Identificación de Cocaína Pura o Adulterada

Manual de Técnicas Analíticas en el Laboratorio de Toxicología

Capítulo 16
Investigación de Drogas de Abuso y Productos de
Corte
Dr. Luis Alberto Ferrari
Perito I del Cuerpo Químico Forense. Profesor de Química Forense en la Universidad de
Morón.

Esquema Analítico para la identificación de cocaína pura o adulterada
Introducción
El esquema analítico que se utiliza para la identificación de cocaína pura o adulterada se ajusta
a determinar la composición cualitativa de una sustancia que, por su aspecto, puede ser
clorhidrato de cocaína pura o con otros componentes de uso común que actúan como
adulterantes. Este esquema de identificación sufre modificaciones periódicas para considerar la
incorporación de nuevas sustancias utilizadas como adulterantes.
En la actualidad no se registra el agregado de sustitutos atípicos del clorhidrato de cocaína
como anestesina, novocaína, ácido bórico. Se comprueba usualmente la presencia de xilocaína
(Lidocaína). En la práctica, los sustitutos o adulterantes no deben aumentar el precio del
producto destinado al consumo y lo frecuente es que sean mucho más baratos. Entonces, por
razones de competencia y a fin de retener o aumentar un grupo consumidor estable, se
observa una tendencia a reducir el precio del producto reemplazando los clásicos anestésicos
locales por azúcares (glucosa, lactosa) y ocasionalmente, sacarosa, en proporciones variables.
En nuestro medio los Profesores Guatelli, M y García Fernández, JC han ofrecido un método
de análisis tal como se consigna a continuación.

Ensayos para la determinación de cocaína:

Ensayo de solubilidad
Es importante que en este ensayo se disponga de una muestra homogénea. Con frecuencia se
observa un polvo blanco y fino, con grupo en número y tamaño variable por la presencia de
porciones húmedas. En estos casos debe pulverizarse la muestra, fraccionarla – si es
suficiente – en un mortero común de capacidad adecuada, separando con una espátula el
material que se adhiere al mortero. El producto pulverizado se tamiza para separar las
partículas más gruesas que se reducen a polvo fino nuevamente mediante mortero. Una vez
obtenida la pulverización de toda la muestra, se la ubica en un recipiente plástico de tapa a
rosca y de boca ancha que se agita durante un tiempo según el volumen de polvo, hasta
disponer de un producto homogéneo.
Se realiza una observación a simple vista y con magnificación adecuada como una lupa común
y siempre que el producto sea homogéneo en su aspecto, se obtiene una fracción adecuada, la
cual se coloca en un tubo de ensayo limpio y seco disolviéndola en 1 o 2 ml de agua destilada.
Se agita y se observa si la muestra se disuelve total o parcialmente, pudiéndose agregar un
nuevo volumen de agua destilada para certificar la presencia de un agregado de baja
solubilidad o insoluble.
La solubilidad de la cocaína base en agua destilada, según Clarke (1969) es de 1:1300,
mientras que la del clorhidrato de cocaína en agua destilada es de 1:0,5.

Reacción de la solución acuosa
Del ensayo anterior se toman unas gotas del sobrenadante en un vidrio reloj y se registra la
reacción con papel de pH. Las soluciones de clorhidrato de cocaína pura o en mezclas con
adulterantes neutros son ligeramente ácidas, mientras que el agregado de bicarbonato de
sodio confiere una reacción ligeramente alcalina (pH 8). Los preparados que contienen sulfato

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de cocaína, presentan un pH ácido neto, de acuerdo con el grado de hidrólisis de la sal. La
cocaína base en agua destilada presenta un pH entre 8 y 8,5.

Comentarios
El ensayo de solubilidad y la reacción de la solución acuosa tienen importancia porque
permiten inferir la probable existencia de ciertos compuestos, poco o relativamente solubles,
que resultan de utilidad cuando se tratan de sustancias que se utilizan para purificar la cocaína
o agregarse a la misma para su desnaturalización. Por otra parte, la cocaína salificada puede
coexistir con ciertos adulterantes solubles que no inciden en el pH como azúcares reductores y
sacarosa.
El ácido bórico – que aparece asociado en ocasiones a otros adulterantes – es un ácido débil y
si bien el aspecto de los cristales (no del producto amorfo) es coincidente con el del la cocaína
por formar escamas blancas delgadas y de aspecto nacarado, no puede agregarse más de
cierta proporción por su baja solubilidad en frío (4 % a 18 C°) . Además, sus efectos nocivos
limitan su uso como sustituto del clorhidrato de cocaína. En muchos países el uso de ácido
bórico está prohibido incluso como preservador de alimentos.

Reactivo de Draggendorff:
El ensayo se realiza agregando una o dos gotas de reactivo a 1 o 2 ml de la solución a
investigar. En presencia de alcaloides se obtiene un precipitado de color rojo a rojo naranja.
Este reactivo por dilución se altera y precipita aún en ausencia de alcaloides, si la dilución es
mayor se separa triyoduro de bismuto de color negro. Este reactivo produce un precipitado con
otros compuestos de estructura más simple. Para asignarle valor en los ensayos genéricos
deben obtenerse respuestas positivas también con los restantes reactivos.

Reactivo pícrico:
Es una solución saturada de ácido pícrico. Es el menos sensible de los reactivos que integran
el grupo. Soluciones diluidas de los alcaloides suelen dar respuestas negativas de tal manera
que, mientras los tres restantes dan positivo, la solución pícrica no responde al ensayo. Tiene
aplicación en microcristalografía ya que produce formas típicas con ciertos alcaloides en
soluciones puras o en presencia de sustancias no interferentes.

Identificación del ión cloruro
La mayoría de los alcaloides se presentan en forma de clorhidrato, solubles en agua destilada
fría. Este anión se identifica mediante el ensayo clásico con nitrato de plata en medio nítrico.
Técnica:En tubo de ensayo limpio colocar una pequeña cantidad del producto y disolver en 2 o
3 ml de agua destilada, acidificar con unas gotas de nítrico puro y agregar gota a gota un
exceso de solución de nitrato de plata al 5 %, aparece precipitado blanco, caseoso. Si se
quieren efectuar ensayos complementarios para certificar la naturaleza del precipitado (AgCl),
deberá eliminarse el alcaloide porque de lo contrario interfiere (en caso de comprobar la
solubilidad del AgCl con amoníaco precipita el alcaloide en su forma básica).
En ocasiones se ha observado, al agregar el ácido nítrico, un color azul que cambia de
inmediato al rosado o violeta claro, imputable a la presencia de Dipirona.

Identificación del ión sulfato
A un pequeño volumen de la solución del alcaloide agregar agregar 2-3 gotas de ácido
clorhídrico puro, calentar a ebullición y agregar gota a gota, un ligero exceso de solución
acuosa de cloruro de bario al 10 %. Aparece precipitado blanco en presencia del ión sulfato.

Identificación de derivados aril-amínicos
En esta denominación se incluyen los anestésicos locales (sustitutos de la cocaína) con grupo
amino libre (Novocaína, Procaína, Benzocaína). La xilocaína o clorhidrato de Lidocaína no
responde al ensayo por tener uno de los hidrógenos sustituidos (-NH- en lugar de –NH2). El
grupo amino libre se halla en posición para con respecto a los otros sustituyentes del núcleo
bencénico. El reactivo es una solución de p-dimetilaminobenzaldehido 1 % (1 g de PABA en
100 ml de etanol 96°, acidificada con 20 gotas de ácido sulfúrico). El reactivo es estable y se
tolera hasta un débil color amarillo. Debe tomarse en cuenta que el agregado de ácido sulfúrico
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intensifica el color amarillo del reactivo de tratarse de droga adulterada. Con todo, el contraste
es neto en presencia de un sustituto con grupo amino libre.
Técnica: En placa de toque colocar unos centigramos de la muestra y agregar una o dos gotas
de reactivo. Aparece de inmediato un color amarillo intenso que adquiere color naranja según
la proporción del sustituto. Como alternativa en lugar del reactivo indicado puede utilizarse una
solución acuosa reciente del ácido 1,2 naftoquinon-4-sulfúrico al 5 % con el cual se obtiene un
color rojo. El reactivo es inestable por lo que debe prepararse en la cantidad necesaria para el
momento de la prueba.

Investigación de azúcares reductores
El agregado de azúcares reductores es una adulteración frecuente. Se emplean con
preferencia glucosa o lactosa.
Técnica: en un tubo de ensayo colocar una pequeña fracción de la muestra homogénea y 4 a 5
ml del reactivo de Benedict (17,3 g de sulfato de cobre penta hidratado, 173 g de citrato de
sodio, 100 g de carbonato de sodio anhidro completando a 1 Lt con agua destilada) calentar a
ebullición y mantener esa temperatura unos minutos. Una reacción positiva pone en evidencia
un color verde que de inmediato se transforma en color rojo ladrillo por precipitación de óxido
de cobre (I).
Comentarios: durante el calentamiento a ebullición se puede observar la separación de un
líquido oleoso que se proyecta por las paredes del tubo y que vuelve al seno del líquido al
suspender el tratamiento. Si se coloca una cantidad mayor de muestra, por enfriamiento se
separa un producto sólido blanco que generalmente se asienta sobre el reactivo. Dicho
producto es la cocaína separada por la alcalinidad del reactivo y el líquido oleoso que es la
cocaína base en estado líquido (t.f: 97-98 C°). El clorhidrato de cocaína no funde a una
temperatura inferior a 197 C°.
En la adulteración de la cocaína con azúcares reductores se realiza la identificación con
espectrofotometría infrarroja.

Investigación de ázucar común
Se trata de un adulterante ocasional. El azúcar común cristalizado se observa a simple vista,
finalmente pulverizado se adapta mejor como adulterante. Como la sacarosa no es reductora,
se procede a una hidrólisis previa, para los ensayos del poder reductor de los azúcares
resultantes.
Técnica: en un tubo de ensayo limpio colocar una fracción de la muestra junto con 5 ml de
ácido sulfúrico al 5 %, calentar suavemente a ebullición utilizando un broche de madera y
concentrar el líquido ácido hasta aproximadamente la mitad, dejar enfriar y agregar en
pequeñas fracciones carbonato de sodio en polvo hasta obtener un precipitado blanco por
precipitación o separación de cocaína base no degradada (de reacción alcalina) e incorporar el
reactivo de Benedict, procediendo como en la técnica para identificar azúcares reductores.
Comentarios: la investigación de azúcar común se ha realizado en muy contadas ocasiones,
otorgándose preferencias a las hexosas (glucosa o lactosa) en la adulteración de cocaína con
azucares que aparecen en nuestro medio.

Investigación de ácido bórico
El ácido bórico cristalizado forma escamas incoloras de brillo perlado, solubles en agua en una
proporción del 4% a 15 – 18 C°. La solución acuosa presenta reacción levemente ácida. El
ácido bórico cristalino se usa en la adulteración del clorhidrato de cocaína puro, cristalino, pero
cuando el producto fraccionado se ofrece en forma pulverulenta, se adultera con ácido bórico
amorfo. Existen varios procedimientos descriptos para la determinación de ácido bórico. Un
procedimiento práctico y simple se basa en la formación del éster metil bórico.
Técnica: en una cápsula de porcelana de 5 a 6 cm de diámetro, escrupulosamente limpia y
seca, colocar una fracción de la muestra y alrededor de 10 -15 ml de alcohol metílico p.a
ligeramente con ácido sulfúrico. Colocar la cápsula en un ambiente oscuro e inflamarla. De
inmediato se observa un color verde por formación del borato de metilo que generalmente,
prevalece sobre el color azul de la llama producida por la combustión del metanol. No se han
registrado interferencias en este ensayo. Pequeñas cantidades de ácido bórico originan un
color nítidamente perceptible en la oscuridad.
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Ensayos de identificación para cocaína
Se dispone de varios procedimientos para la identificación de cocaína. Se cuenta con el ensayo
de color en fase orgánica, ensayo de olor por formación de benzoato de metilo y cromatografía
en capa delgada (TLC).

Ensayo de color:
El ensayo de Scott aprovecha la formación de un complejo de color azulado con el tiocianato
de cobalto. Son interferencias la xilocaína, butacaína, fenciclidina y metapireno. Si se agrega a
la reacción anterior gotas de HCl concentrado y luego cloroformo, la fase orgánica adquirirá un
intenso color azul, no reaccionando los interferentes. El mecanismo de la reacción es
desconocido.

Ensayo de olor:
Se basa en la hidrólisis de la cocaína por tratamiento con hidróxido de potasio en medio
metanólico. Aprovecha la formación de benzoato de metilo de un olor característico detectable
a concentraciones bajas. Tiene una sensibilidad y especificidad muy superiores a muchos de
los ensayos indicados para cocaína.

Cromatografía:
La TLC es una técnica analítica ampliamente utilizada en cualquier laboratorio de toxicología
analítica. A través del tiempo se ha optimizado su utilización, destacándose su bajo costo,
rapidez y confiabilidad.
Se han propuesto diversos solventes para el desarrollo. Se ha propuesto un sistema que
resuelve bien la lidocaína. En los sistemas tradicionales esta no se separa convenientemente y
además, debido a la falta de reactividad de los anestésicos arilamínicos, puede interpretarse
erróneamente las manchas que se puedan visualizar.
El solvente de corrida consiste en una mezcla de cloroformo: acetona: amoníaco 40:60:III.
Como revelador se utiliza una solución de iodoplatinato de potasio (45 ml de ioduro de potasio
al 5%, 5 ml de cloruro de platino 5 % y 100 ml de agua destilada).
La Comisión de Expertos de las Naciones Unidas ha establecido que el criterio de identidad
para las drogas de abuso es la elección mínima de dos parámetros analíticos independientes y
dice textualmente: “En cualquier caso concreto, al seleccionar estos dos parámetros deberá
tenerse en cuenta la droga en cuestión y los recursos de laboratorio de que disponga el
analista. Por ejemplo dos sistemas no correlacionados de TLC se contarían como dos
parámetros. En este contexto, dos sistemas no correlacionados de TLC significan que los
sistemas de solventes o la fase estacionaria son completamente distintas”.
La cromatografía gaseosa y la HPLC también son técnicas que se adaptan bien al análisis de
una muestra de cocaína.

Aislamiento, purificación e identificación de cocaína proveniente de materiales
biológicos (sangre, orina, vísceras y saliva)
El aislamiento de cocaína a partir de tejidos humanos pueden efectuarse mediante los métodos
tradicionales basados en la desecación con sulfato de sodio anhidro de las vísceras
previamente desmenuzadas y posterior extracción etérea y clorofórmica; precipitación proteica
con sulfato de amonio, etc. Debe tenerse especial cuidado con la temperatura (mayores a 45
C°) ya que la cocaína es termolábil.
Actualmente, estos métodos de aislamiento están siendo reemplazados por la extracción en
fase sólida (SPE), que consiste en la retención del analito de interés en un relleno basado en
partículas de sílica modificada dentro de una columna plástica. Son muy utilizadas las de C-2,
C-4, C-8, C-18 o mezclas de rellenos no polares, medianamente polares o polares. La ventaja
en el uso de esta metodología radica en los altos porcentajes de recuperación, obtención de
eluatos puros, disminución del tiempo de trabajo y ahorro de reactivos.

Investigación en bebidas analcohólicas:
Técnica: En cápsula de porcelana colocar 50 a 100 ml de la bebida en estudio, calentar a baño
María con agitación periódica para eliminar el CO2, enfriar y trasvasar a una ampolla de
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decantación controlando la reacción que debe ser ácida (incorporar HCl si fuera necesario). A
continuación, extraer con cloroformo (20 ml) agitando enérgicamente unos minutos, dejar
separar las fases, decantar y proseguir con la fase acuosa ácida. Tratar dicha fase con
cantidad suficiente de NH3 puro hasta reacción alcalina y luego extraer la cocaína base con 15
ml de cloroformo. Dejar separar las fases, filtrar la fase clorofórmica por sulfato se sodio
anhidro y concentrar a menos de 45 C°. Utilizar este extracto redisuelto en cloroformo para su
análisis cromatográfico o en HCl al 1 % para reacciones de precipitación.

Estudios en sangre y orina:
La sangre, orina y saliva pueden ser procesadas por los métodos SPE de fase unida o bien
columnas con rellenos hidrofílicos del tipo Extrelut (Merck). La técnica es sumamente sencilla y
los resultados satisfactorios.
En el caso de orina existen en la actualidad placas o tiras reactivas comerciales basadas en
métodos inmunológicos y que no requieren del aislamiento del analito.
Este método es rápido, requiere de poco muestra y posee muy buena sensibilidad. Sin
embargo está sujeto a reacciones cruzadas y los resultados positivos deben ser confirmados
mediante un método analítico instrumental de óptima sensibilidad para detectar niveles bajos
de la droga madre y sus metabolitos.
Algunos estudios que se han efectuado en humanos indican que si una muestra de orina es
recolectada luego de un lapso superior a 12 hs desde el momento de consumo, muy poca
cantidad o nada de cocaína será detectada. Es decir, si la cocaína es detectada en orina, se
admite que su administración se produjo hasta 12 hs antes de la recolección de la muestra.
Este período se toma sólo como referencia ya que depende de numerosos factores, muchos de
ellos individuales. La benzoilecgonina – principal metabolito – puede ser detectada hasta 36 hs
después de la administración de cocaína y permanece en concentraciones muy bajas hasta las
60 hs. En orina, se puede encontrar entre el 1-9 % como cocaína sin metabolizar y entre 35 al
54 % como benzoilecgonina.
En cuanto a la sangre, se debe considerar la acción de enzimas sobre la cocaína que la
degradan y la ventana corta de detección de solo algunas horas en muchos casos. La
preservación de la muestra es importante ya que se ha informado que cocaína intacta en
muestras hemáticas deficientemente resguardadas pueden transformarse in situ en
compuestos como los producidos por biotransformación endógena, tal como
ecgoninametilester o benzoilecgonina.
La preservación de la muestra a baja temperatura, pH 5 y agregado de 2% de fluoruro de sodio
estabiliza la cocaína en sangre pudiendo permanecer hasta 200 días sin transformación
química dentro del reservorio (Insenschmid, 2004).

Cromatografía gaseosa (GC-FID)
(Técnica utilizada para el entrenamiento de Naciones Unidas, 1989)
Técnica:
Columna 2m, d.i. 2 –4 mm, SE – 30, OV –17.
Gas portador nitrógeno 30 ml / minuto.
Detector FID (detector de ionización por llama)
Hidrógeno a 30 ml/min, aire 450 ml/min.
Condiciones de trabajo
Temperatura del inyector: 220 C°.
Temperatura del horno: 220 C°.
Temperatura del detector: 300 C°.
Patrón interno: n- tetracosano o tetrafeniletileno.
Agente derivatizante: N-O bis- trimetilsililacetamida o N-metil-N-trimetilsililtrifluoroacetamida
(MSTFA).

Cromatografía líquida de alta presión (HPLC):
Técnica:
Columna: 160 mm, d-i: 5 mm.
Material de relleno: Octadecil-Si, diámetro de partícula 5 m.
Fase móvil
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Eluyente A: Metanol (300 ml), agua (700ml), 1 % ácido fosfórico (v/v), n-hexilamina (10,71 g/ 14
ml pH 2,5).
Eluyente B: Metanol (1000ml), 1 % ácido fosfórico (v/v) n-hexilamina (10,71 g/ 14 ml pH 2,8).
Detector UV 230 nm.

Cannabis y sus componentes
Análisis físico de los productos de Cannabis.
Los características microscópicas de Cannabis sp., permiten reconocer por técnicas
micrográficas el material que puede estar finamente particulado o en grandes trozos. Los
abundantes tricomas presentes en los distintos componentes de la planta (hoka, subunidades
floridas y frutos) son los elementos histológicos más importantes para distinguir la Cannabis
sativa. Se reconocen también pelos cistolíticos unicelulares y tricomas o pelos glandulares. Los
pelos glandulares pueden observarse como glándulas sésiles, pequeños tricomas glandulares
pluricelulares (con pie y cabezuela).

Ensayos presuntivos
Se trata de reacciones presuntivas adecuadas para realizarse en terreno, de manera de poder
descartar “a priori” el estar en presencia de material proveniente de Cannabis.

Reacción con Fast Blue:
La reacción se fundamenta en la reacción de copulación de los canabinoides con Fast Blue B
formando un compuesto de color púrpura intenso. Se utilizan dos papeles de filtro de manera
de retener en el primero compuestos fenólicos que se encuentran en Cannabis y que interfieren
con la reacción produciendo falsos positivos.
Con dos papeles de filtro se forma un embudo realizando cuatro dobleces en forma adecuada.
Se coloca una pequeña cantidad pulverizada de la planta o resina en el centro del papel. Se
añaden dos gotas de éter de petróleo de modo que penetren en el papel de filtro inferior,
dejando secar el papel de filtro inferior. Se deposita una pequeña cantidad de Fast Blue B
sólido en el centro del papel inferior. Se añaden dos gotas de agua al reactivo y se extiende la
mezcla sobre el papel con una espátula.
Si aparece un color púrpura, se está en presencia de canabinoides. Se recomienda no usar el
reactivo en exceso para evitar el amarronamiento de la mancha.

Ensayo de Duquenois-Levine:
La prueba puede realizarse sobre material pulverizado o sobre su extracto. Este se obtiene de
la siguiente forma: 100 mg de muestra se extraen con éter de petróleo. Filtrar y evaporar en
cápsula hasta sequedad.
Se coloca una pequeña cantidad del material sospechoso o su extracto. Se agregan 2 ml del
reactivo preparado con acetaldehído y vainillina en etanol al 95 % agitando 1 minuto. Se
añaden luego 2 ml de HCl conc por los bordes del tubo, dejando en reposo durante 10 minutos.
En presencia de cannabinoides aparece en la interfase una gama de colores: verde, azul y
violeta. Puede extraerse en fase clorofórmica observándose color violeta.

Cromatografía en capa delgada
Tiene por objeto poner de manifiesto los componentes canabinoides más importantes: CBD,
THC y CBN. La siembra se hace a partir de un extracto obtenido con el contacto de una hora
del material con acetato de etilo que luego se concentra por calentamiento en baño maría.
Como fase estacionaria se utiliza Sílica Gel G con indicador de fluorescencia a 254 nm.
Respecto a la fase móvil se han propuesto muchas mezclas de las cuales dos que ofrecen
resultados satisfactorios son éter de petróleo: éter etílico 80:20 y benceno: n-hexano:
dietilamina (75:30:5). Como fase móvil se utilizará una mezcla acetato de etilo: metanol:
amoníaco 90:10:II. El agente revelador es Fast Blue B en agua destilada al 1 % y posterior
exposición a vapores de amoníaco. Este revelador tiene un límite de detección de
aproximadamente 0,5 g.
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Detección de productos canábicos en sangre
Algunos investigadores han informado la dificultad de obtener muestras de sangre de sujetos
fumadores ya que los mismos evitan ser identificados. En los casos en que esto es posible se
procede de la siguiente manera:
Técnica: A 5,0 ml de sangre total se adiciona 1,0 ml de ácido tricloroacético al 10 % luego se
agrega 10 ml de n-hexano y después de agitación durante varios minutos se calienta a reflujo
durante 30 minutos.
Dejar enfriar, centrifugar, separar y reservar la capa orgánica. Con el resto se realiza una
segunda extracción utilizando el mismo volumen de solvente. Las dos fracciones orgánicas
reunidas se lavan con 10 ml de solución acuosa saturada de NaCl, se secan con sulfato de
sodio anhidro, se concentran a presión reducida hasta obtener un volumen aproximado de 0,5
ml. La concentración debe realizarse a temperatura ambiente para reducir la pérdida de
compuestos volátiles. Sobre el extracto final se efectúan ensayos cromatográficos en capa
delgada o CGL.

Cromatografía gaseosa (CG-FID)
Es utilizada fundamentalmente con fines cuantitativos. Las condiciones de trabajo pueden
resumirse a continuación:
Detector FID (ionización de llama) H2: 30 ml/min, aire 300 – 450 ml/min
Columna 2 m, d.i. (2 – 4) m
Relleno 3 % OV – 17, SE – 30, OV –1
Gas portador N2 a 30 ml/min.
Condiciones de trabajo:
Temperatura inyector: 270 C°
Temp. Horno: isotérmica 240 – 260 C°
Patrón interno: n-tetradecano, tetracosano.

Canabinoides en saliva
Hasta hoy no se ha encontrado una correlación entre la concentración plasmática de THC en
sangre y saliva. Pese a ello, se han observado niveles similares o superiores de THC en saliva
respecto al plasma de individuos fumadores de marihuana. Se sugiere que las concentraciones
de THC informadas en saliva provienen de un alojamiento o secuestro de la misma en la
cavidad bucal durante el fumado.
El resultado positivo en este fluido permite detectar la droga psicoactiva por un tiempo más
prolongado que en sangre. Si bien no se tiene gran información acerca de los metabolitos de
canabinoides en saliva, se estima que el derivado carboxilado puede provenir del mismo acto
de fumado o bien del metabolismo bucal. Por otra parte, se ha observado que la ingestión de
alimentos y bebidas comunes no interfieren en la detección de canabinoides en saliva.

Canabinoides en orina
Es el medio que permite detectar estos compuestos por un tiempo más prolongado (5 a 20
dias) dependiendo de la dosis y frecuencia de uso. Como resultado de la biotransformación
operada en el hígado, el THC es convertido, a través de varios intermediarios, en 11-nor- 9- -
THC carboxílico en orina.
Actualmente se utilizan tiras reactivas o placas comerciales basadas en técnica inmunológica.
El resultado positivo debe ser confirmado mediante un método analítico independiente.
Debe tenerse en cuenta que los valores de corte para estas estructuras se hallan en el orden
de los nanogramos, por lo que se deben extremar los cuidados en la fase de aislamiento
cuando se debe confirmar el resultado obtenido por la vía del ensayo preliminar.
Técnica: colocar 5,0 ml de orina en tubo de centrífuga de 15 ml. Adicionar 0,5 ml de solución de
HONa 1 N. Incubar en baño de agua a 50 – 60 C° durante 15 minutos. Enfriar y acidificar con
HCl 1N. Agregar 5 ml de n-hexano agitando suavemente durante 20 minutos. Centrifugar a
1000 g durante 5 minutos. Transferir la fase orgánica con la ayuda de una pipeta Pasteur a otro
tubo y evaporar a temperatura ambiente mediante corriente de aire seco.

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Resuspender el residuo con 3-4 gotas de una mezcla de cloroformo-metanol (3:1) y sembrar en
placas cromatográficas de alta resolución (HPTLC) conjuntamente con los respectivos
patrones. Desarrollar con el sistema n-heptano:n-butanol: ácido acético glacial 90:9:1 en una
cuba saturada durante 15 minutos. O bien el sistema Eter Etílico: eter de petroleo (2:8) Secar la
placa a temperatura ambiente y revelar rociando con dietilamina seguido del reactivo Fast Blue
BB al 0,1 % en agua-metanol (9:1). Esperar 10 minutos, observar y rociar nuevamente con
dietilamina.

GHB (Gamma hidroxi butirato)
Es un eficaz agente depresor del sistema nervioso central e hipnótico, no obstante su baja
potencia. A pesar de su escasa aplicación en terapeútica, se lo está utilizando en la actualidad
como droga objeto de uso indebido.
Como droga de abuso es asequible en forma sólida o líquida. A principio de 2000 la comunidad
científica comenzó a prestar atención en esta droga,
que se ha popularizado rápidamente, principalmente en
Europa y Estados Unidos.
Hasta hoy en nuestro país su consumo ha sido escaso.

El GHB es usado por fìsico-culturistas como
alternativa a los esteroides anabólicos con el objeto de
aumentar la masa muscular. Otros lo utilizan en
circunstancias recreacionales por los comprobados
efectos de euforia, deshinibición y sedación.
El mecanismo de acción no ha sido dilucidado completamente hasta hoy, si embargo se
sabe que atraviesa rápidamente la barrera hematoencefálica. Algunos investigadores se
encuentran estudiando en la actualidad su posible acción neurotransmisora y/o
neuromoduladora. Se acepta que altera la actividad dopaminérgica, dependiendo de la dosis
incorporada.
La toxicidad del GHB se caracteriza por nauseas, vómitos, sudoración profusa,
incontinencia, disturbios visuales, ataxia, bradicardia, hipotensión; respondiendo así a los
clásicos efectos colinérgicos. La depresión respiratoria puede ser severa al igual que el grado
de inconciencia; esto dependera de la respuesta particular del individuo.
Las respuestas deletereas varían según la susceptibilidad del individuo. Hay quienes
con dosis de 10 mg/Kg presentan amnesia e hipotonía; otros requieren mayores dosis. En
general la euforia se adquiere con dosis aproximadas a los 25 mg/Kg. Se ha informado que la
incorporación de 60 mg/Kg o más ha provocado coma e inconciencia permanente que aparece
a los 30-40 minutos de incorporada la droga.
Los efectos del GHB aparecen en general a los 10 minutos y el pico máximo en plasma
aparaece entre 20-45 minutos. Los efectos duran entre 2-5 horas aunque dependen de la
dosis. Incorporación de concentraciones altas pueden llevar el efecto a 6 horas de duración.
Generalmente provocan tolerancia con el uso consuetudinario.

Eliminación de GHB
Luego de una dosis intravenosa el GHB sigue una eliminación de orden “0, por lo que
no tiene en realidad una vida media y por tanto el tiempo requerido para eliminar la mitad de
una dosis se incrementa con la dosis consumida.
Generalmente se eleimina rápidamente, haciendose indetectable en plasma a las 8
horas y en orina a las 12 horas (Hoes et al, 1980).
A continuación pueden observarse los resultados hallados por Kintz, 2005. Aquí
notamos que el autor detecta hasta las 6 horas GHB en sangre, mientras que en orina
encuentra valores considerables hasta las tres horas y prácticamente indetectable a partir de
las 6 horas.

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Excreción de GHB en sangre (Kintz, 2005)

Excreción de GHB en orina (Kintz, 2005)

Analítica toxicológica
El GHB es una molécula polar de muy difícil aislamiento desde los tejidos o humores. Algunos
autores prefieren extraerla como butirolactona (GBL) ajustando el pH y posteriormente
derivatizándola para el análisis mediante GC-FID o GC-MS.
El método que exponemos a continuación no requiere la conversión a GBL y se derivatiza
químicamente por sililación.

Extracción de GHB en orina mediante técnica SPE (Telepchak et al, 2004)
1. Se toman 200 l de orina, agregando el estándar interno (GHB-d6) y 100 l de buffer
fosfato 0.1 M; pH 6.0. Mezclar y aplicar en Vortex.
2. Utilizar columna SPE con sorbente CLEAN SCREEN ZSGHB020, conteniendo 200 mg
de partículas de sílica de fase unida.
3. A continuación se aplica 3 ml de metanol p.a, seguido de 3 ml de agua deionizada y o.5
ml de buffer fosfato.
4. Introducir la muestra en el cartucho plástico del sorbente y comenzar la aspiración bajo
el sistema de cámara de presión. Tomar la muestra filtrada en tubos adecuados dentro
de la cámara.
5. Lavar la columna con una mezcla de metanol-amoníaco(99:1)
6. Evaporar a 60°C o con corriente de nitrógeno.
263


7. Agregar 200 l de dimetilformamida y 1 ml de hexano saturado con dimetilformamida,
mezclar por inversión durante 5 min. Centrifugar a 3000 rpm
Transferir la capa inferior de dimetilformamida a un tubo limpio.
8. Evaporar a 50°C utilizando corriente de aire o nitrógeno.
9. Agregar 100 l de acetato de etilo + 100 l de BSTFA (con 1% TMCS). Mezclar o agitar
en vortex. No se requiere calor.
10. Inyectar 1-2 l de muestra en el instrumental GC.

Iones monitoreados GHB-diTMS 233, 234, 235
GHB-D6-diTMS: 239, 240, 241
Couper & Marinetti, 2002, consignan otras metodologías mediante cromatografía líquida de
alta presión (HPLC), además de otras técnicas en cromatografía gaseosa.

Interpretación de resultados:
Debe tenerse gran precaución en la interpretación de los hallazgos de laboratorio, ya que este
es producido en forma endógena postmortem; más aún si existió sobrevida luego de la ingesta
de GHB que pueden arrojar concentraciones similares a las producidas luego del óbito. En este
caso la diversidad de matrices biológicas recolectadas puede ayudar a la interpretación (por
ejemplo: humor vítreo, líquido cefalorraquideo y orina).
Datos aportados por investigadores sobre niveles de GHB en organos o humores de individuos
no expuestos a GHB pueden facilitar la interpretación (ejemplo: en humor vítreo se ha
informado niveles de 1-6 mg/L en ocho casos postmortem).
Por último hacemos hincapié en la preservación del espcimen a temperaturas menores a los
0ºC y el envío urgente del material al laboratorio en caso de sospecha de consumo de GHB.

DETERMINACIÓN DE ANFETAMINAS Y DERIVADOS ANFETAMINICOS DE ANILLO
SUSTITUÍDO
En nuestro medio los compuestos anfetamínicos no constituyen las drogas de abuso de mayor
consumo. Sin embargo se ha informado un incremento de volumenes incautados a partir de los
años 90.
Dentro de los diversos compuestos de la familia, los derivados anfetamínicos de anillo
sustituído son los que más se utilizan, por ejemplo el éxtasis (metilendioximetanfetamina).
Dada la entrada en vigencia de la ley de desfederalización de drogas hacia fines de 2005, es
presumible que los laboratorios o gabinetes policiales y/o judiciales de las provincias que
adhirieron a la ley se vean exigidos a imponer una metodología de rastreo para este tipo de
sustancias.
La siguiente técnica ha sido ensayada con éxito por los autores.

Cromatografía en placa delgada (TLC)
Muestras: sangre, orina y tejidos
Método de aislamiento: Extracción en fase sólida (SPE) con sílica de fase unida C-18 o
copoliméricas mix o extracción con columnas rellenas de tipo Extrelut.
Fase estacionaria: Silicagel G con indicador de fluorescencia F 254.
Fase Móvil: Acetato de etilo-metanol-amoníaco (85:10:5)
Estándares: de diversos anfetamínicos en concentraciones de 5 ug/uL
Revelado: Secuencial del siguiente modo:
a) Fast Black K ( 10 mg/100ml, disuelto en agua destilada)
b) Solución de ácido clorhídrico al 30%(v/v).
c) Iodoplatinato de potasio acidificado
Asperjar con la solución a) observando la coloración de las máculas. Luego calientese la placa
en estufa a 80°C unos 5 minutos. A continuación se asperja con solución de HCl al 30%.
Observar el cambio de coloración y/o desaparición de la mácula.Colocar la placa en estufa o
plancha calefactora a 80°C por 5 minutos. Finalmente se rocía con solución de Iodoplatinato de
potasio, observando la coloración de las máculas.
El resultado se resume en la siguiente tabla:

264


Droga de abuso Rf Fast Black K HCl 30% Iodoplat.de potasio
Anfetamina 0.52 Rojo Naranja Rojizo s/fondo azul
Metanfetamina 0.46 Naranja Desaparece color Gris s/ fondo azul
Mescalina 0.30 Rojo Naranja Gris azulado
Metilfenidato 0.77 Naranja Desaparece color Gris
MDMA (éxtasis) 0.40 Púrpura Atenuado Gris
Fenmetracina 0.55 Naranja Desaparece color Sin color

Bibliografía

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Int. 157 (1) 46-56, 2006
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and behaviour. Forensic Sci. Rev. 14, 101-119, 2002
Baselt, R. Disposition of toxic drugs and chemicals in man. 6 Th. Ed. Biomed. Publish,
Foster City, 2002.

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