Exposicion para la catedra de cirugía, UCC-Bucaramanga, Facultad MVZ.

1. Jonathan José Barbosa Jaimes
Elkin Andrés Rodríguez Jaimes
Diana Marcela Aranda Bautista
Nelcy Y. Luna G.
Carlos Rojas
José Luis Rico
Diego Salazar
Andrés Sierra
Estudiantes MVZ, UCC-Bucaramanga

2. Concepto
Es una neoplasia maligna cutánea, que
aparece con frecuencia en los felinos, y si
bien se presenta en otros animales, es en el
gato donde se comporta como una entidad
mórbida específica, con una conducta
biológica disímil a otras especies1.
1 M.V. JORGE FIORENTINI.

3. Característica
Es una de las pocas neoplasias donde se
conoce el factor predisponente
(característica genética de algunos felinos) y
el agente carcinogénico (radiación solar
ultravioleta)1.
1 M.V. JORGE FIORENTINI.

4. Factores predisponentes
Exposición Prolongada A Luz
Ultravioleta
Falta De Pigmentación
Falta De Pelo ó Pelo Corto

5. Clasificación
C.C.E cutáneo C.C.E oral
de acuerdo a capacidad
infiltrativa
C.C.E c in situ C.C.E c invasivo
de acuerdo a ubicación
C.C.E.c. nasal C.C.E.c. de párpados C.C.E.c. de labio
superior
C.C.E.c. de orejas C.E.C.c.
fronto-auricular

6. C.C.E.c. invasivo nasal y de labio superior
Nótese la
profundidad de las
úlceras y la
presencia de
costras.
Fuente: M.V. JORGE FIORENTINI.

7. C.C.E.c. invasivo de párpados
Nasal estadío III y
de párpado: es la
formas más
agresivas de esta
neoplasia.
Fuente: M.V. JORGE FIORENTINI.

8. C.C.E.c. invasivo de orejas
Pabellón auricular
de un felino de
pelaje marrón con
la región afectada
despigmentada
Fuente: M.V. JORGE FIORENTINI.

9. C.E.C.c. invasivo de región fronto-auricular
Fuente: M.V. JORGE FIORENTINI.

10. Aspectos clínicos
Úlceras y costras, hemorragias y aumenta grosor de la piel
Fuente: Dr. Roberto Serviddio Fuente: Dr. Roberto Serviddio

11. Diagnóstico
Biopsia con un examen histopatológico
Las muestras para el diagnóstico histopatológico
deben obtenerse de manera laminar y no en cuña,
pues de esta última manera se facilita la infiltración
de células neoplásicas a planos profundos1.
1 Mangieri, J.: Carcinoma escamocelular (C.E.C.) cutáneo en cabeza de felinos. Revista
científica de A.N.C.L.I.V.E.P.A.-RS. Nº7, pag. 6, Brasil 1996.

12. Tratamiento
Radioterapia Hipertermia
Administración intratumoral de Crioterapia
carboplatino
Quimioterapia Fotoquimioterapia
Resección del plano nasal
¿Cuál es la ideal?
Hay opiniones, argumentos y desventajas divididas de
diferentes autores, veamos dos ejemplos.

13. Ejemplo 1: Criocirugía
Para algunos autores la criocirugía es eficaz solo para lesiones
tempranas, diminutas, superficiales y no invasivas1,2,3.
Otros afirman que tiene un 50% de éxito y alta tasa de
recurrencia , aproximadamente un 80 %4,5.
1) Rogers, K.: Feline cutaneous squamous cell carcinoma. Feline Practice. Vol. 22, Nº5. September/october 1994.
2) Rosenkrantz, W.: Dermatitis solar. Cap. 30. En Griffin, G., Knochka K., Macdonald, J. Enfermedades Dermatologicas
del perro y gato. Ciencia y arte de la terapeútica. Intermédica. 1994.
3) Ruslander D., Kaser-Hotz B., Sardinas J.C. :Carcinoma de Células Escamosas Cutáneo. Compendium Continuing
Education for the Practicing Veterinarian. Vol. 19, Nº10, 1997.
4) Atwater, S. et al: Squamus cell carcinoma of the pinna and nasal planum. Fifty four cats (1980-1991). Proc Annu Conf.
Vet. Cancer Soc. 11:35, 1991.
5) Mangieri, J.: Carcinoma escamocelular (C.E.C.) cutáneo en cabeza de felinos. Revista científica de A.N.C.L.I.V.E.P.A.-
RS. Nº7, pag. 6, Brasil 1996.

14. Ejemplo 2: Resección del plano nasal
Quince de 20 gatos con carcinoma invasor de
células escamosas están libres de enfermedad
recurrente al año1.
Otros autores reportan que tiene altas tasas
de recurrencia.
1) Withrow SJ, Straw RC. Resection of the nasal planum in nine cats and five dogs. J Am Anim Hosp Assoc 1990;
26:219-222

15. Crioterapiaaaaa
Usen la que
mejor resultados
le de a cada uno
Resección

17. Uso del piroxicam como tratamiento
adjunto en CCE en tercer párpado de un
caballo
Figura 1. Evaluación
oftálmica en la primera
visita en Sept de 2007.
A. El ojo izquierdo
presenta un tejido de
granulación
Fuente: Simone Iwabe., et al. 2009

18. Uso del piroxicam como tratamiento
adjunto en CCE en tercer párpado de un
caballo
Figura 1. Evaluación
oftálmica en la primera
visita en Sept de 2007.
B. El tejido de
granulación afecta a
todo el tercer párpado
Fuente: Simone Iwabe., et al. 2009

19. Uso del piroxicam como tratamiento
adjunto en CCE en tercer párpado de un
caballo
Fuente: Simone Iwabe., et al. 2009
Figura 2.B, C. El tercer párpado fue extirpado completamente junto con la
glándula del tercer párpado y los bordes de la conjuntiva

20. Uso del piroxicam como tratamiento
adjunto en CCE en tercer párpado de un
caballo
Figura 3. Tejido de
granulación sometido a
estudio histopatológico
y los hallazgos registran
un CCE.
Fuente: Simone Iwabe., et al. 2009

21. Uso del piroxicam como tratamiento
adjunto en CCE en tercer párpado de un
caballo
Fuente: Simone Iwabe., et al. 2009
Figura 4. A. Ojo izquierdo inmediatamente después de la cirugía, con
pequeña inflamación de la conjuntiva. B. El mismo ojo 2 días después de
la cirugía sin señales de malestar o dolor.

22. Uso del piroxicam como tratamiento
adjunto en CCE en tercer párpado de un
caballo
Fuente: Simone Iwabe., et al. 2009
Figura 5. A. Ojo izquierdo diez meses después de la cirugía, y con
tratamiento oral con piroxicam (80 mg total PO SID), empezado en
octubre de 2007 B. Ojo derecho sin alteraciones oftalmológicas

23. Uso del piroxicam como tratamiento
adjunto en CCE en tercer párpado de un
caballo
Conclusión
El piroxicam es una AINE más específico a la COX-2, ha
demostrado ser eficaz en el control del CCE en perros y del
CCE oral en gatos. En el presente trabajo el caso de CCE en el
equino ha sido controlado exitosamente con la
administración de éste fármaco, por lo que es posible
considerar este medicamento como tratamiento viable, por
su disponibilidad, bajo costo y fácil administración.

24. Crioterapia : Elementos *
Como criógeno, nitrógeno líquido cuya temperatura
es de -196 ºC.
Como depósito de nitrógeno líquido, termo para
inseminación artificial con una capacidad de 20 litros.
Como unidad crioquirúrgica, equipo Crio-Surg
Frigitronics con puntas aplicadoras intercambiables
para la modalidad “spray” y la modalidad contacto
según el tamaño y las características de la lesión.
* M.V. JORGE FIORENTINI

25. Crioterapia *
* M.V. JORGE FIORENTINI

26. Crioterapia : Técnica*
1. Anestesia general
2. En el área crioquirúrgica se realiza tricotomía y
antisepsia con solución jabonosa de Iodo
povidona.
3. Las áreas circundantes de tejido sano se protegen
con pomadas a base de lanolina y vaselina.
* M.V. JORGE FIORENTINI

27. Crioterapia : Técnica*
4. En la modalidad “spray” el nitrógeno líquido
contacta directamente con el área a tratar. La
punta utilizada se coloca a 0,5 a 1 cm de distancia
del tejido a congelar.
5. En la modalidad contacto, la punta congelada de
la unidad crioquirúrgica contacta con el área a
tratar.
* M.V. JORGE FIORENTINI

28. Crioterapia : Técnica*
Aplicación de
crioterapia con
punta de contacto
en pequeñas
lesiones de un
CCEc inv. de la
región fronto-
auricular.
* M.V. JORGE FIORENTINI

29. Crioterapia : Técnica*
6. El área congelada se extiende 5 mm más allá de
la lesión.
7. Monitoreo del frío se hace con la observación y
palpación de la esfera de hielo que se forma en el
tejido blanco después de la aplicación del
criógeno.
* M.V. JORGE FIORENTINI

30. Crioterapia : Técnica*
8. Se utiliza el método de congelación rápida-
descongelación lenta . Entre congelación y
congelación median 15 a 20 minutos, período que
permite la descongelación lenta.
9. La crionecrosis resultante genera un exudado mal
oliente, efecto que se mantiene durante varios
días y que debe ser advertido a los propietarios
antes del tratamiento.
* M.V. JORGE FIORENTINI

31. Crioterapia : Ventajas*
Se realizan 2 o 3 ciclos de congelación-
descongelación que mejoran el margen de
seguridad.
La posibilidad de hemorragias es casi nula debido
a que los vasos se trombosan y se ocluyen
después de la congelación.
* M.V. JORGE FIORENTINI

32. Crioterapia : Ventajas*
Permite trabajar en algunos casos avanzados,
principalmente de pabellón auricular.
No existe la posibilidad de dehiscencia.
El criógeno utilizado (nitrógeno líquido) es
económico e inocuo tanto para el paciente como
para el operador.
* M.V. JORGE FIORENTINI

33. Crioterapia : Ventajas*
Posibilidad de realizar “retoques”.
Menor tiempo quirúrgico que se traduce en menor
tiempo de anestesia, pero relativo cuando se trata
de un C.C.E.c. inv. de plano nasal, pues el tiempo
que se tarda en hacer 2 ciclos de congelación-
descongelación , supera al tiempo empleado en
hacer una técnica de resección en dicha región.
* M.V. JORGE FIORENTINI

34. Crioterapia : Ventajas*
Se produce analgesia postquirúrgica en el
área congelada por destrucción de
terminaciones nerviosas. No obstante, en
la zona que circunda al tejido congelado
se produce una severa reacción
inflamatoria que provoca dolor en los
primeros días del período postoperatorio.
* M.V. JORGE FIORENTINI

35. Crioterapia : Complicaciones*
Se observan principalmente
en casos avanzados de
C.C.E.c. inv. de plano nasal
en estadío III, donde la gran
tumefacción que se genera
después de la congelación
dificulta la respiración del
paciente en los días
subsiguientes.
* M.V. JORGE FIORENTINI

36. Crioterapia : Complicaciones*
Excesiva congelación que a
veces se infligía al tejido
blanco y que afectaba en
forma indirecta a los tejidos
sanos circundantes.
Secuela de una congelación
excesiva al tratar un CCEc
inv. en pabellón auricular.
* M.V. JORGE FIORENTINI

37. Crioterapia : Recomendaciones*
Que el animal no esté expuesto al sol
principalmente entre las 10 y las 17 horas.
Muchas recurrencias y fallas terapéuticas
se han observado en gatos que no han
podido cumplir con este requisito.
* M.V. JORGE FIORENTINI

38. Resección del plano nasal : Técnica
1. Anestesia general + tubo endotraqueal con
manguito.
2. Decúbito esternal con cabeza apenas levantada.
3. Estimar minuciosamente la extensión tumoral.
4. Tricotomía de un área reducida, conservando
vibrisas y el sitio se prepara para la cirugía aséptica.

39. Resección del plano nasal : Técnica
5. Colocar paño de campo con orificio circular.
6. El plano nasal se extrae por completo con incisión
cutánea de 360º utilizando una hoja de bisturí Nº 15.
7. El cartílago del plano nasal y los turbinados se
cortan con una incisión en ángulo de casi 45º con el
paladar duro.
8. Hemorragia: presión directa con torunda.

40. Resección del plano nasal : Técnica

41. Resección del plano nasal : Técnica
9. Extraído el plano nasal, se retraen los bordes
cutáneos exponiendo las conchas nasales.
10. Sutura en bolsa de tabaco con material no
absorbible monofilamento 3-0 se aplica a través de
la piel alrededor de la incisión.
11. Analgésicos y paciente a hogar dentro de las 24
horas.

42. Resección del plano nasal : Técnica
Sutura en bolsa de tabaco continua se emplea para reducir el orificio
nasal hasta casi 1cm de diámetro. Ninguna sutura es colocada en el
cartílago. (De Withrow SJ, Straw RC. Resection of the nasal planum in nine cats and five dogs. J Am
Anim Hosp Assoc 1990; 26:219-222)

43. Resección del plano nasal : Técnica
12. No limpiar el sitio quirúrgico y el paciente puede
estornudar sangre por varios días.
13. Extraer suturas aproximadamente a los 10 días de la
intervención, pudiendo necesitarse sedación o
anestesia superficial.

44. Resección combinada del plano nasal y
premaxilar
A. El paciente se ubica en decúbito
esternal y se colocan los paños
de campo después de la
preparación para la cirugía
aséptica. La boca se abre y el
paño inferior se coloca dentro de
la misma.
B. Se hace una incisión de espesor
completo del labio superior sobre
cada lado del plano nasal.
C. Las dos incisiones se unen sobre
la línea media dorsal de la nariz
en caudal del plano nasal.
(De Kirpensteijn J, Withrow SJ, Straw RC. Combined resection of the nasal
planum and premaxilla in three dogs. Vet Surg 1994; 23:341-346.)

45. Resección combinada del plano nasal y
premaxilar

46. Resección combinada del plano nasal y
premaxilar
A. La submucosa y mucosa del
labio se suturan a través de los
orificios perforados en el
paladar duro y al labio
contralateral.
B. Esto redunda en el cierre de la
cavidad nasal en forma de una
“T”
(De Kirpensteijn J, Withrow SJ, Straw RC. Combined resection of
the nasal planum and premaxilla in three dogs. Vet Surg 1994;
23:341-346.)

47. Resección combinada del plano nasal y
premaxilar
C. El orificio nasal es reducido en
diámetro colocando una sutura en
bolsa de tabaco continua simple.
D. Imagen desde el frente del
paciente después de la
intervención. El nuevo orificio
nasal es de aproximadamente el
diámetro del plano nasal
resecado.
(De Kirpensteijn J, Withrow SJ, Straw RC. Combined resection
of the nasal planum and premaxilla in three dogs. Vet Surg
1994; 23:341-346.)

48. figura 4
Auriculectomía
Fuente: Dr. Roberto Serviddio

49. Reporte de casos

50. Reporte de casos : en caprinos
Fuente: Gutierrez C., et al. 2000.

51. Carcinoma de células escamosas no olho de bovino com invasao cerebral através
dos nervos cranianos
Fuente: Ricardo Rocha de Barros., et al. 2006.

54. Referencias bibliográficas
BOJRAB, Joseph M. TECNICAS ACTUALES EN CIRUGIA DE PEQUEÑOS
ANIMALES. 4ed. INTERMEDICA, Santafé de Bogotá. 1276 p
SERVIDDIO, Roberto. CARCINOMA DE CELULAS ESCAMOSAS EN EL
GATO. 2008. Disponible en
http://drserviddio.blogspot.com/2008/05/carcinoma-de-
celulas-escamosas-en-el.html [Consulta: 3/04/10:09:54]
TEMA 32.-TUMORES EPITELIALES-.[formato pdf] Disponible en
http://www3.unileon.es/personal/wwdmavpp/pdf/tumores%20epi
teliales.pdf [Consulta: 3/04/10:10:12]

55. Referencias bibliográficas
FIORENTINI, Jorge. CARCINOMA DE CÉLULAS ESCAMOSAS CUTÁNEO
INVASIVO DE CABEZA Y CUELLO EN FELINOS. SU TRATAMIENTO CON
CRIOTERAPIA. Disponible en
http://www.aamefe.org/escamosas.htm [Consulta: 3/04/10:
10:25]
IWABE, Simone., et al. Uso del piroxicam como tratamiento
adjunto en carcinoma de células escamosas en el tercer
párpado de un caballo. Vet. Méx., 40(4) 2009.[formato pdf]
Disponible en
http://revistaveterinaria.fmvz.unam.mx/fmvz/revvetmex/a200
9/rvmv40n4/rvm40405.pdf [Consulta: 3/04/10:10:42]

56. Referencias bibliográficas
GUTIERREZ, C., at al. Carcinoma de células escamosas en
mamas apigmentadas de caprino en Canarias. Med Vet 2000;
vol.17 (1): 26-28. Disponible en
http://www.pulso.com/medvet/Protegido/numero1/PDF/Carcinom
a.pdf [Consulta 3/04/10:10:56]
ROCHA DE BARROS, Ricardo., et al. CARCINOMA DE CÉLULAS
ESCAMOSAS NO OLHO DE BOVINO COM INVASAO CEREBRAL ATRAVÉS
DOS NERVIOS CRANIANOS. v.36, n 5, 2006.