada sub pengamatan
memberikan kriteria yang terukur dari benih udang. Kriteria benih udang yang baik
dengan nilai >15, sedang dengan nilai 10 – 15 dan jelek dengan nilai <10.
Kata Kunci : scoring, benih udang.
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
I. PENDAHULUAN
Keberhasilan dalam kegiatan budidaya tambak tidak terlepas dari kualitas benih yang
ditebar. Tersedianya benih udang tepat jenis, tepat jumlah, tepat waktu, tepat mutu dan tepat
harga tidak hanya mampu menghasilkan produksi maksimal tetapi juga akan menjamin
kontinyuitas produksi di tambak. Namun demikian, benih merupakan masalah utama di
Indonesia karena masih sedikit panti pembenihan (hatchery) yang mau menerapkan sistem yang
terkontrol terhadap kemungkinan adanya kontaminasi atau terjadinya infeksi virus yang
berbahaya (misal : WSSV). Sebagai petambak, benih harus dipilih dengan cermat bahkan harus
melewati beberapa tahapan pengujian. Mengingat arti pentingnya benur, maka langkah awal
pemilihan benur untuk memperoleh kualitas yang prima akan menentukan keberhasilan kegiatan
budidaya di tambak. Penebaran dengan benur yang berkualitas prima berarti salah satu langkah
penting sudah terlaksana dengan baik. Kualitas benur terutama dari panti pembenihan sangat
bergantung oleh manajemen atau penanganan pada saat pemeliharaan larva sampai menjadi post
larva yang siap dijual kepada para petani, demikian pula termasuk bagaimana penanganan saat
panen, cara pengangkutan dan lama waktu pengangkutan benur tersebut sampai ke lokasi
tambak.
Beberapa metode seleksi benih telah dilakukan untuk mendapatkan benih udang
berkualitas. Metode scoring yang dikembangkan di BBPBAP Jepara menggabungkan 3 (tiga)
cara seleksi benih udang yaitu pengamatan visual, pengamatan daya tahan dan pengamatan
laboratorium dengan memberi nilai (score) pada setiap parameter. Pengamatan visual terdiri dari;
1) pengamatan populasi dengan 6 parameter, 2) pengamatan bentuk benih dengan 3 parameter
dan 3) pengamatan daya tahan benih terhadap arus dengan 1 parameter. Pengamatan daya tahan
terdiri dari; 1) tes salinitas dengan 1 parameter, 2) tes formalin dengan 1 parameter. Pengamatan
laboratorium terdiri dari; 1) pengamatan secara mikroskopis dengan 7 parameter dan 2) tes virus
dengan 2 parameter.
II. RUANG LINGKUP
Standar ini menetapkan seleksi benih udang windu mulai dari pengamatan visual benih,
pengamatan daya tahan benih, pengamatan laboratorium serta pemilahan benih skala massal.
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
III. ISTILAH DAN DEFINISI
3.1 Seleksi : Cara untuk memilah sehingga didapatkan hasil yang terbaik
3.2. Benih udang windu (benur) : benih udang yang bentuk morfologinya seperti udang
dewasa serta mempunyai ukuran dan umur tertentu (PL 10 – PL 20) serta sudah mampu
menyesuaikan terhadap lingkungan tambak.
3.3. Metode Scoring : Cara penilaian terhadap kualitas benih yang dilakukan dengan
memberikan nilai atau angka.
3.4. Pengamatan visual : Penilaian yang dilakukan secara pandangan mata terhadap parameter
yang telah di tentukan.
3.5. Pengamatan Daya Tahan Tubuh : Penilaian yang dilakukan dengan melakukan uji stress
terhadap benih.
3.6. Pengamatan laboratorium : Penilaian yang dilakukan terhadap parameter yang telah di
tetapkan dan dilakukan di laboratorium secara spesifik.
IV. PRINSIP UMUM
Prinsip dari seleksi ini adalah melakukan seleksi benih udang windu melalui 3 tahapan
pengamatan dan 1 kegiatan pemilahan dengan melakukan penilaian/scoring untuk mendapatkan
nilai yang lebih objektif terhadap kualitas benih udang windu.
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
V. PROSEDUR KERJA
DIAGRAM ALUR PROSEDUR:
1.
2.
3.
4.
5.
Pengamatan Laboratorium
SPO.03
1. Pengambilan Sampel
2. Pengamatan mikroskopis
3. Tes infeksi Virus
4. Kriteria Benih
Pemilahan Benih secara Massal
SPO.04
1. Persiapan Alat dan Bahan
2. Pemilahan Benih Secara
Massal
Pengamatan Visual Benih
SPO-01
1. Pengamatan Populasi
2. Pengamatan Bentuk tubuh
3. Pengamatan Gerakan melawan Arus.
4. Kriteria Benih
Panti Benih
Pengamatan Daya Tahan Benih
SPO. 02
1. Pengambilan Sampel
2. Tes Kejut Salinitas
3. Tes Formalin
4. Kriteria Benih
Kepuasan Pelanggan
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
5. 1. Pengamatan Visual Benih Udang Windu
5.1.1. DIAGRAM PROSEDUR
5.1.2. METODE KERJA
5.1.2.A Alat dan Bahan
Benih udang windu, waskom warna putih dan beaker glass
5.1.2. B. Prosedur kerja
1. Pengamatan populasi benih di bak:
Benih Siap Tebar
Pengamatan Populasi
Mengamati :
1. Kepadatan Jumlah Populasi (Banyak skor= 10, Sedang skor= 5, sedikit = 0)
2. Berenang aktif melawan arus Gerakan berenang (aktif >95% skor=10,
sedang 70-95% skor=5, di dasar <70% skor=0)
3. Keseragaman ukuran (Tinggi 80-100% skor=10, sedang 70-80% skor=5,
rendah <70%=0).
4. Fototaksis (Positif >95% skor=10, sedang 70-96% skor=5, negatif <70%
skor=0)
5. Respon pakan (Baik >95% skor=10, sedang 70-95% skor=5, jelek<70%
skor=0)
6. Kondisi lingkungan (Baik >95% skor=10, sedang 70-95% skor=5, jelek<70%
skor=0)
Pengamatan Bentuk Benih
Sampel benih 50-100 ekor di tempatkan di Beakerglas
Mengamati :
7. Kelengkapan organ (Tinggi >95% skor=10, sedang 70-95% skor=5, rendah
<70% skor=0)
8. Abnormalitas (Tinggi >95% skor=0, sedang 70-95% skor=5, rendah <70%
skor=10)
9. Warna tubuh (Baik >95% skor=10, sedang 70-95% skor=5, jelek <70%
skor=0) Pengamatan daya tahan benih terhadap arus
Sampel benih 100 – 300 ekor di tempatkan di wadah baskom putih
Mengamati :
10. Daya tahan benih terhadap arus air (baik >95% skor 10, sedang 70-95%
skor=5, rendah <70% skor=0)Menjumlah skor dan membagi dengan jumlah parameter:
Kriteria Benih, dengan nilai :
Baik = >90
Sedang = 50 - 90
Jelek = < 50
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
 Jumlah populasi kepadatan populasi
Dilakukan dengan melihat keliling bak saat aerasi dimatikan sementara (sekitar 2
menit), kemudian memperkirakan jumlah benih total. Bila jumlah populasi benih di
bak terlihat banyak maka dinilai dengan skor= 10, populasi Sedang skor= 5, populasi
sedikit = 0
 Gerakan berenang. Berenang aktif melawan arus. Banyak mmenempel di dinding
Pengamatan gerakan benih di bak untuk melihat langsung gerakan benih di bak pada
umumnya gesit atau tidak. Benih yang baik gerakannya lurus menantang arus aerasi.
Benih dengan gerakan berenang aktif >95% mendapatkan skor=10, sedang 70-95%
skor=5, di dasar <70% skor=0.
 Keseragaman Ukuran
Benih dengan keseragaman ukuran yang Tinggi 80-100% skor=10, sedang 70-80%
skor=5, rendah <70%=0.
 Fototaksis
Pengamatan sifat fototaksis benih dilakukan dengan melihat pola populasi benih di
bak. Benih yang baik akan cenderung banyak berkumpul di tempat arah datangnya
cahaya. Benih yang Positif >95% skor=10, sedang 70-96% skor=5, negatif <70%
skor=0
 Respon terhadap Pakan
Pengamatan respon benih terhadap pakan dilakukan dengan menebar pakan buatan
yang berbentuk tepung dan kering pada permukaan air. Benih yang responsif
terhadap pakan, maka ketika ditebar pakan, benih akan banyak naik berkumpul ke
arah pakan di tebar. Nilai terhadap respon terhadap pakan Baik >95% skor=10,
sedang 70-95% skor=5, jelek<70% skor=0
 Kondisi Lingkungan Media Pemeliharaan. Keadaan plankton mati atau tidak mati.
Kondisi lingkungan benih yang baik ditandai dengan kondisi air media yang
berwarna plankton, masir dan tidak berbau. Pada pengamatan juga perlu diperhatikan
ada tidaknya bangkai benih yang melayang-layang di kolom air. Jika terdapat
bangkai benih di kolom air, ini pertanda benih baru dalam keadaan bermasalah,
sehingga harus dihindari. Kondisi lingkungan Baik >95% di beri skor=10, sedang
70-95% skor=5, jelek<70% skor=0
2. Pengamatan Bentuk Tubuh Benih
Pengamatan Bentuk tubuh benih udang windu dilakukan dengan cara mengambil
sampel benih sebanyak 50 – 100 ekor pada tiap bak dan di tempatkan ke dalam beaker
glas untuk memudahkan di dalam pengamatan. Pengamatan bentuk tubuh benih antara
lain :
 Kelengkapan Organ
Kelengkapan organ Tinggi >95% skor=10, sedang 70-95% skor=5, rendah <70%
skor=0.
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
 Abnormalitas
Abnormalitas benih dapat dilihat dari bentuk tubuh, terutama pada bagian ujung
rostrum dan ekor. Benih yang mengalami banyak gangguan dalam pertumbuhannya
baik faktor nutrisi maupun lingkungan sering menyebabkan
ketidaknormalan/abnormalitas. Benih dengan abnormalitas Tinggi >95% skor=0,
sedang 70-95% skor=5, rendah <70% skor=10.
 Warna Benih
Warna benih yang baik akan bening transparan, tidak berwarna pucat susu pada
punggung dan tidak berwarna putih perak pada bola matanya. Baik >95% skor=10,
sedang 70-95% skor=5, jelek <70% skor=0.
3. Pengamatan Gerakan Melawan Arus
Pengamatan daya tahan benih terhadap arus dilakukan dengan mengambil 100 –
300 ekor benih dari tiap bak. Benih kemudian di tempatkan ke dalam baskom berwarna
putih dengan volume air 2-5 liter. Benih yang baik, jika diputar air dalam baskom akan
kelihatan melawan arus. Jumlah benih yang melawan arus sebanyak >95% akan di nilai
baik dengan skor = 10, sedang 70 – 95% dengan skor 5 dan rendah <70% dengan skor =
0.
5.1.2.C. Kriteria Benih
Nilai pengamatan terhadap seluruh parameter di catat pada Form 01. Jumlah skor yang
di dapatkan pada setiap pengamatan kemudian di jumlahkan. Hasil tersebut merupakan
Kriteria Benih, dengan nilai : Baik = >90, Sedang = 50 – 90 dan Jelek = < 50.
5.2. Pengamatan Daya Tahan Tubuh Benih Udang Windu
5.2.1. DIAGRAM PROSEDUR
Benih Siap Tebar (PL-12/>PL-20
1. Tes Salinitas
Pengambilan sampel benih PL-12/>PL-20
secara acak dari tiap bak sebanyak 300
ekor untuk 1 ulangan (min 3 ulangan)
2. Tes Formalin
Pengambilan sampel benih PL-12/>PL-20
secara acak dari tiap bak sebanyak 300
ekor untuk 1 ulangan (min 3 ulangan)
Benih di tempatkan di baskom dengan
perbandingan air media pemeliharaan : air
tawar 0 ppt (1:1).
Benih di tempatkan di baskom volume 5 L
dengan salinitas media sama dengan di bak
pemeliharaan dan di beri 1 titik aerasi.
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
5.2.2. METODE KERJA
5.2.2. A. Alat dan Bahan
o Baskom volume 5 liter, plastik, seser, alat hitung, refraktometer, gayung
o Air media pemeliharaan, air tawar, formalin 100%
5.2.2.B. Prosedur kerja
1. Tes Salinitas
 Mempersiapkan bahan dan peralatan yang akan digunakan sesuai dengan kebutuhan
untuk uji ketahanan terhadap salinitas
 Mempersiapkan tempat dan personil yang akan melaksanakan uji
 Mengambil benih dari bak pemeliharaan dengan seser secara acak dan dimasukan
ke dalam ember penampung
 Mengambil air pemeliharaan dengan gayung, ditampung dalam ember plastik dan
mencampur dengan air tawar (0 ppt) dengan jumlah yang sama dengan air media
yang diambil. Perbandingan air media dan air tawar adalah 1:1.
 Memasukkan campuran air laut dan air tawar dalam ember yang akan digunakan
sebagai tempat uji kemudian dicatat kadar garamnya
 Memasukkan benih ke dalam media uji sebanyak 300 ekor tiap ember dan
pengamatan jam ke 0 dimulai. Pengamatan dilakukan selama 3 jam
 Pada 1 jam pertama diamati kondisi benih, dan benih yang mati diambil dari tempat
uji
 Pengamatan pada jam ke-2 dilakukan seperti pada jam pertama
Cek SR benih pada 1 jam setelah
perendaman
Ditambahkan Formalin 100% dosis 100
ppm (0,1 ml/l) utk PL-12 dan dosis 200
ppm (0,2 ml/L) utk >PL-20
Cek SR benih pada 2 jam setelah
perendaman
Cek SR benih pada 3 jam setelah
perendamanHitung SR benih pada tiap ulangan dan di
bagi sesuai jumlah ulangan.
Skor Benih:
SR >95%, skor = 10
SR 75-90%, skor = 5
SR < 75% = 0
Rendam benih udang windu selama ½ jam
untuk PL-12 dan selama 1 jam untuk >PL-
20.
Hitung SR benih pada tiap ulangan dan di
bagi sesuai jumlah ulangan setelah
perendaman sesuai dengan waktu.
Skor Benih :
SR >95%, skor = 10
SR 75-95%, skor = 5
SR < 75%, skor = 0
Jumlahkan skor pada kedua tes, Kriteria Benih:
Bagus nilai >15, Sedang 10-15, Jelek <10
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
 Pada jam ke-3 setelah benih yang mati dipisahkan, dihitung benih yang hidup pada
setiap wadah uji
 Dihitung kelangsungan hidup pada setiap wadah uji
 Kelangsungan hidup rata – rata adalah penambahan angka pada setiap wadah uji
dan dibagi dengan jumlah wadah
 SR tersebut kemudian di nilai dengan criteria : Skor Benih: SR >95% skor = 10,
SR 75-95% skor = 5, SR < 75% skor = 0
2. Tes Formalin
 Mempersiapkan bahan dan peralatan yang akan digunakan sesuai dengan kebutuhan
untuk uji ketahanan terhadap formalin
 Mempersiapkan tempat dan personil yang akan melaksanakan uji
 Mengambil benih dari bak pemeliharaan dengan menyeser secara acak dan
dimasukan ke dalam baskom penampung kapasitas volume 5 liter.
 Mengambil air pemeliharaan dengan gayung, ditampung dalam ember plastik dan
menambahkan formalin 100% hingga konsentrasi dalam media uji 100 ppm (0,1
ml/l) untuk PL-12 dan 200 ppm (0,2 ml/l) untuk benih >PL-20
 Memasukkan benih ke dalam media uji sebanyak 300 ekor tiap ember dan
pengamatan menit ke 0 dimulai. Pengamatan dilakukan selama 30 menit untuk PL-
12 dan satu jam untuk >PL-20.
 Pada menit ke-30 setelah benih yang mati dipisahkan, dihitung benih yang hidup
pada setiap wadah uji
 Dihitung kelangsungan hidup pada setiap wadah uji
 Kelangsungan hidup rata – rata adalah penambahan angka pada setiap wadah uji
dan dibagi dengan jumlah wadah.
 SR tersebut kemudian di nilai dengan criteria : Skor Benih: SR >95% skor = 10,
SR 75-95% skor = 5, SR < 75% skor = 0
5.2.2.C. Kriteria Benih
Nilai pengamatan terhadap seluruh parameter di catat pada Form 02. Jumlah skor yang
di dapatkan pada tes salinitas dan tes formalin kemudian di jumlahkan. Hasil tersebut
merupakan Kriteria Benih, dengan nilai : Baik = >15, Sedang = 10-15 dan Jelek = < 10.
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
5.3. Pengamatan Laboratorium Benih Udang Windu
5.3.1. DIAGRAM PROSEDUR
I. Pengambilan Sampel
II. Pengamatan benih udang windu secara mikroskopis
Pengambilan Sampel Benih Udang Windu
(PL12)
Diambil dari 5 titik pengambilan sampel:
• 4 titik pada keempat sudut bak pemeliharaan
• 1 titik pada bagian tengah bak pemeliharaan
• Masing-masing sebanyak 500 ekor
Masukkan PL ke dalam bak bulat berkapasitas 250 L
Treatment dengan formalin 200 ppm selama 30 menit
Diambil 150 ekor PL yang paling lemah
Uji Virus dengan Metode PCR/Real-Time PCR:
• WSSV
• IMNV
Ambil 20 ekor benih untuk pengamatan
secara mikroskopis
Pengamatan Benih Udang Windu
Secara Mikroskopis
Kondisi Hepatopankreas (Vakuola lemak):
• Tinggi (> 90%); score: 10
• Sedang (70 – 90%); score: 5
• Sedikit (<70%); score: 0
Kondisi Usus/Swollen Hind Gut (SHG):
• Penuh (> 95%), 0% SHG; score: 10
• Sedang (70 – 95%), 1-10% SHG; score: 5
• Kosong (<70%), >10% SHG; score: 0
Mengambil 20 ekor sampel PL 12
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
III. Tes Virus
Nekrosis:
• Tidak ada (0%); score: 10
• Sedang (<15%); score: 5
• Banyak/berat (>15%); score: 0
Deformity:
• Tidak ada (0%); score: 10
• Sedang (<10%); score: 5
• Banyak/berat (>10%); score: 0
Epibiont Fouling:
• Tidak ada (0%); score: 10
• Sedang (<15%); score: 5
• Banyak/berat (>15%); score: 0
Bolitas:
• Tidak ada; score: 10
• 1-3; score: 5
• >3; score: 0
Baculovirus (preparat squash, pewarnaan dengan
malachit green):
• Tidak ada (0%); score: 10
• Sedang (<10%); score: 5
• Banyak/berat (>10%); score: 0
Total Score
Pengambilan Sampel PL 12 Sebanyak 150 ekor
(Sesuai SPO Pengambilan Sampel)
Melakukan Ekstraksi DNA atau RNA dari sampel PL 12
Melakukan Pencatatan Hasil Uji Virus:
• WSSV negatif; Score: 10
• IMNV negatif; Score: 10
Melakukan Uji Virus dengan Metode PCR/
Real-Time PCR:
• WSSV
• IMNV
Total Score digabung dengan Score Hasil Pengamatan
Secara Visual dan Mikroskopis
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
5.3.2.A. PENGAMBILAN SAMPEL
METODE KERJA
1. Alat dan Bahan
a. Botol sampel
b. Seser
c. Ember plastik
d. Bak bulat berkapasitas 250 L
e. Beaker glass
f. Benih udang windu (PL 12)
g. Formalin 100%
2.Prosedur kerja
a. Ambil benih udang windu dari bak pemeliharaan dengan menggunakan seser di
5 titik pengambilan sampel, yaitu 4 titik pada keempat sudut bak pemeliharaan
dan 1 titik pada bagian tengah bak pemeliharaan, masing-masing sebanyak 500
ekor;
b. Masukkan benih udang tersebut ke dalam bak bulat yang telah berisi air laut
sesuai dengan yang terdapat di dalam bak pemeliharaan dan beri aerasi;
c. Ambil 20 ekor benih udang windu untuk pemeriksaan secara mikroskopis;
d. Masukkan formalin dengan dosis 200 ppm dan biarkan selama 30 menit;
e. Ambil aerasi dan putar air dengan tangan;
f. Ambil benih udang dengan kondisi yang paling lemah, yaitu benih udang yang
mengumpul di tengah. Sampel benih udang diambil sebanyak 150 ekor
(berdasarkan Tabel Amos yang terdapat di OIE, 2009).
6.3.2.B. PEMERIKSAAN BENIH UDANG WINDU SECARA MIKROSKOPIS
METODE KERJA
1. Alat dan Bahan
a. Beaker glass
b. Obyek glass
c. Pinset
d. Mikroskop
e. Akuades
f. Malachit green
g. Benih udang windu (PL 12)
2. Prosedur kerja
a. Ambil benih udang windu sebanyak 20 ekor sesuai SOP pengambilan sampel;
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
b. Amati hepatopankreas dan usus masing-masing benih udang di bawah
mikroskop (perbesaran 40x). Jika 90% atau lebih dari benih udang mempunyai
vakuola lemak yang banyak, usus terisi penuh dan tidak ada swollen hind gut
(SHG), beri skor 10. Jika 70 – 90% benih udang mempunyai vakuola lemak dan
atau usus cukup penuh atau dengan sedikit SHG, beri skor 5. Jika kurang dari
70% usus benih udang penuh dan atau usus kosong atau ada lebih dari 10%
SHG, beri skor 0;
c. Amati adanya nekrosis yang merupakan indikasi terjadinya kanibalisme atau
infeksi bakteri, pada tubuh dan anggota tubuh (antenna, rostrum, kaki renang,
kaki jalan, dan ekor) benih udang. Jika tidak ada nekrosis, beri skor 10. Jika
<15% benih udang menunjukkan sedikit nekrosis, beri skor 5. Jika >15% benih
udang menunjukkan nekrosis, yang mengindikasikan adanya infeksi berat, beri
skor 0;
d. Amati cacat (deformity) pada anggota tubuh benih udang dan atau rostrum,
mungkin bengkok, rusak, atau hilang, bagian ekor (abdomen segmen ke-6)
mungkin bengkok, atau saluran pencernaan mungkin berakhir sebelum anus. Jika
cacat tidak teramati, beri skor 10. Jika <10% teramati adanya cacat, beri skor 5.
Jika >10% teramati adanya cacat, beri skor 0;
e. Amati adanya organisme penempel (epibiont fouling), seperti bakteri, jamur atau
protozoa pada eksoskeleton kepala maupun abdomen, dan insang. Jika tidak ada
organisme penempel, beri skor 10. Jika <15% teramati adanya organisme
penempel sementara atau permanen, beri skor 5. Jika >15% teramati organisme
penempel permanen, beri skor 0;
f. Amati ‘bolitas’ (lepasnya sel epitel dari dinding intestinum dan hepatopankreas
yang teramati sebagai bulatan di dalam saluran pencernaan). Jika tidak ada
bolitas, beri skor 10. Jika ada 1 – 3 bolitas, beri skor 5. Jika ada lebih dari 3
bolitas, beri skor 0.
g. Buat preparat dari benih udang utuh atau gerusan dan warnai dengan malachite
green. Amati adanya benda oklusi MBV yang berwarna gelap dan berbentuk
tetrahedral. Jika tidak teramati benda oklusi MBV, beri skor 10. Jika <10%
teramati benda oklusi MBV, beri skor 5. Jika >10% teramati benda oklusi MBV,
beri skor 0.
h. Hitung total skor. Benih udang windu yang berkualitas bagus memiliki total skor
> 50, benih udang windu yang berkualitas sedang memiliki total skor 35 – 50,
sedang benih udang windu berkualitas jelek memiliki skor < 35.
5.3.2. C. UJI VIRUS
METODE KERJA
1. Alat dan Bahan
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
a. Botol sampel
b. Peralatan deteksi virus dengan metode PCR atau Real-Time PCR
c. Bahan deteksi virus dengan metode PCR atau Real-Time PCR
d. Benih udang windu (PL 12)
2. Prosedur kerja
a. Ambil benih udang windu sebanyak 150 ekor sesuai SOP pengambilan sampel;
b. Lakukan deteksi WSSV dengan menggunakan metode PCR (OIE, 2009) atau
Real-Time PCR (Lightner, 2001) dan deteksi IMNV dengan metode RT-PCR
(OIE, 2009) atau Real-Time PCR (OIE, 2009);
c. Beri skor 10 bila hasil deteksi negatif WSSV dan beri skor 10 bila hasil deteksi
negatif IMNV. Beri skor 0 bila terdeteksi positif WSSV dan beri skor 0 bila
terdeteksi positif IMNV.
d. Hitung total skor. Benih udang windu yang berkualitas bagus memiliki total skor
20 dan benih udang windu berkualitas jelek memiliki skor ≤10.
6.3.3. Interpretasi hasil
1. Penghitungan total skor pada pengamatan secara mikroskopis
a) benur yang berkualitas baik memiliki total skor > 50;
b) benur yang berkualitas sedang memiliki total skor 35 – 50;
c) benur berkualitas jelek memiliki skor < 35.
2. Penghitungan total skor pada pemeriksaan molekuler
a) benur berkualitas baik memiliki total skor 20
b) benur berkualitas jelek memiliki skor ≤10.
3. Penilaian akhir
a) benur dinyatakan layak tebar bila uji WSSV, IMNV negatif
b) memiliki skor total pengamatan mikroskopis >50
5.4. Pemilahan Benih Udang Windu Secara Massal
6.4.1. DIAGRAM PROSEDUR
Persiapan Alat dan Bahan
Memasukan Benih (PL-12/ >PL-20)
- Kepadatan 500 ekor/L
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
6.4.2. METODE KERJA
1. Alat dan Bahan
 Benih udang windu umur PL-12/ >PL-20
 Larutan Formaldehyde 37% (Formalin 100%).
 Media air laut steril.
 Gelas Ukur
 Bak fiber bundar untuk penampungan benih.
 Stop Watch
 Selang sifon
 Baskom / ember
 Aerasi
2. Prosedur kerja
2.1. Persiapan Alat dan Bahan
 Benur yang dilakukan pemilahan merupakan benih umur PL-12 yang di teruskan
pemeliharaannya ke segmen pendederan maupun >PL-20 yang siap di tebarkan ke
pembesaran.
 Sebelum benih di keluarkan dari bak pemeliharaan, di lakukan persiapan alat dan
bahan untuk kegiatan pemilahan secara massal.
 Bak penampungan bentuk bundar telah di pasang 1-2 titik aerasi, dan di isi air
media steril dengan salinitas yang sama dengan di bak pemeliharaan. Data
salinitas tercatat pada Form 04.
Membuang benih yang tidak sehat
- Matikan aerasi
- Putar air media
- Lakukan penyiponan
Menambahkan Larutan Formalin 100% (Formaldehyde 37%)
- Dosis 100/200 ppm (0,1/0,2 ml/L)
- Durasi perendaman ½ /1 jam
Pindahkan benih sehat ke media baru
Benih di tebar di pendederan/
siap di kemas
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
 Larutan Formaldehyda 37%, gelas ukur, stop watch, baskom serta selang sifon di
tempatkan di dekat bak penampungan benih. Jumlah Formaldehyda 36% yang di
pergunakan di catat pada Form 04.
2.2. Pemilahan Benih
 Benih yang telah di keluarkan dari bak pemeliharaan, di tampung di bak
penampungan dengan kepadatan 500 ekor/L.
 Larutan Formaldehyda 36% di masukkan ke bak penampungan dengan dosis 100
ppm untuk PL-12 dan dosis 200 ppm untuk >PL-20.
 Perendaman benih udang windu dengan Formaldehyda 36% dilakukan selama ½
jam untuk PL-12 dan untuk >PL-20 dilakukan selama 1 jam setelah
Formaldehyda 36% dimasukkan.
 Sekitar 5 – 10 menit sebelum batas waktu perendaman, aerasi di keluarkan dari
bak penampungan dan dilakukan pemutaran air media menggunakan tangan.
 Setelah batas waktu, benih udang windu yang tidak sehat akan berada di dasar
bak. Benih tidak sehat tersebut kemudian di sifon menggunakan selang sifon dan
di tampung pada baskom. Benih tersebut kemudian di hitung dan di catat
hasilnya pada Form 04. Benih tidak sehat kemudian di buang pada UPL (Unit
Pembuang Limbah).
 Benih udang windu yang sehat kemudian di pindahkan ke bak penampungan lain
yang telah di persiapkan dan siap di pindah ke pendederan atau di kemas untuk
pembesaran setelah 15 – 30 menit.
DAFTAR PUSTAKA
Anonymous, 2007. Improving Penaeus Monodon Hatchery Practices. Manual based on
experience in India. Food and Agriculture Organization of The united Nations, Rome,
2007.
SNI : 01- 6143 – 1999
SNI : 01- 6144 – 1999
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
Lampiran A
(informatif)
FORM 01.
PENGAMATAN VISUAL BENIH UDANG WINDU
Nama Unit Pembenihan :
Alamat Unti Pembenihan :
Kode Bak :
Tanggal Pengamatan :
No Uraian Kriteria Skor
I. Pengamatan Populasi
1. Jumlah populasi
Banyak skor= 10, Sedang skor=
5, sedikit = 0
2. Gerakan berenang
aktif >95% skor=10, sedang 70-
95% skor=5, di dasar <70%
skor=0
3. Keseragaman ukuran
Tinggi 80-100% skor=10, sedang
70-80% skor=5, rendah <70%=0
4. Fototaksis
Positif >95% skor=10, sedang
70-96% skor=5, negatif <70%
skor=0
5. Respon terhadap pakan
Baik >95% skor=10, sedang 70-
95% skor=5, jelek<70% skor=0
6. Kondisi Lingkungan
Baik >95% skor=10, sedang 70-
95% skor=5, jelek<70% skor=0
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
II Bentuk Tubuh
1. Kelengkapan organ
Tinggi >95% skor=10, sedang
70-95% skor=5, rendah <70%
skor=0
2. Abnormalitas
Tinggi >95% skor=0, sedang 70-
95% skor=5, rendah <70%
skor=10
3. Warna Tubuh
Baik >95% skor=10, sedang 70-
95% skor=5, jelek <70% skor=0
III
Daya Tahan Terhadap Arus
baik >95% skor 10, sedang 70-
95% skor=5, rendah <70%
skor=0
Jumah Skor :
Kriteria Benih, dengan nilai : Baik = >90, Sedang = 50 – 90 dan Jelek = < 50.
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
Lampiran B
(informatif)
FORM 02
DATA HASIL PENGAMATAN DAYA TAHAN BENIH UDANG WINDU TERHADAP
TES SALINITAS DAN TES FORMALIN
Tanggal Pengamatan :
Kode Bak :
Tes Salinitas* Tes Formalin*
Waktu 1 2 3 Rata-
rata
1 2 3 Rata-
rata
1 jam
2 jam
3 jam
Rata-rata:
Kriteria Benih:
Keterangan : *Skor Benih: SR >95% skor = 10, SR 75-95% skor = 5, SR < 75% skor = 0
**Kriteria Benih :Baik = >15, Sedang = 10-15 dan Jelek = < 10.
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
Lampiran C
(informatif)
Form 03.
PENGAMBILAN SAMPEL
Tanggal :
Lokasi pengambilan :
Alamat :
Jenis sampel :
Nomor registrasi :
Jumlah sampel :
Kondisi sampel :
Kode sampel:
No. Jenis sampel Kode sampel Kode Lab
Petugas Pengambil sampel
(………………………………..)
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
Lampiran D
(informatif)
Form 04.
HASIL PEMERIKSAAN BENIH UDANG
SECARA MIKROSKOPIS
Tanggal :
Asal sampel :
Alamat :
Jenis sampel :
Nomor registrasi :
Jumlah sampel :
Kondisi sampel :
Hasil pemeriksaan:
No. Jenis pengamatan Kriteria Skor
1.
Hepatopankreas (vakuola lemak) dan
usus (isi dan swollen hind gut (SHG)
 Tinggi (> 90%), skor: 10
 Sedang (70 – 90%), skor: 5
 Sedikit (<70%), skor: 0
2.
3.
4.
5.
6.
Manajer Teknis Laboratorium
(………………………………..)
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
Lampiran E
(informatif)
Form 05
LAPORAN HASIL UJI
Nomor:
Perihal : Hasil diagnosis biologi molekuler
Tanggal Penerimaan :
Tanggal pengujian :
Asal sampel :
Alamat :
Jenis sampel :
Nomor registrasi :
Jumlah sampel :
Kondisi sampel :
Metode :
Hasil:
No. Nama/jenis Kode sampel Kode Lab WSSV IMNV
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
Lampiran F
(informatif)
FORM 06
DATA HASIL PEMILAHAN BENIH UDANG WINDU SECARA MASSAL
Tanggal Kode Bak Salinitas Media
(ppt)
Jumlah Formaldehyda
36% (ml)
Jumlah benih tidak
sehat (ekor)

Contenu connexe

Tendances

PERSIAPAN WADAH DAN MEDIA - BUDIDAYA UDANG VANNAMEI DENGAN TERPAL HDPE
PERSIAPAN WADAH DAN MEDIA - BUDIDAYA UDANG VANNAMEI DENGAN TERPAL HDPEPERSIAPAN WADAH DAN MEDIA - BUDIDAYA UDANG VANNAMEI DENGAN TERPAL HDPE
PERSIAPAN WADAH DAN MEDIA - BUDIDAYA UDANG VANNAMEI DENGAN TERPAL HDPEMustain Adinugroho
 
Presentasi pembesaran ikan nila
Presentasi pembesaran ikan nilaPresentasi pembesaran ikan nila
Presentasi pembesaran ikan nilaIbnu Sahidhir
 
PENGELOLAAN KUALITAS AIR PADA BUDIDAYA UDANG VANNAMEI
PENGELOLAAN KUALITAS AIR PADA BUDIDAYA UDANG VANNAMEIPENGELOLAAN KUALITAS AIR PADA BUDIDAYA UDANG VANNAMEI
PENGELOLAAN KUALITAS AIR PADA BUDIDAYA UDANG VANNAMEIMustain Adinugroho
 
Budidaya udang vannamei
Budidaya udang vannameiBudidaya udang vannamei
Budidaya udang vannameiHanapi Suteja
 
Budidaya pakan alami
Budidaya pakan alamiBudidaya pakan alami
Budidaya pakan alamiSawargi Ppmkp
 
Bioper chapter 5 Fekunditas
Bioper chapter 5 FekunditasBioper chapter 5 Fekunditas
Bioper chapter 5 FekunditasAlfani Kurniawan
 
SPO pembesaran litopenaeus vannamei
SPO pembesaran litopenaeus vannameiSPO pembesaran litopenaeus vannamei
SPO pembesaran litopenaeus vannameiInNo JustforYou
 
Aspek pemeliharaan dan seleksi induk pada ikan bandeng (chanos chanos)
Aspek pemeliharaan dan seleksi induk pada  ikan bandeng (chanos chanos)Aspek pemeliharaan dan seleksi induk pada  ikan bandeng (chanos chanos)
Aspek pemeliharaan dan seleksi induk pada ikan bandeng (chanos chanos)Ari Panggih Nugroho
 
TEKNIK PEMIJAHAN IKAN MAS || Vian66
TEKNIK PEMIJAHAN IKAN MAS || Vian66TEKNIK PEMIJAHAN IKAN MAS || Vian66
TEKNIK PEMIJAHAN IKAN MAS || Vian66AlvianusMadika
 
Fitoplankton (spirulina sp.)
Fitoplankton (spirulina sp.)Fitoplankton (spirulina sp.)
Fitoplankton (spirulina sp.)Siswanto Dayakx
 
Hama dan penyakit ikan
Hama dan penyakit ikanHama dan penyakit ikan
Hama dan penyakit ikanLiswan Suhly
 
PENANGANAN HAMA DAN PENYAKIT PADA BUDIDAYA UDANG VANNAMEI
PENANGANAN HAMA DAN PENYAKIT PADA BUDIDAYA UDANG VANNAMEIPENANGANAN HAMA DAN PENYAKIT PADA BUDIDAYA UDANG VANNAMEI
PENANGANAN HAMA DAN PENYAKIT PADA BUDIDAYA UDANG VANNAMEIMustain Adinugroho
 

Tendances (20)

Lokasi desain-tambak
Lokasi desain-tambakLokasi desain-tambak
Lokasi desain-tambak
 
PERSIAPAN WADAH DAN MEDIA - BUDIDAYA UDANG VANNAMEI DENGAN TERPAL HDPE
PERSIAPAN WADAH DAN MEDIA - BUDIDAYA UDANG VANNAMEI DENGAN TERPAL HDPEPERSIAPAN WADAH DAN MEDIA - BUDIDAYA UDANG VANNAMEI DENGAN TERPAL HDPE
PERSIAPAN WADAH DAN MEDIA - BUDIDAYA UDANG VANNAMEI DENGAN TERPAL HDPE
 
Presentasi pembesaran ikan nila
Presentasi pembesaran ikan nilaPresentasi pembesaran ikan nila
Presentasi pembesaran ikan nila
 
PENGELOLAAN KUALITAS AIR PADA BUDIDAYA UDANG VANNAMEI
PENGELOLAAN KUALITAS AIR PADA BUDIDAYA UDANG VANNAMEIPENGELOLAAN KUALITAS AIR PADA BUDIDAYA UDANG VANNAMEI
PENGELOLAAN KUALITAS AIR PADA BUDIDAYA UDANG VANNAMEI
 
Budidaya udang vannamei
Budidaya udang vannameiBudidaya udang vannamei
Budidaya udang vannamei
 
Tingkat kematangan gonad ikan bilih (Mystacoleucus padangensis)
Tingkat kematangan gonad ikan bilih (Mystacoleucus padangensis)Tingkat kematangan gonad ikan bilih (Mystacoleucus padangensis)
Tingkat kematangan gonad ikan bilih (Mystacoleucus padangensis)
 
Budidaya pakan alami
Budidaya pakan alamiBudidaya pakan alami
Budidaya pakan alami
 
7. teknologi biofloc
7. teknologi biofloc7. teknologi biofloc
7. teknologi biofloc
 
Manajemen induk
Manajemen indukManajemen induk
Manajemen induk
 
KUALITAS AIR UNTUK BUDIDAYA IKAN LAUT
KUALITAS AIR UNTUK BUDIDAYA IKAN LAUTKUALITAS AIR UNTUK BUDIDAYA IKAN LAUT
KUALITAS AIR UNTUK BUDIDAYA IKAN LAUT
 
Sistem perikanan budidaya
Sistem perikanan budidayaSistem perikanan budidaya
Sistem perikanan budidaya
 
Bioper chapter 5 Fekunditas
Bioper chapter 5 FekunditasBioper chapter 5 Fekunditas
Bioper chapter 5 Fekunditas
 
Biologi Perikanan Kebiasaan Makan Ikan
Biologi Perikanan Kebiasaan Makan IkanBiologi Perikanan Kebiasaan Makan Ikan
Biologi Perikanan Kebiasaan Makan Ikan
 
SPO pembesaran litopenaeus vannamei
SPO pembesaran litopenaeus vannameiSPO pembesaran litopenaeus vannamei
SPO pembesaran litopenaeus vannamei
 
Aspek pemeliharaan dan seleksi induk pada ikan bandeng (chanos chanos)
Aspek pemeliharaan dan seleksi induk pada  ikan bandeng (chanos chanos)Aspek pemeliharaan dan seleksi induk pada  ikan bandeng (chanos chanos)
Aspek pemeliharaan dan seleksi induk pada ikan bandeng (chanos chanos)
 
TEKNIK PEMIJAHAN IKAN MAS || Vian66
TEKNIK PEMIJAHAN IKAN MAS || Vian66TEKNIK PEMIJAHAN IKAN MAS || Vian66
TEKNIK PEMIJAHAN IKAN MAS || Vian66
 
Surimi dtpi
Surimi dtpiSurimi dtpi
Surimi dtpi
 
Fitoplankton (spirulina sp.)
Fitoplankton (spirulina sp.)Fitoplankton (spirulina sp.)
Fitoplankton (spirulina sp.)
 
Hama dan penyakit ikan
Hama dan penyakit ikanHama dan penyakit ikan
Hama dan penyakit ikan
 
PENANGANAN HAMA DAN PENYAKIT PADA BUDIDAYA UDANG VANNAMEI
PENANGANAN HAMA DAN PENYAKIT PADA BUDIDAYA UDANG VANNAMEIPENANGANAN HAMA DAN PENYAKIT PADA BUDIDAYA UDANG VANNAMEI
PENANGANAN HAMA DAN PENYAKIT PADA BUDIDAYA UDANG VANNAMEI
 

Similaire à Metode scoring pada seleksi benih udang windu

PENJAMINAN MUTU PEM TELUR CACING KELOMPOK 1.pptx
PENJAMINAN MUTU PEM TELUR CACING KELOMPOK 1.pptxPENJAMINAN MUTU PEM TELUR CACING KELOMPOK 1.pptx
PENJAMINAN MUTU PEM TELUR CACING KELOMPOK 1.pptxRositNugroho1
 
contoh laporan uji benih
contoh laporan uji benihcontoh laporan uji benih
contoh laporan uji benihRiva Anggraeni
 
Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing
 Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing  Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing
Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing pjj_kemenkes
 
Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing
 Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing  Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing
Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing pjj_kemenkes
 
PENCEGAHAN INFEKSI VIRUS WHITE SPOT SYNDROME VIRUS (WSSV) PADA UDANG WINDU Pe...
PENCEGAHAN INFEKSI VIRUS WHITE SPOT SYNDROME VIRUS (WSSV) PADA UDANG WINDU Pe...PENCEGAHAN INFEKSI VIRUS WHITE SPOT SYNDROME VIRUS (WSSV) PADA UDANG WINDU Pe...
PENCEGAHAN INFEKSI VIRUS WHITE SPOT SYNDROME VIRUS (WSSV) PADA UDANG WINDU Pe...Repository Ipb
 
Teknik pembenihan ikan I
Teknik pembenihan ikan ITeknik pembenihan ikan I
Teknik pembenihan ikan IIbnu Sahidhir
 
Laporan Magang Kantor kesehatan pelabuhan kelas 1 surabya
Laporan Magang Kantor kesehatan pelabuhan kelas 1 surabyaLaporan Magang Kantor kesehatan pelabuhan kelas 1 surabya
Laporan Magang Kantor kesehatan pelabuhan kelas 1 surabyaAzmi Umi A
 
merekayasa-teknik-pembesaran-ikan-ramah-lingkungan_compress.pptx
merekayasa-teknik-pembesaran-ikan-ramah-lingkungan_compress.pptxmerekayasa-teknik-pembesaran-ikan-ramah-lingkungan_compress.pptx
merekayasa-teknik-pembesaran-ikan-ramah-lingkungan_compress.pptxMansurJaya
 
Laporan praktik penetasan rps kelas xi.1 atu 06112021
Laporan praktik penetasan rps kelas xi.1 atu 06112021Laporan praktik penetasan rps kelas xi.1 atu 06112021
Laporan praktik penetasan rps kelas xi.1 atu 06112021DediKusmana2
 
Mamat presentation srikandi
Mamat presentation srikandiMamat presentation srikandi
Mamat presentation srikandiSamuel Daganzha
 
metode-farmakologi-toksikologi.pptx
metode-farmakologi-toksikologi.pptxmetode-farmakologi-toksikologi.pptx
metode-farmakologi-toksikologi.pptxkepkrsuislamklaten
 
16588 40402-1-sm (1)-dikonversi
16588 40402-1-sm (1)-dikonversi16588 40402-1-sm (1)-dikonversi
16588 40402-1-sm (1)-dikonversiFidara Aprionika
 
Metode Pengamatan
Metode PengamatanMetode Pengamatan
Metode PengamatanRfr Egha
 
Metode pengamatan Mikrobiologi dan Parasitologi Kelompok A Kelas A 2015
Metode pengamatan Mikrobiologi dan Parasitologi Kelompok A Kelas A 2015Metode pengamatan Mikrobiologi dan Parasitologi Kelompok A Kelas A 2015
Metode pengamatan Mikrobiologi dan Parasitologi Kelompok A Kelas A 2015titinseptyani
 
Metode pengamatan Mikrobiologi dan Parasitologi Kelompok A Kelas A 2015
Metode pengamatan Mikrobiologi dan Parasitologi Kelompok A Kelas A 2015Metode pengamatan Mikrobiologi dan Parasitologi Kelompok A Kelas A 2015
Metode pengamatan Mikrobiologi dan Parasitologi Kelompok A Kelas A 2015titinseptyani
 
konservasi plasma nutfah
konservasi plasma nutfahkonservasi plasma nutfah
konservasi plasma nutfahagronomy
 
REVIEW JURNAL sonia.docx
REVIEW JURNAL sonia.docxREVIEW JURNAL sonia.docx
REVIEW JURNAL sonia.docxWawanRp
 
Metode pengamatan kelompok a
Metode pengamatan kelompok aMetode pengamatan kelompok a
Metode pengamatan kelompok atitinseptyani
 

Similaire à Metode scoring pada seleksi benih udang windu (20)

PENJAMINAN MUTU PEM TELUR CACING KELOMPOK 1.pptx
PENJAMINAN MUTU PEM TELUR CACING KELOMPOK 1.pptxPENJAMINAN MUTU PEM TELUR CACING KELOMPOK 1.pptx
PENJAMINAN MUTU PEM TELUR CACING KELOMPOK 1.pptx
 
contoh laporan uji benih
contoh laporan uji benihcontoh laporan uji benih
contoh laporan uji benih
 
Acara 1 fix tekben
Acara 1 fix tekbenAcara 1 fix tekben
Acara 1 fix tekben
 
Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing
 Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing  Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing
Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing
 
Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing
 Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing  Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing
Pemeriksaan Tinja : Parasit Cacing
 
PENCEGAHAN INFEKSI VIRUS WHITE SPOT SYNDROME VIRUS (WSSV) PADA UDANG WINDU Pe...
PENCEGAHAN INFEKSI VIRUS WHITE SPOT SYNDROME VIRUS (WSSV) PADA UDANG WINDU Pe...PENCEGAHAN INFEKSI VIRUS WHITE SPOT SYNDROME VIRUS (WSSV) PADA UDANG WINDU Pe...
PENCEGAHAN INFEKSI VIRUS WHITE SPOT SYNDROME VIRUS (WSSV) PADA UDANG WINDU Pe...
 
Teknik pembenihan ikan I
Teknik pembenihan ikan ITeknik pembenihan ikan I
Teknik pembenihan ikan I
 
Laporan Magang Kantor kesehatan pelabuhan kelas 1 surabya
Laporan Magang Kantor kesehatan pelabuhan kelas 1 surabyaLaporan Magang Kantor kesehatan pelabuhan kelas 1 surabya
Laporan Magang Kantor kesehatan pelabuhan kelas 1 surabya
 
merekayasa-teknik-pembesaran-ikan-ramah-lingkungan_compress.pptx
merekayasa-teknik-pembesaran-ikan-ramah-lingkungan_compress.pptxmerekayasa-teknik-pembesaran-ikan-ramah-lingkungan_compress.pptx
merekayasa-teknik-pembesaran-ikan-ramah-lingkungan_compress.pptx
 
Laporan praktik penetasan rps kelas xi.1 atu 06112021
Laporan praktik penetasan rps kelas xi.1 atu 06112021Laporan praktik penetasan rps kelas xi.1 atu 06112021
Laporan praktik penetasan rps kelas xi.1 atu 06112021
 
Mamat presentation srikandi
Mamat presentation srikandiMamat presentation srikandi
Mamat presentation srikandi
 
metode-farmakologi-toksikologi.pptx
metode-farmakologi-toksikologi.pptxmetode-farmakologi-toksikologi.pptx
metode-farmakologi-toksikologi.pptx
 
INSEMINASI BUATAN upload.pptx
INSEMINASI BUATAN upload.pptxINSEMINASI BUATAN upload.pptx
INSEMINASI BUATAN upload.pptx
 
16588 40402-1-sm (1)-dikonversi
16588 40402-1-sm (1)-dikonversi16588 40402-1-sm (1)-dikonversi
16588 40402-1-sm (1)-dikonversi
 
Metode Pengamatan
Metode PengamatanMetode Pengamatan
Metode Pengamatan
 
Metode pengamatan Mikrobiologi dan Parasitologi Kelompok A Kelas A 2015
Metode pengamatan Mikrobiologi dan Parasitologi Kelompok A Kelas A 2015Metode pengamatan Mikrobiologi dan Parasitologi Kelompok A Kelas A 2015
Metode pengamatan Mikrobiologi dan Parasitologi Kelompok A Kelas A 2015
 
Metode pengamatan Mikrobiologi dan Parasitologi Kelompok A Kelas A 2015
Metode pengamatan Mikrobiologi dan Parasitologi Kelompok A Kelas A 2015Metode pengamatan Mikrobiologi dan Parasitologi Kelompok A Kelas A 2015
Metode pengamatan Mikrobiologi dan Parasitologi Kelompok A Kelas A 2015
 
konservasi plasma nutfah
konservasi plasma nutfahkonservasi plasma nutfah
konservasi plasma nutfah
 
REVIEW JURNAL sonia.docx
REVIEW JURNAL sonia.docxREVIEW JURNAL sonia.docx
REVIEW JURNAL sonia.docx
 
Metode pengamatan kelompok a
Metode pengamatan kelompok aMetode pengamatan kelompok a
Metode pengamatan kelompok a
 

Plus de lisa ruliaty 631971

Production of Baby Swimmer Crab Production in The Pond
Production of Baby Swimmer Crab Production in The Pond Production of Baby Swimmer Crab Production in The Pond
Production of Baby Swimmer Crab Production in The Pond lisa ruliaty 631971
 
swimmer crab culture in the pond
swimmer crab culture in the pondswimmer crab culture in the pond
swimmer crab culture in the pondlisa ruliaty 631971
 
Komposisi plankton kulonprogo.2016
Komposisi plankton kulonprogo.2016Komposisi plankton kulonprogo.2016
Komposisi plankton kulonprogo.2016lisa ruliaty 631971
 
Pengaruh penambahan asam lemak pada pakan terhadap rasio dha
Pengaruh penambahan asam lemak pada pakan terhadap rasio dhaPengaruh penambahan asam lemak pada pakan terhadap rasio dha
Pengaruh penambahan asam lemak pada pakan terhadap rasio dhalisa ruliaty 631971
 
Evaluasi hasil kel.benih bandeng.2013
Evaluasi hasil kel.benih bandeng.2013Evaluasi hasil kel.benih bandeng.2013
Evaluasi hasil kel.benih bandeng.2013lisa ruliaty 631971
 
Pengaruh pemberian artemia dewasa terhadap
Pengaruh pemberian artemia dewasa terhadapPengaruh pemberian artemia dewasa terhadap
Pengaruh pemberian artemia dewasa terhadaplisa ruliaty 631971
 
Pengaruh pemberian artemia dewasa terhadap
Pengaruh pemberian artemia dewasa terhadapPengaruh pemberian artemia dewasa terhadap
Pengaruh pemberian artemia dewasa terhadaplisa ruliaty 631971
 
Produksi baby crab rajungan dengan sistem modular
Produksi baby crab rajungan dengan sistem modularProduksi baby crab rajungan dengan sistem modular
Produksi baby crab rajungan dengan sistem modularlisa ruliaty 631971
 
Produksi Udang Sayur Untuk Memberdayakan Backyard Hatchery
Produksi Udang Sayur  Untuk Memberdayakan Backyard HatcheryProduksi Udang Sayur  Untuk Memberdayakan Backyard Hatchery
Produksi Udang Sayur Untuk Memberdayakan Backyard Hatcherylisa ruliaty 631971
 
APLIKASI PENYUNTIKAN HORMON SEROTONIN (5-HT) TERHADAP PEMATANGAN GONAD INDU...
APLIKASI PENYUNTIKAN HORMON  SEROTONIN (5-HT) TERHADAP  PEMATANGAN GONAD INDU...APLIKASI PENYUNTIKAN HORMON  SEROTONIN (5-HT) TERHADAP  PEMATANGAN GONAD INDU...
APLIKASI PENYUNTIKAN HORMON SEROTONIN (5-HT) TERHADAP PEMATANGAN GONAD INDU...lisa ruliaty 631971
 
PENAMPILAN REPRODUKSI DAN KUALITAS LARVA RAJUNGAN DENGAN PEMBERIAN BIOMASS A...
PENAMPILAN REPRODUKSI DAN KUALITAS LARVA  RAJUNGAN DENGAN PEMBERIAN BIOMASS A...PENAMPILAN REPRODUKSI DAN KUALITAS LARVA  RAJUNGAN DENGAN PEMBERIAN BIOMASS A...
PENAMPILAN REPRODUKSI DAN KUALITAS LARVA RAJUNGAN DENGAN PEMBERIAN BIOMASS A...lisa ruliaty 631971
 
PERBANDINGAN MUTU INDUK RAJUNGAN MATANG TELUR ALAM DENGAN INDUK ABLASI ASAL...
PERBANDINGAN  MUTU INDUK RAJUNGAN MATANG TELUR  ALAM DENGAN INDUK ABLASI ASAL...PERBANDINGAN  MUTU INDUK RAJUNGAN MATANG TELUR  ALAM DENGAN INDUK ABLASI ASAL...
PERBANDINGAN MUTU INDUK RAJUNGAN MATANG TELUR ALAM DENGAN INDUK ABLASI ASAL...lisa ruliaty 631971
 

Plus de lisa ruliaty 631971 (20)

Production of Baby Swimmer Crab Production in The Pond
Production of Baby Swimmer Crab Production in The Pond Production of Baby Swimmer Crab Production in The Pond
Production of Baby Swimmer Crab Production in The Pond
 
swimmer crab culture in the pond
swimmer crab culture in the pondswimmer crab culture in the pond
swimmer crab culture in the pond
 
Komposisi plankton kulonprogo.2016
Komposisi plankton kulonprogo.2016Komposisi plankton kulonprogo.2016
Komposisi plankton kulonprogo.2016
 
Pengaruh taurin
Pengaruh taurinPengaruh taurin
Pengaruh taurin
 
Pengaruh penambahan asam lemak pada pakan terhadap rasio dha
Pengaruh penambahan asam lemak pada pakan terhadap rasio dhaPengaruh penambahan asam lemak pada pakan terhadap rasio dha
Pengaruh penambahan asam lemak pada pakan terhadap rasio dha
 
Evaluasi hasil kel.benih bandeng.2013
Evaluasi hasil kel.benih bandeng.2013Evaluasi hasil kel.benih bandeng.2013
Evaluasi hasil kel.benih bandeng.2013
 
Ovaprime pada induk bandeng
Ovaprime pada induk bandengOvaprime pada induk bandeng
Ovaprime pada induk bandeng
 
Abstract.pengangkutan
Abstract.pengangkutanAbstract.pengangkutan
Abstract.pengangkutan
 
Abstract.bandeng bak dalam
Abstract.bandeng bak dalamAbstract.bandeng bak dalam
Abstract.bandeng bak dalam
 
Progres keg.bandeng.bbpbap jpr
Progres keg.bandeng.bbpbap jprProgres keg.bandeng.bbpbap jpr
Progres keg.bandeng.bbpbap jpr
 
Abstrak.bandeng biofloc.2012
Abstrak.bandeng biofloc.2012Abstrak.bandeng biofloc.2012
Abstrak.bandeng biofloc.2012
 
Biofloc bandeng.indo aqua 2012
Biofloc bandeng.indo aqua 2012Biofloc bandeng.indo aqua 2012
Biofloc bandeng.indo aqua 2012
 
Ikan hias clownfish
Ikan hias clownfishIkan hias clownfish
Ikan hias clownfish
 
Pengaruh pemberian artemia dewasa terhadap
Pengaruh pemberian artemia dewasa terhadapPengaruh pemberian artemia dewasa terhadap
Pengaruh pemberian artemia dewasa terhadap
 
Pengaruh pemberian artemia dewasa terhadap
Pengaruh pemberian artemia dewasa terhadapPengaruh pemberian artemia dewasa terhadap
Pengaruh pemberian artemia dewasa terhadap
 
Produksi baby crab rajungan dengan sistem modular
Produksi baby crab rajungan dengan sistem modularProduksi baby crab rajungan dengan sistem modular
Produksi baby crab rajungan dengan sistem modular
 
Produksi Udang Sayur Untuk Memberdayakan Backyard Hatchery
Produksi Udang Sayur  Untuk Memberdayakan Backyard HatcheryProduksi Udang Sayur  Untuk Memberdayakan Backyard Hatchery
Produksi Udang Sayur Untuk Memberdayakan Backyard Hatchery
 
APLIKASI PENYUNTIKAN HORMON SEROTONIN (5-HT) TERHADAP PEMATANGAN GONAD INDU...
APLIKASI PENYUNTIKAN HORMON  SEROTONIN (5-HT) TERHADAP  PEMATANGAN GONAD INDU...APLIKASI PENYUNTIKAN HORMON  SEROTONIN (5-HT) TERHADAP  PEMATANGAN GONAD INDU...
APLIKASI PENYUNTIKAN HORMON SEROTONIN (5-HT) TERHADAP PEMATANGAN GONAD INDU...
 
PENAMPILAN REPRODUKSI DAN KUALITAS LARVA RAJUNGAN DENGAN PEMBERIAN BIOMASS A...
PENAMPILAN REPRODUKSI DAN KUALITAS LARVA  RAJUNGAN DENGAN PEMBERIAN BIOMASS A...PENAMPILAN REPRODUKSI DAN KUALITAS LARVA  RAJUNGAN DENGAN PEMBERIAN BIOMASS A...
PENAMPILAN REPRODUKSI DAN KUALITAS LARVA RAJUNGAN DENGAN PEMBERIAN BIOMASS A...
 
PERBANDINGAN MUTU INDUK RAJUNGAN MATANG TELUR ALAM DENGAN INDUK ABLASI ASAL...
PERBANDINGAN  MUTU INDUK RAJUNGAN MATANG TELUR  ALAM DENGAN INDUK ABLASI ASAL...PERBANDINGAN  MUTU INDUK RAJUNGAN MATANG TELUR  ALAM DENGAN INDUK ABLASI ASAL...
PERBANDINGAN MUTU INDUK RAJUNGAN MATANG TELUR ALAM DENGAN INDUK ABLASI ASAL...
 

Metode scoring pada seleksi benih udang windu

  • 1. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta METODE SCORING: SATU CARA TERUKUR MENDAPATKAN BENIH UDANG BERKUALITAS Oleh: Lisa Ruliaty Joko Sumarwan Retno Handayani Adi Susanto KEMENTERIAN KELAUTAN DAN PERIKANAN DIREKTORAT JENDERAL PERIKANAN BUDIDAYA BALAI BESAR PERIKANAN BUDIDAYA AIR PAYAU JEPARA - 2014
  • 2. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta METODE SCORING: SATU CARA TERUKUR MENDAPATKAN BENIH UDANG BERKUALITAS Oleh: Lisa Ruliaty, Joko Sumarwan, Retno Handayani dan Adi Susanto ABSTRAK Beberapa metode seleksi benih telah dilakukan untuk mendapatkan benih udang berkualitas. Metode scoring yang dikembangkan di BBPBAP Jepara menggabungkan 3 (tiga) cara seleksi benih udang yaitu pengamatan visual, pengamatan daya tahan dan pengamatan laboratorium dengan memberi nilai (score) pada setiap parameter. Pengamatan visual terdiri dari; 1) pengamatan populasi dengan 6 parameter, 2) pengamatan bentuk benih dengan 3 parameter dan 3) pengamatan daya tahan benih terhadap arus dengan 1 parameter. Pengamatan daya tahan terdiri dari; 1) tes salinitas dengan 1 parameter, 2) tes formalin dengan 1 parameter. Pengamatan laboratorium terdiri dari; 1) pengamatan secara mikroskopis dengan 7 parameter dan 2) tes virus dengan 2 parameter. Persentase hasil yang di dapatkan pada setiap parameter di scoring dengan kriteria baik (>95 %) di nilai 10, kriteria sedang (70% - 95%) di nilai 5 dan kriteria jelek (<70 %) di nilai 0. Jumlah nilai parameter pada sub pengamatan memberikan kriteria yang terukur dari benih udang. Kriteria benih udang yang baik dengan nilai >15, sedang dengan nilai 10 – 15 dan jelek dengan nilai <10. Kata Kunci : scoring, benih udang.
  • 3. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta I. PENDAHULUAN Keberhasilan dalam kegiatan budidaya tambak tidak terlepas dari kualitas benih yang ditebar. Tersedianya benih udang tepat jenis, tepat jumlah, tepat waktu, tepat mutu dan tepat harga tidak hanya mampu menghasilkan produksi maksimal tetapi juga akan menjamin kontinyuitas produksi di tambak. Namun demikian, benih merupakan masalah utama di Indonesia karena masih sedikit panti pembenihan (hatchery) yang mau menerapkan sistem yang terkontrol terhadap kemungkinan adanya kontaminasi atau terjadinya infeksi virus yang berbahaya (misal : WSSV). Sebagai petambak, benih harus dipilih dengan cermat bahkan harus melewati beberapa tahapan pengujian. Mengingat arti pentingnya benur, maka langkah awal pemilihan benur untuk memperoleh kualitas yang prima akan menentukan keberhasilan kegiatan budidaya di tambak. Penebaran dengan benur yang berkualitas prima berarti salah satu langkah penting sudah terlaksana dengan baik. Kualitas benur terutama dari panti pembenihan sangat bergantung oleh manajemen atau penanganan pada saat pemeliharaan larva sampai menjadi post larva yang siap dijual kepada para petani, demikian pula termasuk bagaimana penanganan saat panen, cara pengangkutan dan lama waktu pengangkutan benur tersebut sampai ke lokasi tambak. Beberapa metode seleksi benih telah dilakukan untuk mendapatkan benih udang berkualitas. Metode scoring yang dikembangkan di BBPBAP Jepara menggabungkan 3 (tiga) cara seleksi benih udang yaitu pengamatan visual, pengamatan daya tahan dan pengamatan laboratorium dengan memberi nilai (score) pada setiap parameter. Pengamatan visual terdiri dari; 1) pengamatan populasi dengan 6 parameter, 2) pengamatan bentuk benih dengan 3 parameter dan 3) pengamatan daya tahan benih terhadap arus dengan 1 parameter. Pengamatan daya tahan terdiri dari; 1) tes salinitas dengan 1 parameter, 2) tes formalin dengan 1 parameter. Pengamatan laboratorium terdiri dari; 1) pengamatan secara mikroskopis dengan 7 parameter dan 2) tes virus dengan 2 parameter. II. RUANG LINGKUP Standar ini menetapkan seleksi benih udang windu mulai dari pengamatan visual benih, pengamatan daya tahan benih, pengamatan laboratorium serta pemilahan benih skala massal.
  • 4. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta III. ISTILAH DAN DEFINISI 3.1 Seleksi : Cara untuk memilah sehingga didapatkan hasil yang terbaik 3.2. Benih udang windu (benur) : benih udang yang bentuk morfologinya seperti udang dewasa serta mempunyai ukuran dan umur tertentu (PL 10 – PL 20) serta sudah mampu menyesuaikan terhadap lingkungan tambak. 3.3. Metode Scoring : Cara penilaian terhadap kualitas benih yang dilakukan dengan memberikan nilai atau angka. 3.4. Pengamatan visual : Penilaian yang dilakukan secara pandangan mata terhadap parameter yang telah di tentukan. 3.5. Pengamatan Daya Tahan Tubuh : Penilaian yang dilakukan dengan melakukan uji stress terhadap benih. 3.6. Pengamatan laboratorium : Penilaian yang dilakukan terhadap parameter yang telah di tetapkan dan dilakukan di laboratorium secara spesifik. IV. PRINSIP UMUM Prinsip dari seleksi ini adalah melakukan seleksi benih udang windu melalui 3 tahapan pengamatan dan 1 kegiatan pemilahan dengan melakukan penilaian/scoring untuk mendapatkan nilai yang lebih objektif terhadap kualitas benih udang windu.
  • 5. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta V. PROSEDUR KERJA DIAGRAM ALUR PROSEDUR: 1. 2. 3. 4. 5. Pengamatan Laboratorium SPO.03 1. Pengambilan Sampel 2. Pengamatan mikroskopis 3. Tes infeksi Virus 4. Kriteria Benih Pemilahan Benih secara Massal SPO.04 1. Persiapan Alat dan Bahan 2. Pemilahan Benih Secara Massal Pengamatan Visual Benih SPO-01 1. Pengamatan Populasi 2. Pengamatan Bentuk tubuh 3. Pengamatan Gerakan melawan Arus. 4. Kriteria Benih Panti Benih Pengamatan Daya Tahan Benih SPO. 02 1. Pengambilan Sampel 2. Tes Kejut Salinitas 3. Tes Formalin 4. Kriteria Benih Kepuasan Pelanggan
  • 6. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta 5. 1. Pengamatan Visual Benih Udang Windu 5.1.1. DIAGRAM PROSEDUR 5.1.2. METODE KERJA 5.1.2.A Alat dan Bahan Benih udang windu, waskom warna putih dan beaker glass 5.1.2. B. Prosedur kerja 1. Pengamatan populasi benih di bak: Benih Siap Tebar Pengamatan Populasi Mengamati : 1. Kepadatan Jumlah Populasi (Banyak skor= 10, Sedang skor= 5, sedikit = 0) 2. Berenang aktif melawan arus Gerakan berenang (aktif >95% skor=10, sedang 70-95% skor=5, di dasar <70% skor=0) 3. Keseragaman ukuran (Tinggi 80-100% skor=10, sedang 70-80% skor=5, rendah <70%=0). 4. Fototaksis (Positif >95% skor=10, sedang 70-96% skor=5, negatif <70% skor=0) 5. Respon pakan (Baik >95% skor=10, sedang 70-95% skor=5, jelek<70% skor=0) 6. Kondisi lingkungan (Baik >95% skor=10, sedang 70-95% skor=5, jelek<70% skor=0) Pengamatan Bentuk Benih Sampel benih 50-100 ekor di tempatkan di Beakerglas Mengamati : 7. Kelengkapan organ (Tinggi >95% skor=10, sedang 70-95% skor=5, rendah <70% skor=0) 8. Abnormalitas (Tinggi >95% skor=0, sedang 70-95% skor=5, rendah <70% skor=10) 9. Warna tubuh (Baik >95% skor=10, sedang 70-95% skor=5, jelek <70% skor=0) Pengamatan daya tahan benih terhadap arus Sampel benih 100 – 300 ekor di tempatkan di wadah baskom putih Mengamati : 10. Daya tahan benih terhadap arus air (baik >95% skor 10, sedang 70-95% skor=5, rendah <70% skor=0)Menjumlah skor dan membagi dengan jumlah parameter: Kriteria Benih, dengan nilai : Baik = >90 Sedang = 50 - 90 Jelek = < 50
  • 7. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta  Jumlah populasi kepadatan populasi Dilakukan dengan melihat keliling bak saat aerasi dimatikan sementara (sekitar 2 menit), kemudian memperkirakan jumlah benih total. Bila jumlah populasi benih di bak terlihat banyak maka dinilai dengan skor= 10, populasi Sedang skor= 5, populasi sedikit = 0  Gerakan berenang. Berenang aktif melawan arus. Banyak mmenempel di dinding Pengamatan gerakan benih di bak untuk melihat langsung gerakan benih di bak pada umumnya gesit atau tidak. Benih yang baik gerakannya lurus menantang arus aerasi. Benih dengan gerakan berenang aktif >95% mendapatkan skor=10, sedang 70-95% skor=5, di dasar <70% skor=0.  Keseragaman Ukuran Benih dengan keseragaman ukuran yang Tinggi 80-100% skor=10, sedang 70-80% skor=5, rendah <70%=0.  Fototaksis Pengamatan sifat fototaksis benih dilakukan dengan melihat pola populasi benih di bak. Benih yang baik akan cenderung banyak berkumpul di tempat arah datangnya cahaya. Benih yang Positif >95% skor=10, sedang 70-96% skor=5, negatif <70% skor=0  Respon terhadap Pakan Pengamatan respon benih terhadap pakan dilakukan dengan menebar pakan buatan yang berbentuk tepung dan kering pada permukaan air. Benih yang responsif terhadap pakan, maka ketika ditebar pakan, benih akan banyak naik berkumpul ke arah pakan di tebar. Nilai terhadap respon terhadap pakan Baik >95% skor=10, sedang 70-95% skor=5, jelek<70% skor=0  Kondisi Lingkungan Media Pemeliharaan. Keadaan plankton mati atau tidak mati. Kondisi lingkungan benih yang baik ditandai dengan kondisi air media yang berwarna plankton, masir dan tidak berbau. Pada pengamatan juga perlu diperhatikan ada tidaknya bangkai benih yang melayang-layang di kolom air. Jika terdapat bangkai benih di kolom air, ini pertanda benih baru dalam keadaan bermasalah, sehingga harus dihindari. Kondisi lingkungan Baik >95% di beri skor=10, sedang 70-95% skor=5, jelek<70% skor=0 2. Pengamatan Bentuk Tubuh Benih Pengamatan Bentuk tubuh benih udang windu dilakukan dengan cara mengambil sampel benih sebanyak 50 – 100 ekor pada tiap bak dan di tempatkan ke dalam beaker glas untuk memudahkan di dalam pengamatan. Pengamatan bentuk tubuh benih antara lain :  Kelengkapan Organ Kelengkapan organ Tinggi >95% skor=10, sedang 70-95% skor=5, rendah <70% skor=0.
  • 8. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta  Abnormalitas Abnormalitas benih dapat dilihat dari bentuk tubuh, terutama pada bagian ujung rostrum dan ekor. Benih yang mengalami banyak gangguan dalam pertumbuhannya baik faktor nutrisi maupun lingkungan sering menyebabkan ketidaknormalan/abnormalitas. Benih dengan abnormalitas Tinggi >95% skor=0, sedang 70-95% skor=5, rendah <70% skor=10.  Warna Benih Warna benih yang baik akan bening transparan, tidak berwarna pucat susu pada punggung dan tidak berwarna putih perak pada bola matanya. Baik >95% skor=10, sedang 70-95% skor=5, jelek <70% skor=0. 3. Pengamatan Gerakan Melawan Arus Pengamatan daya tahan benih terhadap arus dilakukan dengan mengambil 100 – 300 ekor benih dari tiap bak. Benih kemudian di tempatkan ke dalam baskom berwarna putih dengan volume air 2-5 liter. Benih yang baik, jika diputar air dalam baskom akan kelihatan melawan arus. Jumlah benih yang melawan arus sebanyak >95% akan di nilai baik dengan skor = 10, sedang 70 – 95% dengan skor 5 dan rendah <70% dengan skor = 0. 5.1.2.C. Kriteria Benih Nilai pengamatan terhadap seluruh parameter di catat pada Form 01. Jumlah skor yang di dapatkan pada setiap pengamatan kemudian di jumlahkan. Hasil tersebut merupakan Kriteria Benih, dengan nilai : Baik = >90, Sedang = 50 – 90 dan Jelek = < 50. 5.2. Pengamatan Daya Tahan Tubuh Benih Udang Windu 5.2.1. DIAGRAM PROSEDUR Benih Siap Tebar (PL-12/>PL-20 1. Tes Salinitas Pengambilan sampel benih PL-12/>PL-20 secara acak dari tiap bak sebanyak 300 ekor untuk 1 ulangan (min 3 ulangan) 2. Tes Formalin Pengambilan sampel benih PL-12/>PL-20 secara acak dari tiap bak sebanyak 300 ekor untuk 1 ulangan (min 3 ulangan) Benih di tempatkan di baskom dengan perbandingan air media pemeliharaan : air tawar 0 ppt (1:1). Benih di tempatkan di baskom volume 5 L dengan salinitas media sama dengan di bak pemeliharaan dan di beri 1 titik aerasi.
  • 9. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta 5.2.2. METODE KERJA 5.2.2. A. Alat dan Bahan o Baskom volume 5 liter, plastik, seser, alat hitung, refraktometer, gayung o Air media pemeliharaan, air tawar, formalin 100% 5.2.2.B. Prosedur kerja 1. Tes Salinitas  Mempersiapkan bahan dan peralatan yang akan digunakan sesuai dengan kebutuhan untuk uji ketahanan terhadap salinitas  Mempersiapkan tempat dan personil yang akan melaksanakan uji  Mengambil benih dari bak pemeliharaan dengan seser secara acak dan dimasukan ke dalam ember penampung  Mengambil air pemeliharaan dengan gayung, ditampung dalam ember plastik dan mencampur dengan air tawar (0 ppt) dengan jumlah yang sama dengan air media yang diambil. Perbandingan air media dan air tawar adalah 1:1.  Memasukkan campuran air laut dan air tawar dalam ember yang akan digunakan sebagai tempat uji kemudian dicatat kadar garamnya  Memasukkan benih ke dalam media uji sebanyak 300 ekor tiap ember dan pengamatan jam ke 0 dimulai. Pengamatan dilakukan selama 3 jam  Pada 1 jam pertama diamati kondisi benih, dan benih yang mati diambil dari tempat uji  Pengamatan pada jam ke-2 dilakukan seperti pada jam pertama Cek SR benih pada 1 jam setelah perendaman Ditambahkan Formalin 100% dosis 100 ppm (0,1 ml/l) utk PL-12 dan dosis 200 ppm (0,2 ml/L) utk >PL-20 Cek SR benih pada 2 jam setelah perendaman Cek SR benih pada 3 jam setelah perendamanHitung SR benih pada tiap ulangan dan di bagi sesuai jumlah ulangan. Skor Benih: SR >95%, skor = 10 SR 75-90%, skor = 5 SR < 75% = 0 Rendam benih udang windu selama ½ jam untuk PL-12 dan selama 1 jam untuk >PL- 20. Hitung SR benih pada tiap ulangan dan di bagi sesuai jumlah ulangan setelah perendaman sesuai dengan waktu. Skor Benih : SR >95%, skor = 10 SR 75-95%, skor = 5 SR < 75%, skor = 0 Jumlahkan skor pada kedua tes, Kriteria Benih: Bagus nilai >15, Sedang 10-15, Jelek <10
  • 10. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta  Pada jam ke-3 setelah benih yang mati dipisahkan, dihitung benih yang hidup pada setiap wadah uji  Dihitung kelangsungan hidup pada setiap wadah uji  Kelangsungan hidup rata – rata adalah penambahan angka pada setiap wadah uji dan dibagi dengan jumlah wadah  SR tersebut kemudian di nilai dengan criteria : Skor Benih: SR >95% skor = 10, SR 75-95% skor = 5, SR < 75% skor = 0 2. Tes Formalin  Mempersiapkan bahan dan peralatan yang akan digunakan sesuai dengan kebutuhan untuk uji ketahanan terhadap formalin  Mempersiapkan tempat dan personil yang akan melaksanakan uji  Mengambil benih dari bak pemeliharaan dengan menyeser secara acak dan dimasukan ke dalam baskom penampung kapasitas volume 5 liter.  Mengambil air pemeliharaan dengan gayung, ditampung dalam ember plastik dan menambahkan formalin 100% hingga konsentrasi dalam media uji 100 ppm (0,1 ml/l) untuk PL-12 dan 200 ppm (0,2 ml/l) untuk benih >PL-20  Memasukkan benih ke dalam media uji sebanyak 300 ekor tiap ember dan pengamatan menit ke 0 dimulai. Pengamatan dilakukan selama 30 menit untuk PL- 12 dan satu jam untuk >PL-20.  Pada menit ke-30 setelah benih yang mati dipisahkan, dihitung benih yang hidup pada setiap wadah uji  Dihitung kelangsungan hidup pada setiap wadah uji  Kelangsungan hidup rata – rata adalah penambahan angka pada setiap wadah uji dan dibagi dengan jumlah wadah.  SR tersebut kemudian di nilai dengan criteria : Skor Benih: SR >95% skor = 10, SR 75-95% skor = 5, SR < 75% skor = 0 5.2.2.C. Kriteria Benih Nilai pengamatan terhadap seluruh parameter di catat pada Form 02. Jumlah skor yang di dapatkan pada tes salinitas dan tes formalin kemudian di jumlahkan. Hasil tersebut merupakan Kriteria Benih, dengan nilai : Baik = >15, Sedang = 10-15 dan Jelek = < 10.
  • 11. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta 5.3. Pengamatan Laboratorium Benih Udang Windu 5.3.1. DIAGRAM PROSEDUR I. Pengambilan Sampel II. Pengamatan benih udang windu secara mikroskopis Pengambilan Sampel Benih Udang Windu (PL12) Diambil dari 5 titik pengambilan sampel: • 4 titik pada keempat sudut bak pemeliharaan • 1 titik pada bagian tengah bak pemeliharaan • Masing-masing sebanyak 500 ekor Masukkan PL ke dalam bak bulat berkapasitas 250 L Treatment dengan formalin 200 ppm selama 30 menit Diambil 150 ekor PL yang paling lemah Uji Virus dengan Metode PCR/Real-Time PCR: • WSSV • IMNV Ambil 20 ekor benih untuk pengamatan secara mikroskopis Pengamatan Benih Udang Windu Secara Mikroskopis Kondisi Hepatopankreas (Vakuola lemak): • Tinggi (> 90%); score: 10 • Sedang (70 – 90%); score: 5 • Sedikit (<70%); score: 0 Kondisi Usus/Swollen Hind Gut (SHG): • Penuh (> 95%), 0% SHG; score: 10 • Sedang (70 – 95%), 1-10% SHG; score: 5 • Kosong (<70%), >10% SHG; score: 0 Mengambil 20 ekor sampel PL 12
  • 12. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta III. Tes Virus Nekrosis: • Tidak ada (0%); score: 10 • Sedang (<15%); score: 5 • Banyak/berat (>15%); score: 0 Deformity: • Tidak ada (0%); score: 10 • Sedang (<10%); score: 5 • Banyak/berat (>10%); score: 0 Epibiont Fouling: • Tidak ada (0%); score: 10 • Sedang (<15%); score: 5 • Banyak/berat (>15%); score: 0 Bolitas: • Tidak ada; score: 10 • 1-3; score: 5 • >3; score: 0 Baculovirus (preparat squash, pewarnaan dengan malachit green): • Tidak ada (0%); score: 10 • Sedang (<10%); score: 5 • Banyak/berat (>10%); score: 0 Total Score Pengambilan Sampel PL 12 Sebanyak 150 ekor (Sesuai SPO Pengambilan Sampel) Melakukan Ekstraksi DNA atau RNA dari sampel PL 12 Melakukan Pencatatan Hasil Uji Virus: • WSSV negatif; Score: 10 • IMNV negatif; Score: 10 Melakukan Uji Virus dengan Metode PCR/ Real-Time PCR: • WSSV • IMNV Total Score digabung dengan Score Hasil Pengamatan Secara Visual dan Mikroskopis
  • 13. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta 5.3.2.A. PENGAMBILAN SAMPEL METODE KERJA 1. Alat dan Bahan a. Botol sampel b. Seser c. Ember plastik d. Bak bulat berkapasitas 250 L e. Beaker glass f. Benih udang windu (PL 12) g. Formalin 100% 2.Prosedur kerja a. Ambil benih udang windu dari bak pemeliharaan dengan menggunakan seser di 5 titik pengambilan sampel, yaitu 4 titik pada keempat sudut bak pemeliharaan dan 1 titik pada bagian tengah bak pemeliharaan, masing-masing sebanyak 500 ekor; b. Masukkan benih udang tersebut ke dalam bak bulat yang telah berisi air laut sesuai dengan yang terdapat di dalam bak pemeliharaan dan beri aerasi; c. Ambil 20 ekor benih udang windu untuk pemeriksaan secara mikroskopis; d. Masukkan formalin dengan dosis 200 ppm dan biarkan selama 30 menit; e. Ambil aerasi dan putar air dengan tangan; f. Ambil benih udang dengan kondisi yang paling lemah, yaitu benih udang yang mengumpul di tengah. Sampel benih udang diambil sebanyak 150 ekor (berdasarkan Tabel Amos yang terdapat di OIE, 2009). 6.3.2.B. PEMERIKSAAN BENIH UDANG WINDU SECARA MIKROSKOPIS METODE KERJA 1. Alat dan Bahan a. Beaker glass b. Obyek glass c. Pinset d. Mikroskop e. Akuades f. Malachit green g. Benih udang windu (PL 12) 2. Prosedur kerja a. Ambil benih udang windu sebanyak 20 ekor sesuai SOP pengambilan sampel;
  • 14. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta b. Amati hepatopankreas dan usus masing-masing benih udang di bawah mikroskop (perbesaran 40x). Jika 90% atau lebih dari benih udang mempunyai vakuola lemak yang banyak, usus terisi penuh dan tidak ada swollen hind gut (SHG), beri skor 10. Jika 70 – 90% benih udang mempunyai vakuola lemak dan atau usus cukup penuh atau dengan sedikit SHG, beri skor 5. Jika kurang dari 70% usus benih udang penuh dan atau usus kosong atau ada lebih dari 10% SHG, beri skor 0; c. Amati adanya nekrosis yang merupakan indikasi terjadinya kanibalisme atau infeksi bakteri, pada tubuh dan anggota tubuh (antenna, rostrum, kaki renang, kaki jalan, dan ekor) benih udang. Jika tidak ada nekrosis, beri skor 10. Jika <15% benih udang menunjukkan sedikit nekrosis, beri skor 5. Jika >15% benih udang menunjukkan nekrosis, yang mengindikasikan adanya infeksi berat, beri skor 0; d. Amati cacat (deformity) pada anggota tubuh benih udang dan atau rostrum, mungkin bengkok, rusak, atau hilang, bagian ekor (abdomen segmen ke-6) mungkin bengkok, atau saluran pencernaan mungkin berakhir sebelum anus. Jika cacat tidak teramati, beri skor 10. Jika <10% teramati adanya cacat, beri skor 5. Jika >10% teramati adanya cacat, beri skor 0; e. Amati adanya organisme penempel (epibiont fouling), seperti bakteri, jamur atau protozoa pada eksoskeleton kepala maupun abdomen, dan insang. Jika tidak ada organisme penempel, beri skor 10. Jika <15% teramati adanya organisme penempel sementara atau permanen, beri skor 5. Jika >15% teramati organisme penempel permanen, beri skor 0; f. Amati ‘bolitas’ (lepasnya sel epitel dari dinding intestinum dan hepatopankreas yang teramati sebagai bulatan di dalam saluran pencernaan). Jika tidak ada bolitas, beri skor 10. Jika ada 1 – 3 bolitas, beri skor 5. Jika ada lebih dari 3 bolitas, beri skor 0. g. Buat preparat dari benih udang utuh atau gerusan dan warnai dengan malachite green. Amati adanya benda oklusi MBV yang berwarna gelap dan berbentuk tetrahedral. Jika tidak teramati benda oklusi MBV, beri skor 10. Jika <10% teramati benda oklusi MBV, beri skor 5. Jika >10% teramati benda oklusi MBV, beri skor 0. h. Hitung total skor. Benih udang windu yang berkualitas bagus memiliki total skor > 50, benih udang windu yang berkualitas sedang memiliki total skor 35 – 50, sedang benih udang windu berkualitas jelek memiliki skor < 35. 5.3.2. C. UJI VIRUS METODE KERJA 1. Alat dan Bahan
  • 15. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta a. Botol sampel b. Peralatan deteksi virus dengan metode PCR atau Real-Time PCR c. Bahan deteksi virus dengan metode PCR atau Real-Time PCR d. Benih udang windu (PL 12) 2. Prosedur kerja a. Ambil benih udang windu sebanyak 150 ekor sesuai SOP pengambilan sampel; b. Lakukan deteksi WSSV dengan menggunakan metode PCR (OIE, 2009) atau Real-Time PCR (Lightner, 2001) dan deteksi IMNV dengan metode RT-PCR (OIE, 2009) atau Real-Time PCR (OIE, 2009); c. Beri skor 10 bila hasil deteksi negatif WSSV dan beri skor 10 bila hasil deteksi negatif IMNV. Beri skor 0 bila terdeteksi positif WSSV dan beri skor 0 bila terdeteksi positif IMNV. d. Hitung total skor. Benih udang windu yang berkualitas bagus memiliki total skor 20 dan benih udang windu berkualitas jelek memiliki skor ≤10. 6.3.3. Interpretasi hasil 1. Penghitungan total skor pada pengamatan secara mikroskopis a) benur yang berkualitas baik memiliki total skor > 50; b) benur yang berkualitas sedang memiliki total skor 35 – 50; c) benur berkualitas jelek memiliki skor < 35. 2. Penghitungan total skor pada pemeriksaan molekuler a) benur berkualitas baik memiliki total skor 20 b) benur berkualitas jelek memiliki skor ≤10. 3. Penilaian akhir a) benur dinyatakan layak tebar bila uji WSSV, IMNV negatif b) memiliki skor total pengamatan mikroskopis >50 5.4. Pemilahan Benih Udang Windu Secara Massal 6.4.1. DIAGRAM PROSEDUR Persiapan Alat dan Bahan Memasukan Benih (PL-12/ >PL-20) - Kepadatan 500 ekor/L
  • 16. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta 6.4.2. METODE KERJA 1. Alat dan Bahan  Benih udang windu umur PL-12/ >PL-20  Larutan Formaldehyde 37% (Formalin 100%).  Media air laut steril.  Gelas Ukur  Bak fiber bundar untuk penampungan benih.  Stop Watch  Selang sifon  Baskom / ember  Aerasi 2. Prosedur kerja 2.1. Persiapan Alat dan Bahan  Benur yang dilakukan pemilahan merupakan benih umur PL-12 yang di teruskan pemeliharaannya ke segmen pendederan maupun >PL-20 yang siap di tebarkan ke pembesaran.  Sebelum benih di keluarkan dari bak pemeliharaan, di lakukan persiapan alat dan bahan untuk kegiatan pemilahan secara massal.  Bak penampungan bentuk bundar telah di pasang 1-2 titik aerasi, dan di isi air media steril dengan salinitas yang sama dengan di bak pemeliharaan. Data salinitas tercatat pada Form 04. Membuang benih yang tidak sehat - Matikan aerasi - Putar air media - Lakukan penyiponan Menambahkan Larutan Formalin 100% (Formaldehyde 37%) - Dosis 100/200 ppm (0,1/0,2 ml/L) - Durasi perendaman ½ /1 jam Pindahkan benih sehat ke media baru Benih di tebar di pendederan/ siap di kemas
  • 17. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta  Larutan Formaldehyda 37%, gelas ukur, stop watch, baskom serta selang sifon di tempatkan di dekat bak penampungan benih. Jumlah Formaldehyda 36% yang di pergunakan di catat pada Form 04. 2.2. Pemilahan Benih  Benih yang telah di keluarkan dari bak pemeliharaan, di tampung di bak penampungan dengan kepadatan 500 ekor/L.  Larutan Formaldehyda 36% di masukkan ke bak penampungan dengan dosis 100 ppm untuk PL-12 dan dosis 200 ppm untuk >PL-20.  Perendaman benih udang windu dengan Formaldehyda 36% dilakukan selama ½ jam untuk PL-12 dan untuk >PL-20 dilakukan selama 1 jam setelah Formaldehyda 36% dimasukkan.  Sekitar 5 – 10 menit sebelum batas waktu perendaman, aerasi di keluarkan dari bak penampungan dan dilakukan pemutaran air media menggunakan tangan.  Setelah batas waktu, benih udang windu yang tidak sehat akan berada di dasar bak. Benih tidak sehat tersebut kemudian di sifon menggunakan selang sifon dan di tampung pada baskom. Benih tersebut kemudian di hitung dan di catat hasilnya pada Form 04. Benih tidak sehat kemudian di buang pada UPL (Unit Pembuang Limbah).  Benih udang windu yang sehat kemudian di pindahkan ke bak penampungan lain yang telah di persiapkan dan siap di pindah ke pendederan atau di kemas untuk pembesaran setelah 15 – 30 menit. DAFTAR PUSTAKA Anonymous, 2007. Improving Penaeus Monodon Hatchery Practices. Manual based on experience in India. Food and Agriculture Organization of The united Nations, Rome, 2007. SNI : 01- 6143 – 1999 SNI : 01- 6144 – 1999
  • 18. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta Lampiran A (informatif) FORM 01. PENGAMATAN VISUAL BENIH UDANG WINDU Nama Unit Pembenihan : Alamat Unti Pembenihan : Kode Bak : Tanggal Pengamatan : No Uraian Kriteria Skor I. Pengamatan Populasi 1. Jumlah populasi Banyak skor= 10, Sedang skor= 5, sedikit = 0 2. Gerakan berenang aktif >95% skor=10, sedang 70- 95% skor=5, di dasar <70% skor=0 3. Keseragaman ukuran Tinggi 80-100% skor=10, sedang 70-80% skor=5, rendah <70%=0 4. Fototaksis Positif >95% skor=10, sedang 70-96% skor=5, negatif <70% skor=0 5. Respon terhadap pakan Baik >95% skor=10, sedang 70- 95% skor=5, jelek<70% skor=0 6. Kondisi Lingkungan Baik >95% skor=10, sedang 70- 95% skor=5, jelek<70% skor=0
  • 19. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta II Bentuk Tubuh 1. Kelengkapan organ Tinggi >95% skor=10, sedang 70-95% skor=5, rendah <70% skor=0 2. Abnormalitas Tinggi >95% skor=0, sedang 70- 95% skor=5, rendah <70% skor=10 3. Warna Tubuh Baik >95% skor=10, sedang 70- 95% skor=5, jelek <70% skor=0 III Daya Tahan Terhadap Arus baik >95% skor 10, sedang 70- 95% skor=5, rendah <70% skor=0 Jumah Skor : Kriteria Benih, dengan nilai : Baik = >90, Sedang = 50 – 90 dan Jelek = < 50.
  • 20. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
  • 21. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta Lampiran B (informatif) FORM 02 DATA HASIL PENGAMATAN DAYA TAHAN BENIH UDANG WINDU TERHADAP TES SALINITAS DAN TES FORMALIN Tanggal Pengamatan : Kode Bak : Tes Salinitas* Tes Formalin* Waktu 1 2 3 Rata- rata 1 2 3 Rata- rata 1 jam 2 jam 3 jam Rata-rata: Kriteria Benih: Keterangan : *Skor Benih: SR >95% skor = 10, SR 75-95% skor = 5, SR < 75% skor = 0 **Kriteria Benih :Baik = >15, Sedang = 10-15 dan Jelek = < 10.
  • 22. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta Lampiran C (informatif) Form 03. PENGAMBILAN SAMPEL Tanggal : Lokasi pengambilan : Alamat : Jenis sampel : Nomor registrasi : Jumlah sampel : Kondisi sampel : Kode sampel: No. Jenis sampel Kode sampel Kode Lab Petugas Pengambil sampel (………………………………..)
  • 23. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta Lampiran D (informatif) Form 04. HASIL PEMERIKSAAN BENIH UDANG SECARA MIKROSKOPIS Tanggal : Asal sampel : Alamat : Jenis sampel : Nomor registrasi : Jumlah sampel : Kondisi sampel : Hasil pemeriksaan: No. Jenis pengamatan Kriteria Skor 1. Hepatopankreas (vakuola lemak) dan usus (isi dan swollen hind gut (SHG)  Tinggi (> 90%), skor: 10  Sedang (70 – 90%), skor: 5  Sedikit (<70%), skor: 0 2. 3. 4. 5. 6. Manajer Teknis Laboratorium (………………………………..)
  • 24. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta
  • 25. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta Lampiran E (informatif) Form 05 LAPORAN HASIL UJI Nomor: Perihal : Hasil diagnosis biologi molekuler Tanggal Penerimaan : Tanggal pengujian : Asal sampel : Alamat : Jenis sampel : Nomor registrasi : Jumlah sampel : Kondisi sampel : Metode : Hasil: No. Nama/jenis Kode sampel Kode Lab WSSV IMNV 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
  • 26. Makalah di presentasekan pada Pertemuan IndoAqua 2014 tanggal 26 – 29 Agustus 2014 di Jakarta Lampiran F (informatif) FORM 06 DATA HASIL PEMILAHAN BENIH UDANG WINDU SECARA MASSAL Tanggal Kode Bak Salinitas Media (ppt) Jumlah Formaldehyda 36% (ml) Jumlah benih tidak sehat (ekor)