Este documento trata sobre los virus y viroides fitopatógenos. Describe sus características generales como su tamaño, forma y estructura. Explica su taxonomía y los diferentes modos de transmisión como por insectos, nematodos o material vegetal infectado. También cubre el desarrollo de la enfermedad dentro de la planta huésped incluyendo la penetración, colonización y diseminación sistémica, así como los síntomas que pueden manifestar en hojas, tallos y frutos. Finalmente, menciona la influencia

1. VIRUS Y VIROIDES Virus y viroides fitopatógenos
FITOPATOGENOS
Introducción
Características generales
Taxonomía
Desarrollo de la enfermedad
Influencia del ambiente
Ing. Agr. Elisa Silvera Pérez Criterio de manejo
Diagnóstico
Fitopatología 2008 2
Introducción Introducción
Enfermedades sistémicas incurables
Difícil diagnóstico
Ocurrencia de infecciones múltiples y
latentes
Fácil transmisión
Walkey, 1991 3 4

2. Características generales Características generales
Comparación del tamaño del genoma de Virus a
diferentes ácidos nucleicos
Estructura
Número de nucleótidos Genoma b
ARNm: 1.800 ARN (+/-) cadena simple (90%);
Escherichia coli: 5.000.000 ARN doble cadena (4%);
Tobacco mosaic tobamovirus (TMV): 6.396 ADN cadena simple (4%);
Potato spindle tuber viroid (PSTVd): 359 ADN doble cadena (2%) Estructura de virus fitopatógeno:
(a) ácido nucleico;
Cápsula proteica (b) sub-unidades proteicas
5 6
Características generales Características generales
Morfología
Forma
Forma
Varilla rígida Filamento ondulado
Esférica/Poliédrica
Partículas rígidas: TMV Partículas filamentosas flexuosas: Soybean mosaic potyvirus
Fuente: Gergerich & Dolja, 2006 Fuente: Instituto de Fitopatología y Fisiología Vegetal INTA-JICA, 1999 Partículas esféricas de Mal de río cuarto virus
Fuente: Instituto de Fitopatología y Fisiología Vegetal INTA-JICA, 1999
7 8

3. Características generales Características generales
Tamaño
Forma Varillas rígidas: 15 x 300 nm TMV
Baciliforme Filamentos ondulados: largo ~2000 nm o 2 µ
10-13 x 480 nm Potato X potexvirus
2000 nm Citrus tristeza closterovirus
Bacilos: 75 x 380 nm Potato yellow dwarf nucleorhabdovirus
65 x 270 nm Wheat striate mosaic virus
Esféricos: 17 – 60 nm
85 nm Tomato spoted wilt tospovirus
Partículas baciliformes de Maize mosaic virus
(1000 nm = 1 µ = 0,001 mm)
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/ICTVdb/ICTVdB/01.062.0.05.htm 9 10
Características generales Características generales
Viroides
Genoma monopartita: contenido en una sola
molécula (virion) ARN, cadena simple circular
Carecen de cápsula proteica
Genoma multipartita:
No codifican proteínas
Tomato ring spot nepovirus (2); Genoma monopartita
246 and 401 nucleotides
Brome mosaic bromovirus (3); Configuración doble hebra:
Cucumber mosaic cucumovirus (3)
Fuente: Gepp, 2002
11 12

4. Características biológicas Taxonomía
Parásitos obligados Características
taxonómicas
Alteran el metabolismo de la células virus
Transmisibles
No se dividen
No producen esporas
Inducen a la célula hospedera a formar virus
y viroides
13 14
Taxonomía Taxonomía
Virus Familia: Cucumoviridae
Familia: Tobamoviridae Genero: Cucumovirus
Especie: Cucumber mosaic cucumovirus (CMV)
Género: Tobamovirus
Especie: Tobacco mosaic tobamovirus (TMV)
Familia: Luteoviridae
Genero: Luteovirus
Especie: Barley yellow dwarf luteovirus (BYDV)
15 16

5. Taxonomía Taxonomía
Viroides TSWV
Familia: Avsunvirodidae Tomato spoted wilt tospovirus
PLRV
Género: Pelamoviroid
Potato leafroll luteovirus
Espécie: Peach latent mosaic viroid (PLMVd)
LMV
Lettuce mosaic potyvirus
Familia: Pospiviroidae PSTVd
Género: Pospiviroid Potato spindle tuber viroid
Espécie: Potato spindle tuber viroid (PSTVd) CEVd
Citrus exocortis viroid
17 18
Desarrollo de la enfermedad Fuente de inóculo
Material de propagación:
Fuente de inóculo Transmisión Planta vegetativo (tubérculos, bulbos)
semilla
Colonización
Plantas:
del cultivo
Síntomas de cultivos cercanos
plantas espontáneas: voluntarias, malezas
19 20

6. Desarrollo de la enfermedad Transmisión
Penetración Planta
Inoculación
Diseminación Transmisión
Fuente de inóculo
Material de propagación
Plantas
21 Fuente: Agrios, 1991 22
Transmisión Transmisión vectores
Insectos vectores
de virus de planta
Fuente: Adaptado de Agrios, 1991
Hongos: Olpidium, Polymyxa, Spongospora
Fuente: Agrios, 1991 23 24

7. Transmisión por insecto Transmisión por pulgones
Pulgones Mosca blanca
No persistente
Adquisición: seg - min
Latencia: no
Myzus persicae
Bemisia tabaci Inoculación: min
http://www.teorema.com.mx/images/upload/lo-negro-de-
http://www.kennislink.nl/upload/120931_962_1098098759910-
greenpeachcolony.jpg
mosquita-blanca.jpg
Epidermis
Retención: min - < 4 hrs
Trips Chicharrita Potyvirus
Myndus crudus
www.hondurasbutterfly.com/insects.htm
Frankliniella occidentalis
http://plantpath.wisc.edu/~tlg/moreinfo2.html
25 26
Transmisión por pulgones Transmisión por pulgones
Persistente - circulativa
Adquisición: min - hrs
Latencia: hrs – días - semanas
Inoculación: min – hrs
Retención: > 100 hrs
Luteovirus
Floema
27 Fuente: Walkey, 1991 28

8. Transmisión por trips Transmisión por nematodos
Frankliniella schultzei
Frankliniella occidentalis
Virus: TSWV
Persistente
Tiempo
adquisición
de
del
No circulativa
virus (estadio
larval): 15 min a 4
Transmisión de Persistente y días.
TSWV: 15 min
Circulativa Virus circula y se
replica dentro del Orden: Dorylaimida
cuerpo del trips Xiphinema
Longidorus
Incubación/Latencia Trichodorus
4 -15 días
Paratrichodorus
29 30
Tipo de transmisión Tipo de transmisión
No persistente
Persistente
Tiempo de adquisición (seg)
Fuente: Matthews, 1991
31 32

9. Desarrollo de la enfermedad Colonización
Penetración Planta Ingreso en una célula
Inoculación
Colonización Pérdida de la cápsula proteica
Diseminación Transmisión
Replicación ácido nucleico
Multiplicación de unidades de proteína
Ensamblaje
Fuente de inóculo Pasaje a otra célula
Material de propagación
Plantas
Traslocación por el floema
Infección sistémica
33 34
Colonización
Colonización
Esquema de la
transmisión de un virus
en una planta
Fuente: Agrios, 1991
Fuente: Agrios, 1991
35 36

10. Desarrollo de la enfermedad
Síntomas
Penetración Planta
Inoculación
Diseminación Transmisión Colonización
Síntoma
Fuente de inóculo
Material de propagación
Plantas
37 38
Lesiones locales necróticas y cloróticas en hoja de
una leguminosa
Puntos necróticos y cribado en hojas de Prunus sp. causado
Fuente: Gergerich & Dolja, 2006
por Prunus necrotic ringspot ilarvirus
Fuente: Instituto de Fitopatología y Fisiología Vegetal INTA-JICA, 1999
39 40

11. Anillos cloróticos en hoja de morrón
Mosaico en hojas de lechuga
Fuente: Unidad de Fitopatología, FAGRO
Fuente: Unidad de Fitopatología, FAGRO
41 42
Mosaico en hojas de tabaco, TMV
Mosaico en hojas de manzano
Fuente: Unidad de Fitopatología, FAGRO http://www.apsnet.org/education/LessonsPlantPath/Top.html
43 44

12. a
b
(a) Hoja de vid normal, (b) Hoja con coloración rojo-violácia,
nervaduras verdes y enrollamiento del limbo hacia abajo, complejo
Grapevine leafroll-associated virus, GLRaV
Mosaico en hoja de maíz, MDMV
Fuente: Unidad de Fitopatología, FAGRO
Fuente: Instituto de Fitopatología y Fisiología Vegetal INTA-JICA, 1999
45 46
Enanismo en planta de papa infectada con PVY
Enanismo, hojas de color verde claro en plantas de girasol infectadas con el virus
del moteado clorótico del girasol Fuente: Unidad de Fitopatología, FAGRO
Fuente: Instituto de Fitopatología y Fisiología Vegetal INTA-JICA, 1999
47 48

13. a b
(a) Enanismo y disminución del
sistema radicular en plantas
de trigo con BYDV,
(b) Planta normal
Enanismo, clorosis y enrollamiento de hojas inferiores en planta infectada con PLRV
http://vegetablemdonline.ppath.cornell.edu/PhotoPages/Potatoes/Viruses/PotVirusFS2.htm
49 Fuente: Instituto de Fitopatología y Fisiología Vegetal INTA-JICA, 1999 50
a
a
Hojas verde claro y
deformes en el ápice de
planta de tomate
b infectada con TSWV
(a) Bulbos de ajo blanco tamaño normal
(b) Bulbos de ajo contaminados con
diferentes virosis del mosaico
Fuente: Instituto de Fitopatología y Fisiología Vegetal INTA-JICA, 1999
51 Fuente: Unidad de Fitopatología, FAGRO 52

14. Picaduras del tronco
producidas por CTV en
pomelo
Anillos necróticos en frutos de tomate, TSWV
Fuente: Unidad de Fitopatología, FAGRO
http://www.eppo.org/QUARANTINE/virus/Citrus_tristeza/CTV000_images.htm
53 54
Influencia del ambiente
Huéspedes Ambiente
presencia
susceptibilidad
Virus
Vectores Huésped
abundancia
Manchas en fruto de manzano Apple scar skin viroid (ASSVd)
actividad
Fuente: Gergerich & Dolja, 2006
55 56

15. Influencia del ambiente
Temperatura
Efecto de la temperatura en la severidad de Cucumber
mosaic virus en Cucurbita pepo
Cultivar Severidad
15 ºC 20 ºC 25 ºC
Gobham Bush Green 3,7 1,3 0,3
Escala de severidad: 0 – 5
Fuente: Walkey, 1991
Fuente: Cañedo, 1997
57 58
Bibliografía
Agrios, G.N. Fitopatología. México, Noriega. 1995.
Eírias, M.; Darós, J.A.; Flores, R.; Kitajima, E.W. Viróides e Virusóides:
Relíquias do Mundo de RNA. Fitopatología Brasileira 31:229-246.
2006.
Gepp, V. Virus y viroides fitopatógenos. Dpto. de Publicaciones de la
Facultad de Agronomía, Montevideo, Uruguay. 27 p. 1996.
Gergerich, R.C.& Dolja, V.V. Introduction to Plant Viruses, the
Invisible Foe. The Plant Health Instructor.
<http://www.apsnet.org/education/IntroPlantPath/PathogenGroups/plant
Viruses/default.htm>. 2006.
ICTVdB, Descriptions. International committee on taxonomy of viruses,
<http://www.ncbi.nlm.nih.gov/ICTVdb/ICTVdB/>
59