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International Journal of Andrology, 28, 39–46. 2005

SECRECIÓN DE ANTÍGENO PROSTÁTICO ESPECÍFICO,
ACTIVIDAD PROLIFERATIVA
Y RESPUESTA A ANDRÓGENOS DE CO-CULTIVOS
DE CÉLULAS EPITELIALES-ESTROMALES
DERIVADAS DE CÁNCER PROSTÁTICO HUMANO
ENRIQUE CASTELLÓN, KARINA VENEGAS, LEONARDO SÁENZ, HÉCTOR CONTRERAS
and CHRISTIAN HUIDOBRO
Physiology and Biophysics Program, Institute of Biomedical Sciences, Faculty of Medicine,
University of Chile, and Urology Department, Clinic Hospital J.J., Aguirre, University of Chile,
Chile

Tutor
Dr. Enrique Castellón

Universidad de Chile
Facultad de Medicina
Escuela de Tecnología Médica
Curso de Microscopía Electrónica

Presentador
Kenneth Walker
INTRODUCCIÓN

 Con un estimado de 258.000 muertes para el 2008, el CaP
se convierte en la sexta causa principal de muerte por
cáncer en los hombres a nivel global.
 En Chile, se estima que actualmente más de 1.700
pacientes mueren anualmente debido a este cáncer
 El diagnóstico precoz mejora el pronóstico del paciente.
Sin embargo, esto resulta complicado principalmente por la
ausencia de síntomas en las etapas iniciales de la patología.
 El tratamiento para CaP es la prostectomía. Sin embargo,
más del 30% de los pacientes vuelven a padecer cáncer
después de la cirugía.
 Intentando comprender la mecánica del desarrollo del CaP,
investigadores plantean la existencia de una relación
paracrina entre las células epiteliales y estromales en el
contexto del CaP.
 Sin embargo, trabajan con líneas derivadas de metástasis
que podrían no ser fielmente representativas de los eventos
reales en el desarrollo del tumor primario en la próstata.
OBJETIVO GENERAL
Estudiar los efectos morfológicos y fisiológicos en células epiteliales
provenientes de CaP humano cultivadas en presencia y ausencia de
células estromales del mismo origen usando un modelo de estudio
representativo del tumor original.
Objetivos específicos
 Determinar la secreción de PSA, la respuesta hormonal y
la actividad proliferativa en células epiteliales provenientes
de CaP humano en presencia (co-cultivo) y ausencia de células
estromales.
 Describir las características morfológicas ultraestructurales
de las células epiteliales provenientes de CaP humano
cultivadas en presencia (co-cultivo) y ausencia de células
estromales.
MATERIALES Y MÉTODOS
Próstatas obtenidas de
prostectomías radicales a
pacientes del hospital institucional

Retirar tejido
hiperplásico

Muestras recibidas en medio de
cultivo estéril con inhibidores de
RNasa

60
min.

De las próstatas adquiridas,
se tomaron 8
Inclusión en parafina

A cada una se les realizo una evaluación
histopatológica por medio de la determinación de
un score de Gleason.

Score
4-6
Trozos de tejido prostático de
1mm3

45 min.
a 37ºC
Medio de cultivo para eliminar a las
células sanguíneas indeseadas.

Se van recolectando
las células estromales
dispersadas

Lavado con agua y agitación y luego
una digestión en:
 Colagenasa (2,5mg/mL)
 Hialuronidasa (1mg/mL)
 Desoxirribonucleasa (0,01 mg/mL)

Agregados de células epiteliales

Colagenasa por otras 8-12 hrs.

2-3 hrs.
a 37ºC
Las células epiteliales agrupadas fueron lavadas y
puestas en placas de cultivo

Las células estromales agrupadas fueron lavadas
y puestas en placas de cultivo
Transferrina humana
Insulina
Factor de crec. epidermal
Vitamina A y E
Hidrocortisona
Selenito de sodio
Dihidrotestosterona

Co-cultivos de células
epiteliales y estromales
método de Janecki y
Steinberger (1987)

B

A
C
D

Esquema del sistema bicameral. Las células epiteliales (C) fueron cultivadas en
una cámara con fondo de PET translúcido (B). Las células estromales (D) fueron
cultivadas en una placa de cultivo común (A).
MICROSCOPÍA
ELECTRÓNICA
Muestra de co-cultivo y cultivo
células epiteliales

60
minutos
a T°
ambiente

Glutaraldehído al 4% en buffer fosfato 100mM, pH 7,4.

Post-fijación con tetróxido de osmio al 1%.

Deshidratación en etanoles de concentración ascendente

Inclusión en Epón 812
Microfotografía obtenida por medio
de
microscopio
electrónico
de
transmisión (MET) para el análisis
de la morfología ultraestructural de
las células epiteliales en un sistema
de co-cultivo.
(A) Microfotografía de bajo aumento
que muestra la relación que se
establece
entre
las
células
epiteliales derivadas de CaP de
citoplasma granular y homogéneo.
Destacan las interdigitaciones entre
las membranas de las células
vecinas.

(B, C) Microfotografías tomadas con
alto aumento con la intención de
revelar
los
detalles
ultraestructurales
de
las
prolongaciones de membrana de las
células
epiteliales.
Las
prolongaciones
digitiformes
contienen
un
citoplasma
sin
variantes con respecto al resto de la
célula.


Aquellas células epiteliales que se co-cultivaron con células
estromales, presentaron prolongaciones digitiformes que
normalmente no se observan en cultivos sin células estromales.



Por lo que la aparición de estas estructuras depende de alguna
manera de la presencia de las células estromales y esto en parte,
permite evidenciar que ocurren interacciones paracrinas.



Las estructuras observadas podrían relacionarse con propiedades
invasivas y metastásicas de las células tumorales epiteliales.



Esta observación puede impulsar futuros estudios que podrían
ayudar a comprender mejor el origen de estos cambios en el
citoesqueleto de la célula epitelial durante el desarrollo del CaP.
PRUEBAS BIOQUÍMICAS
Secreción de PSA en cultivos de células epiteliales y estromales de CaP humano. Las células epiteliales
y estromales fueron aisladas y cultivadas por separado. Ambos cultivos se mantuvieron en presencia de 10 nM
de DHT. La secreción de PSA se evaluó cada 48 hrs. en ambos cultivos. (A) Corte histológico de tejido
prostático representativo del grado de diferenciación del adenocarcinoma usado para estos experimentos
(score de Gleason 4-6). (B,C) Gráficos de barras que entregan información relevante acerca de la secreción de
PSA en el cultivo de células estromales (B) y en cultivos de células epiteliales (C).
Secreción de antígeno prostático específico en co-cultivos. Los co-cultivos se mantuvieron en presencia
de 10 nM de DHT. Las mediciones de PSA se hicieron cada 48 hrs. (A) Imagen de corte histológico de tejido
prostático que indica el grado de diferenciación del tumor que se utiliza para estos experimentos (Gleason 46). (B) Gráfico de barras que entrega información respecto a la secreción de PSA en el sistema de co-cultivo.
Los niveles de PSA detectados en el medio de cultivo fueron significativamente mayores y sostenidos que en
los cultivos exclusivamente de células epiteliales.
Respuesta a andrógenos por parte del cultivo de células prostáticas . La secreción de PSA fue evaluada en ausencia y
presencia de diferentes concentraciones de dihidrotestosterona (DHT) (1-100 nM). Los niveles de PSA se evaluaron en el medio de
cultivo cada 48 h. (A) Imagen de un corte histológico de tejido prostático representativo del tumor utilizado en estos experimentos
(Score Gleason 4-6). (B) La secreción de PSA en cultivos exclusivos de células epiteliales no muestra efectos relacionados al DHT.
(C) la secreción de PSA en co-cultivos bicamerales aumenta significativamente por la presencia de cualquiera de las concentraciones
de DHT probados.
Evaluación de la tasa de proliferación celular de los cultivos de células epiteliales vs.
co-cultivos en sistema bicameral a través de espectrofotometría. Se aprecia un aumento
significativo en los co-cultivos. Los valores representan la media ± la desviación estándar de
seis experimentos diferentes. Inserto: curva de calibración que grafica el número de células
epiteliales/cm3 en función de la densidad óptica expresada en nanómetros (nm).
INMUNOCITOQUÍMICA PARA
MICROSCOPÍA DE FLUORESCENCIA
Cultivos en portaobjetos

30
minutos
a T°
ambiente

Paraformaldehído al 3% + Sucrosa al 2% en PBS

Bloqueo con PBS + Glicina 20mM y albúmina de suero bovino

Anticuerpos primarios específicos preparados en conejo contra
 Antígeno tumoral de CaP (PCTA-1) para identificar células epiteliales
 Vimentina para identificar células estromales

Anticuerpos secundarios contra conejo
conjugados con FIT-C
Fotografías de Inmunocitoquímica aplicada a los cultivos celulares. Las células fueron tratadas con
anticuerpos contra PCTA-1 y vimentina los que se detectaron con IgG conjugadas con FITC. (A, C) Fotografías
tomadas a bajo aumento que muestra la mayoría de las células fuertemente marcadas. (B, D) Fotografías
tomadas a alto aumento que muestran la distribución de la fluorescencia en la célula.
Referencias

1. Castellón E, Venegas K, Sáenz L, Contreras H, Huidobro C. Secretion of
prostatic specific antigen, proliferative activity and androgen response in
epithelial-stromal
co-cultures
from
human
prostate
carcinoma.
International journal of andrology. 2005.
2. Ferlay J, Shin HR, Bray F, Forman D, Mathers C and Parkin DM. GLOBOCAN
2008 v2.0, Cancer Incidence and Mortality Worldwide: IARC CancerBase
No. 10 [Internet]. Lyon, France: International Agency for Research on
Cancer; 2010.
3. Celià-terrassa T, Meca-cortés Ó, Mateo F, Paz AM De, Rubio N, Arnal-estapé
A, et al. Epithelial-mesenchymal transition can suppress major attributes of
human epithelial tumor-initiating cells. Journal of Clinical Investigation.
2012.

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Cáncer Prostático y MET

  • 1. International Journal of Andrology, 28, 39–46. 2005 SECRECIÓN DE ANTÍGENO PROSTÁTICO ESPECÍFICO, ACTIVIDAD PROLIFERATIVA Y RESPUESTA A ANDRÓGENOS DE CO-CULTIVOS DE CÉLULAS EPITELIALES-ESTROMALES DERIVADAS DE CÁNCER PROSTÁTICO HUMANO ENRIQUE CASTELLÓN, KARINA VENEGAS, LEONARDO SÁENZ, HÉCTOR CONTRERAS and CHRISTIAN HUIDOBRO Physiology and Biophysics Program, Institute of Biomedical Sciences, Faculty of Medicine, University of Chile, and Urology Department, Clinic Hospital J.J., Aguirre, University of Chile, Chile Tutor Dr. Enrique Castellón Universidad de Chile Facultad de Medicina Escuela de Tecnología Médica Curso de Microscopía Electrónica Presentador Kenneth Walker
  • 2. INTRODUCCIÓN  Con un estimado de 258.000 muertes para el 2008, el CaP se convierte en la sexta causa principal de muerte por cáncer en los hombres a nivel global.  En Chile, se estima que actualmente más de 1.700 pacientes mueren anualmente debido a este cáncer  El diagnóstico precoz mejora el pronóstico del paciente. Sin embargo, esto resulta complicado principalmente por la ausencia de síntomas en las etapas iniciales de la patología.
  • 3.  El tratamiento para CaP es la prostectomía. Sin embargo, más del 30% de los pacientes vuelven a padecer cáncer después de la cirugía.  Intentando comprender la mecánica del desarrollo del CaP, investigadores plantean la existencia de una relación paracrina entre las células epiteliales y estromales en el contexto del CaP.  Sin embargo, trabajan con líneas derivadas de metástasis que podrían no ser fielmente representativas de los eventos reales en el desarrollo del tumor primario en la próstata.
  • 4. OBJETIVO GENERAL Estudiar los efectos morfológicos y fisiológicos en células epiteliales provenientes de CaP humano cultivadas en presencia y ausencia de células estromales del mismo origen usando un modelo de estudio representativo del tumor original. Objetivos específicos  Determinar la secreción de PSA, la respuesta hormonal y la actividad proliferativa en células epiteliales provenientes de CaP humano en presencia (co-cultivo) y ausencia de células estromales.  Describir las características morfológicas ultraestructurales de las células epiteliales provenientes de CaP humano cultivadas en presencia (co-cultivo) y ausencia de células estromales.
  • 6. Próstatas obtenidas de prostectomías radicales a pacientes del hospital institucional Retirar tejido hiperplásico Muestras recibidas en medio de cultivo estéril con inhibidores de RNasa 60 min. De las próstatas adquiridas, se tomaron 8 Inclusión en parafina A cada una se les realizo una evaluación histopatológica por medio de la determinación de un score de Gleason. Score 4-6
  • 7. Trozos de tejido prostático de 1mm3 45 min. a 37ºC Medio de cultivo para eliminar a las células sanguíneas indeseadas. Se van recolectando las células estromales dispersadas Lavado con agua y agitación y luego una digestión en:  Colagenasa (2,5mg/mL)  Hialuronidasa (1mg/mL)  Desoxirribonucleasa (0,01 mg/mL) Agregados de células epiteliales Colagenasa por otras 8-12 hrs. 2-3 hrs. a 37ºC
  • 8. Las células epiteliales agrupadas fueron lavadas y puestas en placas de cultivo Las células estromales agrupadas fueron lavadas y puestas en placas de cultivo
  • 9. Transferrina humana Insulina Factor de crec. epidermal Vitamina A y E Hidrocortisona Selenito de sodio Dihidrotestosterona Co-cultivos de células epiteliales y estromales método de Janecki y Steinberger (1987) B A C D Esquema del sistema bicameral. Las células epiteliales (C) fueron cultivadas en una cámara con fondo de PET translúcido (B). Las células estromales (D) fueron cultivadas en una placa de cultivo común (A).
  • 11. Muestra de co-cultivo y cultivo células epiteliales 60 minutos a T° ambiente Glutaraldehído al 4% en buffer fosfato 100mM, pH 7,4. Post-fijación con tetróxido de osmio al 1%. Deshidratación en etanoles de concentración ascendente Inclusión en Epón 812
  • 12. Microfotografía obtenida por medio de microscopio electrónico de transmisión (MET) para el análisis de la morfología ultraestructural de las células epiteliales en un sistema de co-cultivo. (A) Microfotografía de bajo aumento que muestra la relación que se establece entre las células epiteliales derivadas de CaP de citoplasma granular y homogéneo. Destacan las interdigitaciones entre las membranas de las células vecinas. (B, C) Microfotografías tomadas con alto aumento con la intención de revelar los detalles ultraestructurales de las prolongaciones de membrana de las células epiteliales. Las prolongaciones digitiformes contienen un citoplasma sin variantes con respecto al resto de la célula.
  • 13.  Aquellas células epiteliales que se co-cultivaron con células estromales, presentaron prolongaciones digitiformes que normalmente no se observan en cultivos sin células estromales.  Por lo que la aparición de estas estructuras depende de alguna manera de la presencia de las células estromales y esto en parte, permite evidenciar que ocurren interacciones paracrinas.  Las estructuras observadas podrían relacionarse con propiedades invasivas y metastásicas de las células tumorales epiteliales.  Esta observación puede impulsar futuros estudios que podrían ayudar a comprender mejor el origen de estos cambios en el citoesqueleto de la célula epitelial durante el desarrollo del CaP.
  • 15. Secreción de PSA en cultivos de células epiteliales y estromales de CaP humano. Las células epiteliales y estromales fueron aisladas y cultivadas por separado. Ambos cultivos se mantuvieron en presencia de 10 nM de DHT. La secreción de PSA se evaluó cada 48 hrs. en ambos cultivos. (A) Corte histológico de tejido prostático representativo del grado de diferenciación del adenocarcinoma usado para estos experimentos (score de Gleason 4-6). (B,C) Gráficos de barras que entregan información relevante acerca de la secreción de PSA en el cultivo de células estromales (B) y en cultivos de células epiteliales (C).
  • 16. Secreción de antígeno prostático específico en co-cultivos. Los co-cultivos se mantuvieron en presencia de 10 nM de DHT. Las mediciones de PSA se hicieron cada 48 hrs. (A) Imagen de corte histológico de tejido prostático que indica el grado de diferenciación del tumor que se utiliza para estos experimentos (Gleason 46). (B) Gráfico de barras que entrega información respecto a la secreción de PSA en el sistema de co-cultivo. Los niveles de PSA detectados en el medio de cultivo fueron significativamente mayores y sostenidos que en los cultivos exclusivamente de células epiteliales.
  • 17. Respuesta a andrógenos por parte del cultivo de células prostáticas . La secreción de PSA fue evaluada en ausencia y presencia de diferentes concentraciones de dihidrotestosterona (DHT) (1-100 nM). Los niveles de PSA se evaluaron en el medio de cultivo cada 48 h. (A) Imagen de un corte histológico de tejido prostático representativo del tumor utilizado en estos experimentos (Score Gleason 4-6). (B) La secreción de PSA en cultivos exclusivos de células epiteliales no muestra efectos relacionados al DHT. (C) la secreción de PSA en co-cultivos bicamerales aumenta significativamente por la presencia de cualquiera de las concentraciones de DHT probados.
  • 18. Evaluación de la tasa de proliferación celular de los cultivos de células epiteliales vs. co-cultivos en sistema bicameral a través de espectrofotometría. Se aprecia un aumento significativo en los co-cultivos. Los valores representan la media ± la desviación estándar de seis experimentos diferentes. Inserto: curva de calibración que grafica el número de células epiteliales/cm3 en función de la densidad óptica expresada en nanómetros (nm).
  • 20. Cultivos en portaobjetos 30 minutos a T° ambiente Paraformaldehído al 3% + Sucrosa al 2% en PBS Bloqueo con PBS + Glicina 20mM y albúmina de suero bovino Anticuerpos primarios específicos preparados en conejo contra  Antígeno tumoral de CaP (PCTA-1) para identificar células epiteliales  Vimentina para identificar células estromales Anticuerpos secundarios contra conejo conjugados con FIT-C
  • 21. Fotografías de Inmunocitoquímica aplicada a los cultivos celulares. Las células fueron tratadas con anticuerpos contra PCTA-1 y vimentina los que se detectaron con IgG conjugadas con FITC. (A, C) Fotografías tomadas a bajo aumento que muestra la mayoría de las células fuertemente marcadas. (B, D) Fotografías tomadas a alto aumento que muestran la distribución de la fluorescencia en la célula.
  • 22. Referencias 1. Castellón E, Venegas K, Sáenz L, Contreras H, Huidobro C. Secretion of prostatic specific antigen, proliferative activity and androgen response in epithelial-stromal co-cultures from human prostate carcinoma. International journal of andrology. 2005. 2. Ferlay J, Shin HR, Bray F, Forman D, Mathers C and Parkin DM. GLOBOCAN 2008 v2.0, Cancer Incidence and Mortality Worldwide: IARC CancerBase No. 10 [Internet]. Lyon, France: International Agency for Research on Cancer; 2010. 3. Celià-terrassa T, Meca-cortés Ó, Mateo F, Paz AM De, Rubio N, Arnal-estapé A, et al. Epithelial-mesenchymal transition can suppress major attributes of human epithelial tumor-initiating cells. Journal of Clinical Investigation. 2012.