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Diplomado en Química Ambiental
                         I
  Introducción a la Biología Celular y Molecular

           Jesús Olivero Verbel. Ph.D

           Universidad de Cartagena
 Facultad de Ciencias Químicas y Farmacéuticas
  Grupo de Química Ambiental y Computacional
Departamento de Postgrado y Educación Continua

               Agosto 19 de 2002
La Membrana Celular
El DNA: Blanco de tóxicos
Aminoácidos

     y

 Proteínas
AMINOACIDOS
Name (Residue)         S.C.   MW    pK     VdW vol. C, P, H

Alanine          ALA    A     71              67       H
Arginine         ARG    R     157   12.5      148      C+
Asparagine       ASN    N     114             96       P
Aspartate        ASP    D     114   3.9       91       C-
Cysteine         CYS    C     103             86       P
Glutamate        GLU    E     128   4.3       109      C-
Glutamine        GLN    Q     128             114      P
Glycine          GLY    G     57              48       -
Histidine        HIS    H     137   6.0       118      P,C+
Isoleucine       ILE    I     113             124      H
Leucine          LEU    L     113             124      H
Lysine           LYS    K     129   10.5      135      C+
Methionine       MET    M     131             124      H
Phenylalanine    PHE    F     147             135      H
Proline          PRO    P     97              90       H
Serine           SER    S     87              73       P
Threonine        THR    T     101             93       P
Tryptophan       TRP    W     186             163      P
Tyrosine         TYR    Y     163   10.1      141      P
Valine           VAL    V     99              105      H
Péptidos
ESTRUCTURA SECUNDARIA
       DE LAS PROTEINAS                       -Hélices
La estructura es repetida cada 5.4 Å a lo largo del eje.
3.6 AA por rotación.
Separación entre residuos: 5.4/3.6 = 1.5 Å
Cada grupo C=O y N-H de la cadena principal está unido por
un puente de hidrógeno a un residuo distante 4 AA.
Los planos del péptido son más o menos paralelos a los ejes
de las hélices y los dipolos dentro de la misma están alineados.
Las cadenas laterales son orientadas hacia fuera de la hélice,
generalmente hacia el nitrógeno terminal.
Hojas Beta
Beta-Hairpin turns
Formados entre dos cadenas beta antiparalelas.
ESTRUCTURA TERCIARIA
  DE LAS PROTEINAS
Serina Proteasas
Estas tres proteasas son el resultado de Evolución
Divergente

Difieren en Especificidad: Chymotrypsin tiene una cavidad en la
cual acomoda las cadenas hidrofóbicas de F, Y y W.

Trypsin tiene un AA Aspartate (189) en el fondo de la cavidad
en vez de Ser-189, como en Chymotrypsin. Este Asp forma un
puente salino con el grupo positivo de las cadenas de Lys y Arg
de los sustratos.
Elastase posee Ala, la entrada a la cavidad es bloqueada por
Val-216 y Thr-226 (estos residuos son Gly en chymotrypsin).
LA TRIADA CATALITICA

Las Serina Proteases derivan su nombre por tener una
serina altamente reactiva, Ser-195, el cual atrae el grupo
carboxylo del sustrato.

Esto resulta en un intermediario que es una Acylenzima,
el cual consiste en el sustrato unido covalentemente a la
enzima por la ser.

La reactividad depende de la conformación de la cadena
lateral de la Ser con otras dos cadenas laterales polares.
Aproximadamente en una línea recta.

La Ser-195 es posicionada al final de la línea.
El otro origen es Asp-102 y en el centro la His-57.
The Chou-Fasman method of secondary structure prediction Name
            P(a) P(b) P(turn) f(i) f(i+1) f(i+2) f(i+3)
   Serina Proteasas
Alanine    142 83     66    0.06 0.076 0.035 0.058
Arginine      98    93          95     0.070 0.106 0.099 0.085
Aspartic Acid 101     54         146        0.147 0.110 0.179 0.081
Asparagine     67     89        156        0.161 0.083 0.191 0.091
Cysteine      70    119         119        0.149 0.050 0.117 0.128
Glutamic Acid 151         037         74     0.056 0.060 0.077 0.064
Tyrosine      69    147         114        0.082 0.065 0.114 0.125
Valine       106    170         50     0.062 0.048 0.028 0.053
Serina Proteasas
Proteínas
de Membrana
http://bioinformatics.weizmann.ac.il/hydroph/




http://www.netaccess.on.ca/~dbc/cic_hamilton/protein.html
Signal Transduction             PCB
        O
          .
         2
O2                        Annexin?




                                      P            PKC
                   sPLA2
                                          cPLA 2


          AA                                 TK
                     2+
                                                    PKC
                   Ca
                                           MAPK
       Ca-ATPase
Signal Transduction
Signal Transduction en la
Identificación de Sabores
ANALISIS DE PROTEINAS
CROMATOGRAFIA
Cromatografía
   Líquida
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Cromatografía de
Filtración en Gel
El Ligando de Afpak-894 es STI, un inhibidor de Trypsin.
Afpak-AHR-894, Ligando: Heparina
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El ligando de Afpak AAB-894 es Aminobenzamidine
         (Inhibidor de Serine Protease).
              Análisis de Tripsina
DICROISMO
 CIRCULAR
RESONANCIA

   MAGNETICA

      NUCLEAR
ESPIN
Propiedad fundamental de la naturaleza como la carga o masa.
El Espín es expresado en múltiplos de 1/2 y puede ser (+) o (-).
Protones, electrones y neutrones poseen Espín.
Electrones individuales desapareados, protones y neutrones
poseen un Espín de 1/2.
El Deuterio (2H) posee un electrón, un protón y un neutrón.
Espín Electrónico = 1/2. Espín Total Nuclear = 1.
Dos o más partículas con Espín de signos opuestos pueden unirse
y eliminar las manifestaciones observables del Espín. Ej. Helio.
En RMN, los espines nucleares desapareados son los de
importancia.
ESPIN
En Presencia de un campo magnético de fuerza B, una
partícula con un Espín neto puede absorver un fotón de
frecuencia f.

La frecuencia “f” depende de la relación giromagnética de
la partícula = B.

Para el Hidrógeno, B = 42.58 MHz/T.
Núcleos Con Espín
Casi todos los elementos de la Tabla Periódica tienen un
Isótopo con un espín nuclear diferente de cero. RMN sólo
puede ser empleada en Isótopes cuya abundancia natural
sea lo suficientemente alta para ser detectada.
     Núcleo        Protones      Neutrones      Espín
                Desapareados     Desapareados Neto      (MHz/T)
     1H               1             0            1/2       42.58
     2H               1             1             1         6.54
     31P              0             1            1/2       17.25
     23Na             2             1            3/2       11.27
     14N              1             1             1         3.08
     13C              0             1            1/2       10.71
     19F              0             1            1/2       40.08
CROMATOGRAFIA DE GASES
ESPECTROMETRIA DE MASAS
Espectro de Masas
3-Phenyl-2-propenal
      C9H8O
    MW = 132.16
3-Methylbutyramide
     C5H11NO
   MW = 101.15
From Gas Phase Ions to Peaks on a Mass Spectrum
Degradación de Edman
Reacción empleada para determinar la secuencia de AA

     El N-Terminal del péptido es tratado con FenilIsotiocianato,
                       formando un complejo.


     Luego de tratamiento ácido, el N-terminal es removido por
      rompimiento del primer enlace peptídico formando una
                     Feniltiohidantoina.


               Existen 20 Fenilhidantoinas.
PROTEOMICS
    Identificación Requiere Separación
2-D PAGE: Técnica de mayor alta RESOLUCION
ENFOQUE ISOELECTRICO

    El punto isoeléctrico es el pH al cual el número de
        cargas netas positivas y negativas es cero.

   En la electroforesis de Enfoque Isoeléctrico, el gel de
   polyacrylamide is tratado con ampholines, los cuales
   son sustancias que mantienen un gradiente de pH a
                través de la longitud del gel.

  La proteína será enfocada en el sitio en el que el pH es
igual al punto isoeléctrico. Allí la proteína deja de moverse.

  Permite la separación de proteínas en su forma nativa!!
2-D PAGE
Electroforesis bidimensional en gel de poliacrilamida

2-D PAGE: Técnica de mayor alta RESOLUCION

Resolución de péptidos mediante el desarrollo de dos
pasos ortogonales de separación.
Separación por Enfoque isoeléctrico y por Masas
Número de Manchas es variable y depende de:
•Tamaño y tipo de muestra
•Procedimiento de tinción
En un gel pueden apreciarse en forma visible 1000 proteínas
(Blomberg et al., 1995)
Klose y Kobalz (1995) logró separar 10.000 proteínas.
2-D PAGE
Originalmente la Desventaja era la Falta de Reproducibilidad.
La razón?
Los “Ampholytes” usados para construír los gradientes de pH

En la actualidad los Gradientes de pH son immobilizados (IPGs).
La estandarización de los procedimientos ha permitido el
establecimiento de bases de datos de Geles en 2-D.
SWISS-2DPAGE y YEAST 2-D GEL DATABASES
El uso de IPGs las comparaciones cualitativas y cunatitativas
en los patrones de expresión de proteínas.

IPGs permiten cargar hasta 15 mg de proteína.
2-D PAGE

    Obtención de proteínas de absoluta pureza bioquímica

 Análisis de Proteínas con modificaciones post-translacionales
     tales como fosforilación, geranilación, glycosilación
           y desdoblamiento proteolítico, entre otros.


Estudios de Patología y Toxicología (Lee and harrington, 1997)

Identificación de candidatos a vacunas (Chakravarti et al., 2001).
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Clase 2 Diplomado Quimica Ambiental UdeC

  • 1. Diplomado en Química Ambiental I Introducción a la Biología Celular y Molecular Jesús Olivero Verbel. Ph.D Universidad de Cartagena Facultad de Ciencias Químicas y Farmacéuticas Grupo de Química Ambiental y Computacional Departamento de Postgrado y Educación Continua Agosto 19 de 2002
  • 3. El DNA: Blanco de tóxicos
  • 4. Aminoácidos y Proteínas
  • 5. AMINOACIDOS Name (Residue) S.C. MW pK VdW vol. C, P, H Alanine ALA A 71 67 H Arginine ARG R 157 12.5 148 C+ Asparagine ASN N 114 96 P Aspartate ASP D 114 3.9 91 C- Cysteine CYS C 103 86 P Glutamate GLU E 128 4.3 109 C- Glutamine GLN Q 128 114 P Glycine GLY G 57 48 - Histidine HIS H 137 6.0 118 P,C+ Isoleucine ILE I 113 124 H Leucine LEU L 113 124 H Lysine LYS K 129 10.5 135 C+ Methionine MET M 131 124 H Phenylalanine PHE F 147 135 H Proline PRO P 97 90 H Serine SER S 87 73 P Threonine THR T 101 93 P Tryptophan TRP W 186 163 P Tyrosine TYR Y 163 10.1 141 P Valine VAL V 99 105 H
  • 6.
  • 8. ESTRUCTURA SECUNDARIA DE LAS PROTEINAS -Hélices La estructura es repetida cada 5.4 Å a lo largo del eje. 3.6 AA por rotación. Separación entre residuos: 5.4/3.6 = 1.5 Å Cada grupo C=O y N-H de la cadena principal está unido por un puente de hidrógeno a un residuo distante 4 AA. Los planos del péptido son más o menos paralelos a los ejes de las hélices y los dipolos dentro de la misma están alineados. Las cadenas laterales son orientadas hacia fuera de la hélice, generalmente hacia el nitrógeno terminal.
  • 10. Beta-Hairpin turns Formados entre dos cadenas beta antiparalelas.
  • 11. ESTRUCTURA TERCIARIA DE LAS PROTEINAS
  • 12. Serina Proteasas Estas tres proteasas son el resultado de Evolución Divergente Difieren en Especificidad: Chymotrypsin tiene una cavidad en la cual acomoda las cadenas hidrofóbicas de F, Y y W. Trypsin tiene un AA Aspartate (189) en el fondo de la cavidad en vez de Ser-189, como en Chymotrypsin. Este Asp forma un puente salino con el grupo positivo de las cadenas de Lys y Arg de los sustratos. Elastase posee Ala, la entrada a la cavidad es bloqueada por Val-216 y Thr-226 (estos residuos son Gly en chymotrypsin).
  • 13. LA TRIADA CATALITICA Las Serina Proteases derivan su nombre por tener una serina altamente reactiva, Ser-195, el cual atrae el grupo carboxylo del sustrato. Esto resulta en un intermediario que es una Acylenzima, el cual consiste en el sustrato unido covalentemente a la enzima por la ser. La reactividad depende de la conformación de la cadena lateral de la Ser con otras dos cadenas laterales polares. Aproximadamente en una línea recta. La Ser-195 es posicionada al final de la línea. El otro origen es Asp-102 y en el centro la His-57.
  • 14. The Chou-Fasman method of secondary structure prediction Name P(a) P(b) P(turn) f(i) f(i+1) f(i+2) f(i+3) Serina Proteasas Alanine 142 83 66 0.06 0.076 0.035 0.058 Arginine 98 93 95 0.070 0.106 0.099 0.085 Aspartic Acid 101 54 146 0.147 0.110 0.179 0.081 Asparagine 67 89 156 0.161 0.083 0.191 0.091 Cysteine 70 119 119 0.149 0.050 0.117 0.128 Glutamic Acid 151 037 74 0.056 0.060 0.077 0.064 Tyrosine 69 147 114 0.082 0.065 0.114 0.125 Valine 106 170 50 0.062 0.048 0.028 0.053
  • 18. Signal Transduction PCB O . 2 O2 Annexin? P PKC sPLA2 cPLA 2 AA TK 2+ PKC Ca MAPK Ca-ATPase
  • 20. Signal Transduction en la Identificación de Sabores
  • 21.
  • 22.
  • 24.
  • 26. Cromatografía Líquida
  • 30. El Ligando de Afpak-894 es STI, un inhibidor de Trypsin.
  • 31. Afpak-AHR-894, Ligando: Heparina Análisis de Lipoproteínas y componentes coagulantes en la sangre
  • 32. El ligando de Afpak AAB-894 es Aminobenzamidine (Inhibidor de Serine Protease). Análisis de Tripsina
  • 34. RESONANCIA MAGNETICA NUCLEAR
  • 35. ESPIN Propiedad fundamental de la naturaleza como la carga o masa. El Espín es expresado en múltiplos de 1/2 y puede ser (+) o (-). Protones, electrones y neutrones poseen Espín. Electrones individuales desapareados, protones y neutrones poseen un Espín de 1/2. El Deuterio (2H) posee un electrón, un protón y un neutrón. Espín Electrónico = 1/2. Espín Total Nuclear = 1. Dos o más partículas con Espín de signos opuestos pueden unirse y eliminar las manifestaciones observables del Espín. Ej. Helio. En RMN, los espines nucleares desapareados son los de importancia.
  • 36. ESPIN En Presencia de un campo magnético de fuerza B, una partícula con un Espín neto puede absorver un fotón de frecuencia f. La frecuencia “f” depende de la relación giromagnética de la partícula = B. Para el Hidrógeno, B = 42.58 MHz/T.
  • 37. Núcleos Con Espín Casi todos los elementos de la Tabla Periódica tienen un Isótopo con un espín nuclear diferente de cero. RMN sólo puede ser empleada en Isótopes cuya abundancia natural sea lo suficientemente alta para ser detectada. Núcleo Protones Neutrones Espín Desapareados Desapareados Neto (MHz/T) 1H 1 0 1/2 42.58 2H 1 1 1 6.54 31P 0 1 1/2 17.25 23Na 2 1 3/2 11.27 14N 1 1 1 3.08 13C 0 1 1/2 10.71 19F 0 1 1/2 40.08
  • 40. 3-Phenyl-2-propenal C9H8O MW = 132.16
  • 41. 3-Methylbutyramide C5H11NO MW = 101.15
  • 42. From Gas Phase Ions to Peaks on a Mass Spectrum
  • 43. Degradación de Edman Reacción empleada para determinar la secuencia de AA El N-Terminal del péptido es tratado con FenilIsotiocianato, formando un complejo. Luego de tratamiento ácido, el N-terminal es removido por rompimiento del primer enlace peptídico formando una Feniltiohidantoina. Existen 20 Fenilhidantoinas.
  • 44. PROTEOMICS Identificación Requiere Separación 2-D PAGE: Técnica de mayor alta RESOLUCION
  • 45. ENFOQUE ISOELECTRICO El punto isoeléctrico es el pH al cual el número de cargas netas positivas y negativas es cero. En la electroforesis de Enfoque Isoeléctrico, el gel de polyacrylamide is tratado con ampholines, los cuales son sustancias que mantienen un gradiente de pH a través de la longitud del gel. La proteína será enfocada en el sitio en el que el pH es igual al punto isoeléctrico. Allí la proteína deja de moverse. Permite la separación de proteínas en su forma nativa!!
  • 46.
  • 47. 2-D PAGE Electroforesis bidimensional en gel de poliacrilamida 2-D PAGE: Técnica de mayor alta RESOLUCION Resolución de péptidos mediante el desarrollo de dos pasos ortogonales de separación. Separación por Enfoque isoeléctrico y por Masas Número de Manchas es variable y depende de: •Tamaño y tipo de muestra •Procedimiento de tinción En un gel pueden apreciarse en forma visible 1000 proteínas (Blomberg et al., 1995) Klose y Kobalz (1995) logró separar 10.000 proteínas.
  • 48. 2-D PAGE Originalmente la Desventaja era la Falta de Reproducibilidad. La razón? Los “Ampholytes” usados para construír los gradientes de pH En la actualidad los Gradientes de pH son immobilizados (IPGs). La estandarización de los procedimientos ha permitido el establecimiento de bases de datos de Geles en 2-D. SWISS-2DPAGE y YEAST 2-D GEL DATABASES El uso de IPGs las comparaciones cualitativas y cunatitativas en los patrones de expresión de proteínas. IPGs permiten cargar hasta 15 mg de proteína.
  • 49. 2-D PAGE Obtención de proteínas de absoluta pureza bioquímica Análisis de Proteínas con modificaciones post-translacionales tales como fosforilación, geranilación, glycosilación y desdoblamiento proteolítico, entre otros. Estudios de Patología y Toxicología (Lee and harrington, 1997) Identificación de candidatos a vacunas (Chakravarti et al., 2001).