METODOS DE EXPLORACIÓN Y DIAGNÓSTICO EN PATOLOGÍA BUCAL
1. UNIDAD I
METODOS DE EXPLORACIÓN
Y DIAGNÓSTICO EN
PATOLOGÍA BUCAL
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2. HISTORIA CLINICA.
Conjunto de documentos escritos,
gráficos e imagenológicos o de cualquier
otra índole, en los cuales el personal de
salud realiza registros, anotaciones y
certificaciones correspondientes a su
intervención profesional, con arreglo a
las disposiciones sanitarias.
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3. Es un documento por medio del cual
recopilamos datos referentes a una
persona en particular con el fin de
llegar a un diagnostico pronóstico y
tratamiento.
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4. HISTORIA CLINICA
Se divide en
1. Interrogatorio o anamnesis
2. Exploración física
3. Métodos de laboratorio y gabinete
4. Recopilación y análisis de lo anterior
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5. 1.Interrogatorio o Anamnesis
Ficha de identificación
Motivo de la consulta
Antecedentes generales
Antecedentes heredo-familiares
Antecedentes personales no patológicos
Antecedentes quirúrgicos
Antecedentes personales patológicos
Antecedentes alérgicos
Padecimiento actual
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6. Ficha de identificación
Paciente de 5 años de edad
Masculino
Radica en el DF
estudiante de preescolar
Padecimiento actual
El paciente se queja de dolores múltiples que
comenzaron como ampollas localizadas en la cara
alrededor de la boca, de tres días de duración. Antes
durante el año ocurrieron dos episodios de lesiones
similares. Las lesiones anteriores se curaron
espontáneamente entre diez y catorce días.
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7. Tratamiento
Medicamentos antivirales por vía
oral,
Lavar suavemente las ampollas con
agua y jabón antiséptico.
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8. EXPLORACIÓN EXTRA ORAL E
INTRAORAL
Se utilizan todos los
métodos de
exploración:
-inspección
-palpación
-percusión
-auscultación
-olfación
-exploración
armada
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9. Color Humedad
Forma Petequias
Textura Anomalías
Consistencia Movilidad
Volumen Inflamación
Deformidades Sensibilidad
Tumoraciones
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11. Examen extra bucal
1. Apreciación generalizada del paciente
2. Cara
3. Área de ganglios linfáticos
submentonianos y submaxilares
4. Glándulas parótidas
5. Área de la ATM
6. Orejas (detrás)
7. Áreas de del cuello y de los ganglios
linfáticos cervicales
8. Área de la glándula tiroidesLABORATORIO DE INMUNOLOGÌA
12. Expresión facial
1. Estado de ánimo del paciente
2. Revelar ansiedad
3. Depresión
4. Capacidad mental
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13. Piel y órganos terminales
1. Padecimientos de red vascular
2. Telangiectasias
3. Edema
4. Eritema
5. Petequias
6. Hematoma
7. Hemangioma
8. Melanosis
9. Vitíligo
10. Tatuajes adquiridos
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14. ¤ Alopecia
¤ Distribución del pelo, posición o
cantidad anormales
¤ Sudor
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15. Enfermedades por presencia de:
- Descamación
- Abrasión
- Ulceración
- Escamas
- Cicatrices
- Pápulas
- Maculas
- Vesículas
- Ampollas o postulas
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16. La piel puede ser:
- Roja
- Pálida
- Ictérica
- Cianótica
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17. GLÁNDULA PAROTIDA
La palpación de las
glándulas y sus
conductos se hará
bimanual, desde el
exterior
Para diferenciar el
masetero de la
glándula se le pide al
paciente que junte los
dientes fuertemente
con lo cual se
identifica el músculo.
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18. Sialografía: se realiza inyectando un
medio de contraste yodado radio opaco
de manera retrógrada a través del
conducto de Stenon o Wharton.
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19. Glándula
submandibular
Suele no ser palpable
a examinadores
inexpertos dada su
consistencia blanda
y sus contornos
poco netos.
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20. Glándula
sublingual
Son las más
pequeñas y
profundas, se
hallan en el piso de
boca.
Normalmente no son
palpables, están
dentro de la
curvatura anterior
de la mandíbula,
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21. ATM
Se hará una
inspección de:
apertura
cierre
protrusión
retrusión
lateralidad
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22. Se palpan las
articulaciones
temporomandibular
es en busca de
sensibilidad, dolor
e inflamación.
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25. Exploración
Cuando no hay patología del ganglio:
Se palpa un pequeño tumor elástico
móvil sobre los planos profundos
La piel se desliza sobre este
No doloroso y sin aumento de
tamaño
Examinación de los nodos preauriculares y linfáticos cervicales
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26. Examen intrabucal
Labios y comisuras labiales
Mucosa labial, vestíbulo bucal, encías,
mucosa vestibular (carrillos) y papilas de
los conductos parotídeos.
Paladar duro y encía palatina
Paladar blando
Áreas amigdalinas y faringe posterior
Lengua: dorso, bordes laterales
(amígdalas linguales)
Lengua: superficie inferior
Piso de la boca y encía lingual
Dientes (oclusión, caries)
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27. Labios y comisura labial, color y movilidad
simétrica de los labios, cambios en las
características de la piel y mucosas
(ulceraciones, induraciones y sensibilidad).
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31. Variaciones:
- Color
- Consistencia
- Morfología
- Función
- Volumen
- Movimientos
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32. EXPLORACION INTRA BUCAL
Mucosas, es necesario prestar mucha
atención a las características de la mucosa
de la boca y mejillas evaluando el color,
textura, sequedad, presencia de
membranas, ulceraciones, tumor y
alteraciones de la sensibilidad.
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33. LABIOS
Con la boca del
paciente cerrada,
inspeccione y palpe
Eliminar por completo
la pintura de labios
antes de la inspección.
Si el sujeto utiliza
dentaduras, pedirle
que la extraiga para
poder observar la
mucosa subyacente
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34. CARRILLOS
Separando ambos
labios hacia fuera con
los dedos o un espejo
dental observaremos el
estado de las mucosas
Empujando con los
dedos o con la palma
de la mano desde el
ángulo y rama
mandibular hacia
delante se hallara
la presencia de
secreción salival o
líquido patológico en el
conducto glandular. LABORATORIO DE INMUNOLOGÌA
35. ENCÍA
Empleando guantes palpar las encías ,no
debe haber dolor
Con separadores bucales tendremos una
amplia visión de la encía.
Se utilizara la sonda periodontal para verificar
las encías hinchadas con huecos aumentados
entre dientes y los bordes de la encía o con
bolsas llenas de desecho en los bordes
dentarios se asocian con gingivitis o
parodontitis.
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40.
PISO DE LA BOCA
Con la mano aplicada
exteriormente se tratará
de elevar el suelo de la
boca y con el dedo
aplicado dentro se
recorrerán los trayectos
de los conductos
salivales.
Invitaremos al paciente a
levantar la lengua hasta
tocar el paladar y
observaremos
detenidamente los fondos
de saco gingivales,
recorriendo la zona hasta
la base lingual
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41. PALADAR
Con la mano enguantada
se introduce el dedo
índice con el cual se
palpara.
Observar el estado de su
fibromucosa
(inflamaciones, heridas,
traumatismos por
prótesis).
En el paladar blando
comprobaremos la
posible existencia de
parálisis del velo.
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42. Paladar duro
- Separa la cavidad bucal de las fosas
nasales
- Recubierto por mucosa que se
adhiere íntimamente al periostio
- Ocupa los dos tercios anteriores y
presenta superficie curva, cóncava,
surcada de estrías transversales.
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44. Dientes y oclusión
Con los labios abiertos debe
examinarse la disposición de los
dientes y la oclusión dentaria.
Las piezas dentarias que faltan y el
estado de las restantes (presencia de
caries).
También debe observarse la movilidad
de la mandíbula, así como el grado y
simetría en la apertura bucal.
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47. 2.1 Azul de toluidina
1. Visualizar en una forma
más evidente los detalles
de la mucosa.
2. Realzar las
características de las
lesiones ya detectadas,
contrastando los márgenes
de la lesión con los de la
mucosa vecina normal.
3. Detectar lesiones
anormales más rápida y
eficientemente ya que
sobresalen los detalles de
su superficie
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48. El azul del toluidina que se mancha puede
detectar el cáncer
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50. Biopsia
Procede del griego bio, vida y opsia, ver.
La traducción literal de la palabra sería
ver la vida.
Remoción de un pedazo de tejido del
organismo viviente con el propósito de
realizar el examen microscópico y el
diagnóstico.
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51. Tipos
Biopsia excisional
Extirpación completa de un órgano o
un tumor, generalmente sin
márgenes, que se realiza
normalmente en quirófano bajo
anestesia general o local y con
cirugía mayor o menor
respectivamente.
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56. Biopsia por punch
Se realiza en condiciones de
anestesia local.
La piel se estira en sentido
perpendicular a las líneas de tensión
de la piel relajada, siempre que sea
posible o necesario.
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58. El punch se sostiene entre el pulgar
y el índice, se emplaza sobre la capa
superior de la piel y se empuja hacia
abajo en sentido horario con una
presión moderada en un movimiento
de “atornillamiento”.
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60. La muestra de piel obtenida
sobresale por sí misma sobre el nivel
de piel circundante.
Ésta debe cogerse y extraerse
cuidadosamente con un pequeño
juego anatómico de pinzas evitando
cualquier aplastamiento.
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64. FIJADORES
(para tejidos)
Detienen el proceso de Autolisisnatural
–Formol, Formaldehído, Formalina, al
10% a partir de la presentación
comercial que porta etiqueta del
30% (Buffer para
Inmunohistoquímica).
Zenker
Bouin
Alcohol 96
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65. INDICACIONES
Una lesión que persiste más de 2
semanas sin aparente base etiológica
Una lesión que no responde al
tratamiento a los 10-14 días, incluso
después de eliminar el irritante local
Cambios hiperqueratòsicos
persistente en tejidos superficiales
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66. Un crecimiento palpable o visible
debajo de tejido relativamente
normal
Cambios inflamatorios de causa
desconocida que persisten por un
periodo largo de tiempo
Lesiones que interfieren con la
función local, como son los
papilomas, fibromas, etc
Una lesión que tiene características
de malignidad
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67. CONTRAINDICACIONES
Lesiones rojas: como son
hemangiomas puesto que habrá
hemorragias
Inflamaciones persistentes
Melanomas: es una enfermedad de
la piel consistente en una
transformación cancerosa de los
melanocitos, que son las células
que dan color a la piel.
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68. MANEJO DE LA MUESTRA
1. Materiales de anestesia local
2. Bisturí con hoja del # 15
3. Pinzas de tejido
4. Esponjas de gasa
5. Porta - agujas
6. Material de sutura
7. Hemostato pequeño
8. Tijeras quirúrgicas
9. Hoja de solicitud de biopsia
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69. Paso 1. Evaluar cuidadosamente al
paciente y la lesión haciendo un estudio
completo de la historia medica, la historia
de la lesión y de los resultados del examen
clínico. Hacer un diagnóstico diferencial.
Lesión que requiere eliminación.
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70. Paso 2. Anestesiar el área con una técnica de bloqueo
anestésico si es posible.
Las suturas pueden utilizarse para mover y controlar la
lesión y tensar los tejidos blandos durante la eliminación.
Atravesando la lesión con
sutura.
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71. Paso 3. Con tensión en la lesión, se
hacen incisiones elípticas alrededor
de ella que la rodean por completo.
Paso 4. Después de que la mucosa y
el tejido subyacente han sido
cortados, la lesión se separa del área
circundante mediante la combinación
de una disección punzante y roma.
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73. Paso 6. El tejido extirpado se coloca en un tarro con
formalina, se completa el informe apropiado, y la biopsia,
se envía a un laboratorio de patología oral para el examen
histológico.
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74. Paso 7. Suturar inmediatamente después de
haber realizado la biopsia
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75. Paso 8. Generalmente el examen postoperatorio a
las dos semanas muestra una curación completa.
Esta lesión fue diagnosticada como fibroma por
irritación.
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77. Seleccionar un pequeño fragmento de la
biopsia, de 0,5 cm de diámetro,
colocarlo en un frasco estéril,
sellarlo herméticamente
y roturarlo para enviarlo al
laboratorio de microbiología
para su estudio.
Estudiarse directamente y cultivarse para
bacterias aerobias, anaerobias,
micobacterias y hongos.
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78. El resto de la biopsia se entrega
directamente al servicio patología, en
un medio de fijación.
79. Fijación
Detendrá la lisis natural
Deshidratación (alcoholes)
Es fundamental para poder evaluar los
márgenes de la lesión en el estudio
Histológico
Aclaramiento (Xilol, Cloroformo)
Impregnación en Parafina
(para hacer cortes)
Embeber (bloquear)
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82. DE TEJIDOS TINCIÓN DE TEJIDOS
“CARRO” DE TINCIÓN
HEMATOXILINA Y EOSINA
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83. ESCISIÓN DE UN HEMANGIOMA
CAPILAR
Una paciente de 21 años de edad que
se presentó con una lesión pigmentada
persistente en su labio inferior que ha
permanecido inalterada durante varios
años.
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84. Bisturí preparado para le incisión
inferior que ha permanecido
inalterada durante varios años.
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85. Lesión eliminada : Una sutura
colocada
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86. Lesión preparada para ser sometida
al examen histológico.
Apariencia a las 2 semanas
postoperatorio.
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87. *Informe patológico DE ESCISIÓN DE UN
HEMANGIOMA CAPILAR
Descripción macroscópica
Enviado en formalina, es un espécimen de tejido
blando que mide 1,6 x 0,8 x 0,9 cm en las
dimensiones mayores. El espécimen es
biseccionado y sometido al procesado.
Descripción microscópica
Microscópicamente el espécimen es el de un
hemangioma capilar caracterizado por la
abundancia de pequeños espacios revestidos de
endotelio, rellenos de eritrocitos y situados en un
tejido conectivo fibroso laxo. El espécimen está
revestido por un epitelio escamoso estratificado.
No hay evidencia de malignidad.
Diagnóstico
Hemangioma capilar
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88. Citologia exfoliativa
Se define como el estudio e
interpretación de los caracteres de
las células que se descaman, natural
o artificialmente, de la mucosa oral.
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89. Indicaciones
Lesión difusa de la mucosa que por
su extensión exigiese varias biopsias
incisionales.
Lesiones superficiales en un paciente
que ha recibido radioterapia.
Pacientes que se niegan a la biopsia
por diferentes razones
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90. Contraindicaciones
Lesiones profundas cubiertas por
tejido normal.
Lesiones queratóticas.
Lesiones con superficies necróticas
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91. Consiste en observar al microscopio
la morfología de las células
epiteliales superficiales después de
su toma, fijación y tinción.
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92. Es una técnica sencilla, no agresiva,
relativamente indolora y bien
aceptada por los pacientes.
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93. En relación a la toma de la muestra
el uso del cytobrush parece
aumentar el número de células
recogidas por muestra, y permite
una mejor distribución de las mismas
en el portaobjetos, lo que podría
aumentar la sensibilidad de la
técnica
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95. Metodología básica
Tomado o recogida del material
Se hace con una espátula de
madera, plástico o de metal
inoxidable sobre la zona sospechosa
o por medio de un leve raspado de
las zonas superficiales
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104. Es un estudio que va desde la toma y
transporte de muestras hasta el
aislamiento e identificación de lo agentes
etiologicos, por procedimientos especiales
de cultivo y pruebas diferenciales de las
especies aisladas.
Cultivos
Para hongos.
Para bacterias.
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105. Las cepas microbiológicas examinadas
para conocer su sensibilidad antibiótica
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108. 2 tipos de tinciones
Positivas: se emplea el uso de colorantes que
tiñen al microorganismo y no al medio.
Tinciones
Simples: uso de un solo colorante. Sirven para
distinguir formas.
Diferenciales: uso de un colorante inicial y luego
un colorante de contraste. Sirven para diferenciar
distintos tipos de células (Ejemplo: tinción Gram.)
Negativas: se emplea el uso de colorantes que
no tienen afinidad por los constituyentes celulares
(Ejemplo: nigrosina). Tiñen al medio y no a las
bacterias, sirven para ver células con capsulas de
mucopolisacáridos.
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