1. Cristóbal Soto

2. TOMA DE MUESTRA
Aspectos generales

Es un procedimiento sistematizado y clínicamente guiado con el cual se busca obtener la
información y material suficiente para que el citotecnólogo, citólogo o patólogo realice un
correcto diagnóstico.

Se debe realizar en un área privada que cuente con el adecuado equipamiento como una
mesa de exploración ginecológica y una fuente de luz.

El personal que realiza la toma de muestra debe conocer los aspectos teóricos y prácticos
que sustentan la importancia de obtener muestras adecuadas, por lo que se enfatiza la
necesidad de conocer el material y el equipo, así como su correcto uso. Las matronas y los
ginecólogos son los encardados de este procedimiento.
Condiciones de la paciente



Sin menstruación.
Sin uso de medicamentos vaginales (24 a 72 hrs. previas).
Sin coito (24 a 72 hrs. previas).

3. TOMA DE MUESTRA
Procedimiento

Se debe colocar un espéculo en la vagina que
permita visualizar claramente el cuello del
útero.

El instrumento para tomar la muestra debe ser
seleccionado de acuerdo con la forma y
tamaño del cuello uterino y la ubicación de la
unión escamocolumnar. La espátula de Ayre es
adecuada para el muestreo de cervix en
mujeres multiparas; la espátula y el cepillo
pueden ser necesarios en mujeres en la
postmenopausia cuando la unión
escamocolumnar se encuentra dentro del canal
endocervical.

El extremo puntiagudo de la espátula puede
insertarse en el os cervical de cuellos uterinos
nulíparos y el extremo redondo de la espátula
insertarse en el os mas amplio del cuello
uterino de la mujer multípara. El instrumento
seleccionado debe rotarse 360 grados para
remover células de la zona de
transformación, unión escamocolumnar y canal
endocervical.

4. TOMA DE MUESTRA
Procedimiento

El material obtenido en la espátula o el cepillo debe ser
transferido inmediatamente a una lámina de vidrio que ha sido
previamente marcada con número asignado a la paciente.

La lámina de vidrio debe ser fijada inmediatamente con el fijador
adecuado (alcohol al 95%) y transportado al laboratorio de
citología en un contenedor para ser procesada junto con la
correspondiente solicitud de citología.

Las muestras tomadas para Citología en Base Líquida deben ser
estrictamente procesadas siguiendo las instrucciones de
manufactura. Después de tomar la muestra, la punta del
instrumento de muestreo debe separarse y depositarse en el
medio de transporte en el contenedor provisto que debe ser
entonces trasladado al laboratorio para su procesamiento.

5. TOMA DE MUESTRA
Muestreo de cervix
usando espátula
Ayre.
•
Instrumentos para toma
de muestra:
–
De izquierda a derecha
• Cepilos endocervicales
•
Espátulas de madera
(Ayre modificada y Ayre
convencional)
•
Escobilla
Muestreo de cervix
usando cepillo
endocervical

6. FIJACIÓN
•

La fijación es un paso esencial en la preparación de frotis de cuello
uterino. Este busca asegurar que las células se tiñan
apropiadamente y se muestren claramente para su análisis
microscópico tanto para revisiones inmediatas como a futuro.
Condiciones y propiedades de un fijador ideal:
1.
2.
3.
4.
5.
Debe penetrar las células rápidamente para que la detallada
morfología celular sea mantenida.
El encogimiento celular debe ser mínimo y uniforme de forma
que no ocurran distorsiones morfológicas.
Debe permitir la permeabilidad de las tinciones a través de
las barreras celulares y ser apropiado para los métodos de
tinción usados.
Debe permitir la adhesión celular a la lámina de vidrio para el
análisis de microscopio.
Debe ser bactericida, no tóxico y permanente.

7. FIJACIÓN

Citospray:

Fijador en forma de aerosol. Es un producto comercial que contiene una
mezcla de alcohol isopropílico y polietilglicol

Se debe aplicar de forma inmediata al frotis, a 30 cms de la placa y en
movimiento de abanico.

8. RECEPCIÓN DE LA MUESTRA

El laboratorio recibe la muestra en conjunto con la
ficha SEC, la cual contiene los antecedentes de la
paciente:


RUT, nombre, Fecha de ultima menstruación, edad,
Fecha de toma de PAP, etc.
Foleo de las Muestras:

Se enumeran las placas y fichas SEC de cada paciente
. Una vez realizado el Foleo las placas son dejadas en
los carros de tinción de manera ordenada según el
numero asignado.

9. TINCIÓN DE PAPANICOLAOU
Etanol 95º
Orange G
H. Harris
Etanol 95º
Agua
Etanol 95º
Montaje
Xilol X3
Etanol ácido
Eosina
Azure
Agua
Corriente
Etanol 95°
Etanol
95º
Etanol
absoluto
X2

10. VENTAJAS TINCIÓN DE PAPANICOLAOU:
DETALLE CROMATINICO: Esencial para diagnóstico de
células malignas.
 POLICROMIA: Ayuda a reconocer diversos subtipos celulares.
 TRANSPARENCIA: Permite estudiar frotis citológico que
siempre presentan células superpuestas
