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Biopsias




Cátedra de Anatomía Patológica. Facultad de Medicina. U. N. T.
OBJETIVOS
   Definir biopsia
   Señalar los aspectos
    generales, características primordiales e
    importancia de una biopsia
   Describir las principales característicasde los
    diferentes tipos de biopsias
   Manejar el tejido bajo las normas adecuadas
    para su fijación, rotulación y envío.
   Interpretar el informe anatomo patológico y
    su significado clínico terapéutico.
MÉTODOS DE LA
ANATOMÍA PATOLÓGICA
   Patología Postmortem. Autopsias

   Patología Quirúrgica. Biopsias

   Citopatología

   Experimental

   Otros
BIOPSIA
“Método    de    la   anatomía
patológica que    estudia       los
tejidos obtenidos de pacientes
vivos con fines diagnosticos,
pronósticos y de seguimiento”
TIPOS DE BIOPSIA
Incisional                Dirigidas
Excisional                No dirigidas


             De órgano
                Total
                Parcial
             Intraoperatoria
             Punción Biopsia
TIPOS DE BIOPSIA
     Dirigida
    Endoscopica
    Colposcópica
   Dermatoscópica
    Estereotaxica


  No Dirigida
     A ciegas
BIOPSIA INCISIONAL


Cuando toma parte de la lesión.


Ej: punch de en lesion extensa de piel
   biopsia endoscópica en tumor >2cm
BIOPSIA ESCISIONAL

Cuando en la muestra se extrae la lesión en
su totalidad.

Ej: losange de piel
    polipectomía
BIOPSIA ESCISIONAL
BIOPSIA DE ÓRGANO
Consiste en el estudio de materiales obtenidos
durante un acto quirúrgico, generalmente el
material está representado por todo o parte
de un órgano. El procesamiento se realiza en
base a un protocolo pre establecido que indica
pautas que van desde la apertura de la pieza
hasta obtención de muestras representativas.
ÓRGANO TOTAL
ÓRGANO TOTAL
ÓRGANO PARCIAL
BIOPSIAS DIRIGIDAS
Biopsias endoscópicas: es un tipo de

biopsia dirigida que permite la obtención del

material de órganos huecos ( tubo digestivo,

árbol respiratorio, vias urinarias) o cavidades

(pleural, pericardica, abdominal)
BIOPSIAS DIRIGIDAS


Biopsias colposcopicas : se utilizan en


lesiones precursoras de cuello uterino.
BIOPSIAS DIRIGIDAS

 Biopsias estereotáxicas: con la ayuda

 de métodos imagenológicos se localiza

 tridimensionalmente la lesión y se obtiene

 tejido. Ej mama y SNC
BIOPSIA DIRIGIDA ENDOSCÓPICA
BIOPSIA INTRAOPERATORIA
Es el estudio del       material obtenido
durante     el   acto   operatorio   para
determinar la naturaleza de la lesión y
emitir un diagnóstico que permita al
cirujano adoptar una conducta quirúrgica
adecuada.
BIOPSIA INTRAOPERATORIA

Requiere de instrumental (criostato) y

  ambiente adecuados.

Se utiliza el tejido en fresco.

Fijador es el frío.
BIOPSIA INTRAOPERATORIA
BIOPSIA INTRAOPERATORIA
BIOPSIA INTRAOPERATORIA
BIOPSIA INTRAOPERATORIA:
  CONTROL DE MÁRGENES
BIOPSIA DIFERIDA
CONTROL DE MÁRGENES
BIOPSIA POR PUNCIÓN
   Consiste en la obtención de un cilindro de
    tejido del órgano afectado, utilizando
    agujas especiales de grueso calibre 0.2cm
    de diametro.
   Se aplica para el diagnóstico de patologías
    que afectan a órganos parenquimatosos
    en forma difusa (cirrosis hepatica,
    glomerulopatias) o localizada solida
    (tumor)
   El material obtenido se incluye totalmente
    y se procesa en forma seriada.
BIOPSIA POR PUNCIÓN
Puede realizarse :

   A ciegas: sobre el sitio donde se
    sospecha que se encuentra la lesión.

   Dirigida: mediante aparatos que
    permiten visualizar el sitio de punción
    (ecografía, TAC) Ej: punción biopsia de
    mama con mammotome.
BIOPSIA POR PUNCIÓN
BIOPSIA POR PUNCIÓN DIRIGIDA
BIOPSIA POR PUNCIÓN
BIOPSIA POR PUNCIÓN
PASOS A SEGUIR
   Recepción del material: todo el material
    ingresado deberá ir acompañado de los datos
    personales del paciente, breve resumen de la
    Historia clínica, tipo y características, motivo del
    estudio solicitado y diagnóstico presuntivo.


   Fijación: permite preservar la estructura y
    funcion de los tejidos e impedir la autolisis.
    Consiste en sumergir el material en una solución
    de formol al 10 % en recipiente de boca ancha.
PASOS A SEGUIR
   Macroscopía: consiste en la inspección del
    material y su descripción, lo más semejante a la
    realidad, indicando los siguientes aspectos:

           ÓRGANOS PARENQUIMATOSOS
   Tamaño, color, forma, superficie externa
   Peso
   Consistencia
   Hallazgos
   Superficie de corte
PASOS A SEGUIR
                 ÓRGANOS HUECOS
   Tamaño, forma, serosa
   Peso
   Pared (espesor, consistencia, hallazgos)
   Mucosa (color, pliegues, aspecto, hallazgos)
   Luz
PASOS A SEGUIR

   Existen protocolos de descripción
    macroscópica tipo.

    Se complementa con la selección de
    muestras representativas, lo cual también
    está pre-establecido en los protocolos
PASOS A SEGUIR

 Procesamiento histológico: Los pasos a
   seguir son:
  – Deshidratación: pases sucesivos en alcohol
      96º, acetato (2) y Xilol (2). Permite extraer el
      agua de los tejidos.
  – Baño e inclusión en parafina
  – Corte
  – Coloración
PASOS A SEGUIR

   Diagnóstico: en algunos casos se utilizan

    protocolos microscópicos o breves descripciones

    microscópicas seguidas por uno o más diagnósticos

    que incluirán datos de valor pronóstico y de

    orientación terapéutica.
INFORME ANATOMOPATOLÓGICO

  Debe reunir las siguientes condiciones:

   Datos del paciente
   Descripción macro y microscópica detallada pero
    concreta
   Protocolo
   Diagnóstico jerarquizado
   Debe concretarse a los aspectos relacionados con el
    pronóstico y la terapéutica.
BIBLIOGRAFÍA
 Besuschio, S.C.. Patología general. Ed. El
  Ateneo. Bs As .1992
 Cooke, R. A. Stewart, B. Atlas de Anatomía
  Patológica. Ed. Doyma.1989.
 Cotran R.S.; Kumar, V.y Robbins, S..
  Patología estructural y funcional. 4º Ed.
  1990
 “Guía de Métodos”. Sánchez Segura, M.;
  Nieman Y.;Cátedra de Anatomía
  Patológica, Facultad de
  Medicina, Universidad Nacional de
  Tucumán, 2001.
Fin de la presentación
BIOPSIA
ESTUDIOS COMPLEMENTARIOS
    Cátedra de Anatomía Patológica
        Facultad de Medicina
               U.N.T.
INFORME ANATOMOPATOLÓGICO

  Debe reunir las siguientes condiciones:

   Datos del paciente
   Descripción macro y microscópica detallada pero
    concreta
   Protocolo
   Diagnóstico jerarquizado
   Debe concretarse a los aspectos relacionados con el
    pronóstico y la terapéutica.
BIOPSIA

   Técnica de rutina:
           Hematoxilina- eosina
   Coloraciones especiales:
           Giemsa (Helicobacter Pylori)
           Azul Alcian (Esófago de Barret)
           Ziehl Nielsen (BAAR)
           Rojo Congo (Amiloide)
           PAS (Hongos)
OTROS MÉTODOS

 Microscopía electronica
 Inmunofluoresencia

 Polarización

 Inmunomarcación

 Patología Molecular:

 Captura híbrida

 PCR
MICROSCOPÍA ELECTRÓNICA

  -Alcanza   una magnificación de 500.000
  aumentos.
  -Utiliza un haz de electrones.
  -Se enfoca por campos magnéticos sobre
  pantalla fluorescente o placas fotográficas.
   -Se usa por ej. en patología glomerular
  para detectar cambios mínimos en
  podocitos,membranas
  basales,mesangio, etc.
INMUNOFLUORESCENCIA
   En tejidos sin fijación.

   Usa coloración fluorescente que debe
    registrarse microfotograficamente por que
    se degrada.

   Forma un trípode diagnóstico para las
    enfermedades glomerulares con la ME y los
    cortes de rutina con H-E, PAS y Tricrómico
Depósitos lineales de IgG en Riñón.
Sindrome de Goodpasture. X 100
POLARIZACIÓN


   Identifica el carácter birrefringente de
    ciertos tipos de depósito fibrilar
    colágeno.
   Por ejemplo: amiloide
INMUNOMARCACIÓN


Consiste en la detección de antígenos
  existentes en células o tejidos
Utiliza anticuerpos monoclonales o policlonales
  copulados con una enzima (peroxidasa) que
  se unen con dicho antígeno.
Se visualiza con microscopía óptica mediante
  coloración marrón del núcleo o citoplasma.
INMUNOMARCACIÓN

Epiteliales: citoqueratina 7 y 20.
Mesenquimáticos: vimentina,
 desmina.
Linfoides: antígeno común leucocitario-
SNC: S100, PGFA-
HMB 45: melanoma
CANCER DE MAMA
Inmunomarcación



Estrogénicos        Progesterónicos




Catepsina D    C-erb B-2 (HER2-neu)
PATOLOGÍA MOLECULAR

   Permite conocer el mecanismo por el
    cual se origina una neoplasia.
   Aporta información de valor
    pronóstico.
   Predice en algunos casos la respuesta
    a la terapia.
VALOR PRONÓSTICO
   Cambio cromosómico primario: asociado a los
    mecanismos moleculares responsables de la
    neoplasia.
   Cambio cromosómico secundario: la
    enfermedad sigue un curso más agresivo,
    haciéndose más resistente a la terapia y difícil de
    obtener una remisión completa.
   Presencia o ausencia de células normales: La
    ausencia indica peor pronóstico.
   Presencia de dobles diminutos: confiere mayor
    resistencia a la terapia.
TÉCNICA DE HIBRIDIZACIÓN IN SITU
(HIS)

   Permite detectar y localizar secuencias específicas
    de ADN o ARN.
   Requiere de una desnaturalización (rotura de los
    enlaces) de ADN de la muestra y de la sonda
    utilizada.
   Hibridación de los ADN de la muestra y la sonda
    por complementariedad de bases.
   Interpretación microscópica de acuerdo a la sonda
    utilizada.
TIPOS DE SONDA
   Centroméricas: marcan la región centromérica.
    Puede valorar la presencia o ausencia de
    alteraciones numéricas.
   De pintado cromosómico: abarcan todo el
    cromosoma. Para alteraciones numéricas y
    estructurales en metafase y translocaciones
    complejas.
   De secuencia única: marcan regiones
    cromosómicas muy concretas. Para alteraciones
    numéricas y estructurales en metafase e interfase.
NUEVAS TÉCNICAS DE
HIS
   Multicolor FISH: 24 sondas de marcado
    cromosómico marcados con fluorescencia sobre
    metafase.
   Mulibanding FISH: alteración estructural dentro
    de un mismo cromosoma, utiliza células en división.
   Hibridación Genómica comparada (HGC):
    detecta cambios numéricos de secuencias de ADN
    en tumores de índice proliferativo bajo.
Clase teórica biopsia
Clase teórica biopsia
Clase teórica biopsia
MICROARRAYS
   Son soportes sólidos en los que moléculas de ADN de cadena simple
    se fijan y permiten identificar por hibridación la expresión de una
    multitud de genes de una muestra biológica.
   Aislamiento de ARN de tejido normal y de una muestra de referencia.
   Síntesis de ADN y marcaje con dos colorantes fluorescentes (Cy3 y
    Cy5).
   Hibridación sobre el array.
   La diferencia de expresión del ARN entre ambos tejidos se puede
    evaluar a partir de la relación Cy3/Cy5 para cada gen.
   El análisis nos permite definir el patrón de expresión génica para cada
    muestra concreta.
MICROARRAYS

Principales aplicaciones:

   Clasificación de neoplasias morfológicamente
    similares pero con comportamiento biológico
    heterogéneo.

   Evaluación del pronóstico.

   Respuesta al tratamiento.
PCR

   Preparación y dosaje de ácidos
    nucleicos (ADN-ARN) por reacción en
    cadena de polimerasa (PCR), técnica
    de amplificación in vitro de secuencias
    conocidas del genoma, que permite la
    detección de deleciones, mutaciones o
    rearreglos cromosómicos
PCR
NO OLVIDAR
   Conocer datos clínicos y exámenes complementarios del
    paciente.
   Seleccionar el tipo de biopsia a realizar según la patología y
    órgano afectado.
   Envío del material en óptimas condiciones y con los datos
    pertinentes.
   Fijación y procesamiento adecuados.
   Descripción macroscópica.
   Diagnósticos microscópicos.
   Aspectos relacionados con el pronóstico y terapéutica.
BIBLIOGRAFÍA
 Besuschio, S.C.. Patología general. Ed. El Ateneo.
  Bs As .1992
 Cooke, R. A. Stewart, B. Atlas de Anatomía
  Patológica. Ed. Doyma.1989.
 Cotran R.S.; Kumar, V.y Robbins, S.. Patología
  estructural y funcional. 4º Ed. 1990
 XXII Congreso de la SEAP. Curso largo de Patología
  Molecular. 2005
 XXII Congreso de la SEAP. Aplicaciones
  diagnósticas del FISH en Patología. 2005
 XXII Congreso de la SEAP. Seminario del club de
  Inmunohistoquímica y Patología Molecular. 2005
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Clase teórica biopsia

  • 1. Biopsias Cátedra de Anatomía Patológica. Facultad de Medicina. U. N. T.
  • 2. OBJETIVOS  Definir biopsia  Señalar los aspectos generales, características primordiales e importancia de una biopsia  Describir las principales característicasde los diferentes tipos de biopsias  Manejar el tejido bajo las normas adecuadas para su fijación, rotulación y envío.  Interpretar el informe anatomo patológico y su significado clínico terapéutico.
  • 3. MÉTODOS DE LA ANATOMÍA PATOLÓGICA  Patología Postmortem. Autopsias  Patología Quirúrgica. Biopsias  Citopatología  Experimental  Otros
  • 4. BIOPSIA “Método de la anatomía patológica que estudia los tejidos obtenidos de pacientes vivos con fines diagnosticos, pronósticos y de seguimiento”
  • 5. TIPOS DE BIOPSIA Incisional Dirigidas Excisional No dirigidas De órgano Total Parcial Intraoperatoria Punción Biopsia
  • 6. TIPOS DE BIOPSIA Dirigida Endoscopica Colposcópica Dermatoscópica Estereotaxica No Dirigida A ciegas
  • 7. BIOPSIA INCISIONAL Cuando toma parte de la lesión. Ej: punch de en lesion extensa de piel biopsia endoscópica en tumor >2cm
  • 8. BIOPSIA ESCISIONAL Cuando en la muestra se extrae la lesión en su totalidad. Ej: losange de piel polipectomía
  • 10. BIOPSIA DE ÓRGANO Consiste en el estudio de materiales obtenidos durante un acto quirúrgico, generalmente el material está representado por todo o parte de un órgano. El procesamiento se realiza en base a un protocolo pre establecido que indica pautas que van desde la apertura de la pieza hasta obtención de muestras representativas.
  • 14. BIOPSIAS DIRIGIDAS Biopsias endoscópicas: es un tipo de biopsia dirigida que permite la obtención del material de órganos huecos ( tubo digestivo, árbol respiratorio, vias urinarias) o cavidades (pleural, pericardica, abdominal)
  • 15. BIOPSIAS DIRIGIDAS Biopsias colposcopicas : se utilizan en lesiones precursoras de cuello uterino.
  • 16. BIOPSIAS DIRIGIDAS Biopsias estereotáxicas: con la ayuda de métodos imagenológicos se localiza tridimensionalmente la lesión y se obtiene tejido. Ej mama y SNC
  • 18. BIOPSIA INTRAOPERATORIA Es el estudio del material obtenido durante el acto operatorio para determinar la naturaleza de la lesión y emitir un diagnóstico que permita al cirujano adoptar una conducta quirúrgica adecuada.
  • 19. BIOPSIA INTRAOPERATORIA Requiere de instrumental (criostato) y ambiente adecuados. Se utiliza el tejido en fresco. Fijador es el frío.
  • 23. BIOPSIA INTRAOPERATORIA: CONTROL DE MÁRGENES
  • 25. BIOPSIA POR PUNCIÓN  Consiste en la obtención de un cilindro de tejido del órgano afectado, utilizando agujas especiales de grueso calibre 0.2cm de diametro.  Se aplica para el diagnóstico de patologías que afectan a órganos parenquimatosos en forma difusa (cirrosis hepatica, glomerulopatias) o localizada solida (tumor)  El material obtenido se incluye totalmente y se procesa en forma seriada.
  • 26. BIOPSIA POR PUNCIÓN Puede realizarse :  A ciegas: sobre el sitio donde se sospecha que se encuentra la lesión.  Dirigida: mediante aparatos que permiten visualizar el sitio de punción (ecografía, TAC) Ej: punción biopsia de mama con mammotome.
  • 31. PASOS A SEGUIR  Recepción del material: todo el material ingresado deberá ir acompañado de los datos personales del paciente, breve resumen de la Historia clínica, tipo y características, motivo del estudio solicitado y diagnóstico presuntivo.  Fijación: permite preservar la estructura y funcion de los tejidos e impedir la autolisis. Consiste en sumergir el material en una solución de formol al 10 % en recipiente de boca ancha.
  • 32. PASOS A SEGUIR  Macroscopía: consiste en la inspección del material y su descripción, lo más semejante a la realidad, indicando los siguientes aspectos: ÓRGANOS PARENQUIMATOSOS  Tamaño, color, forma, superficie externa  Peso  Consistencia  Hallazgos  Superficie de corte
  • 33. PASOS A SEGUIR ÓRGANOS HUECOS  Tamaño, forma, serosa  Peso  Pared (espesor, consistencia, hallazgos)  Mucosa (color, pliegues, aspecto, hallazgos)  Luz
  • 34. PASOS A SEGUIR  Existen protocolos de descripción macroscópica tipo.  Se complementa con la selección de muestras representativas, lo cual también está pre-establecido en los protocolos
  • 35. PASOS A SEGUIR  Procesamiento histológico: Los pasos a seguir son: – Deshidratación: pases sucesivos en alcohol 96º, acetato (2) y Xilol (2). Permite extraer el agua de los tejidos. – Baño e inclusión en parafina – Corte – Coloración
  • 36. PASOS A SEGUIR  Diagnóstico: en algunos casos se utilizan protocolos microscópicos o breves descripciones microscópicas seguidas por uno o más diagnósticos que incluirán datos de valor pronóstico y de orientación terapéutica.
  • 37. INFORME ANATOMOPATOLÓGICO Debe reunir las siguientes condiciones:  Datos del paciente  Descripción macro y microscópica detallada pero concreta  Protocolo  Diagnóstico jerarquizado  Debe concretarse a los aspectos relacionados con el pronóstico y la terapéutica.
  • 38. BIBLIOGRAFÍA  Besuschio, S.C.. Patología general. Ed. El Ateneo. Bs As .1992  Cooke, R. A. Stewart, B. Atlas de Anatomía Patológica. Ed. Doyma.1989.  Cotran R.S.; Kumar, V.y Robbins, S.. Patología estructural y funcional. 4º Ed. 1990  “Guía de Métodos”. Sánchez Segura, M.; Nieman Y.;Cátedra de Anatomía Patológica, Facultad de Medicina, Universidad Nacional de Tucumán, 2001.
  • 39. Fin de la presentación
  • 40. BIOPSIA ESTUDIOS COMPLEMENTARIOS Cátedra de Anatomía Patológica Facultad de Medicina U.N.T.
  • 41. INFORME ANATOMOPATOLÓGICO Debe reunir las siguientes condiciones:  Datos del paciente  Descripción macro y microscópica detallada pero concreta  Protocolo  Diagnóstico jerarquizado  Debe concretarse a los aspectos relacionados con el pronóstico y la terapéutica.
  • 42. BIOPSIA  Técnica de rutina: Hematoxilina- eosina  Coloraciones especiales: Giemsa (Helicobacter Pylori) Azul Alcian (Esófago de Barret) Ziehl Nielsen (BAAR) Rojo Congo (Amiloide) PAS (Hongos)
  • 43. OTROS MÉTODOS  Microscopía electronica  Inmunofluoresencia  Polarización  Inmunomarcación  Patología Molecular:  Captura híbrida  PCR
  • 44. MICROSCOPÍA ELECTRÓNICA -Alcanza una magnificación de 500.000 aumentos. -Utiliza un haz de electrones. -Se enfoca por campos magnéticos sobre pantalla fluorescente o placas fotográficas. -Se usa por ej. en patología glomerular para detectar cambios mínimos en podocitos,membranas basales,mesangio, etc.
  • 45. INMUNOFLUORESCENCIA  En tejidos sin fijación.  Usa coloración fluorescente que debe registrarse microfotograficamente por que se degrada.  Forma un trípode diagnóstico para las enfermedades glomerulares con la ME y los cortes de rutina con H-E, PAS y Tricrómico
  • 46. Depósitos lineales de IgG en Riñón. Sindrome de Goodpasture. X 100
  • 47. POLARIZACIÓN  Identifica el carácter birrefringente de ciertos tipos de depósito fibrilar colágeno.  Por ejemplo: amiloide
  • 48. INMUNOMARCACIÓN Consiste en la detección de antígenos existentes en células o tejidos Utiliza anticuerpos monoclonales o policlonales copulados con una enzima (peroxidasa) que se unen con dicho antígeno. Se visualiza con microscopía óptica mediante coloración marrón del núcleo o citoplasma.
  • 49. INMUNOMARCACIÓN Epiteliales: citoqueratina 7 y 20. Mesenquimáticos: vimentina, desmina. Linfoides: antígeno común leucocitario- SNC: S100, PGFA- HMB 45: melanoma
  • 50. CANCER DE MAMA Inmunomarcación Estrogénicos Progesterónicos Catepsina D C-erb B-2 (HER2-neu)
  • 51. PATOLOGÍA MOLECULAR  Permite conocer el mecanismo por el cual se origina una neoplasia.  Aporta información de valor pronóstico.  Predice en algunos casos la respuesta a la terapia.
  • 52. VALOR PRONÓSTICO  Cambio cromosómico primario: asociado a los mecanismos moleculares responsables de la neoplasia.  Cambio cromosómico secundario: la enfermedad sigue un curso más agresivo, haciéndose más resistente a la terapia y difícil de obtener una remisión completa.  Presencia o ausencia de células normales: La ausencia indica peor pronóstico.  Presencia de dobles diminutos: confiere mayor resistencia a la terapia.
  • 53. TÉCNICA DE HIBRIDIZACIÓN IN SITU (HIS)  Permite detectar y localizar secuencias específicas de ADN o ARN.  Requiere de una desnaturalización (rotura de los enlaces) de ADN de la muestra y de la sonda utilizada.  Hibridación de los ADN de la muestra y la sonda por complementariedad de bases.  Interpretación microscópica de acuerdo a la sonda utilizada.
  • 54. TIPOS DE SONDA  Centroméricas: marcan la región centromérica. Puede valorar la presencia o ausencia de alteraciones numéricas.  De pintado cromosómico: abarcan todo el cromosoma. Para alteraciones numéricas y estructurales en metafase y translocaciones complejas.  De secuencia única: marcan regiones cromosómicas muy concretas. Para alteraciones numéricas y estructurales en metafase e interfase.
  • 55. NUEVAS TÉCNICAS DE HIS  Multicolor FISH: 24 sondas de marcado cromosómico marcados con fluorescencia sobre metafase.  Mulibanding FISH: alteración estructural dentro de un mismo cromosoma, utiliza células en división.  Hibridación Genómica comparada (HGC): detecta cambios numéricos de secuencias de ADN en tumores de índice proliferativo bajo.
  • 59. MICROARRAYS  Son soportes sólidos en los que moléculas de ADN de cadena simple se fijan y permiten identificar por hibridación la expresión de una multitud de genes de una muestra biológica.  Aislamiento de ARN de tejido normal y de una muestra de referencia.  Síntesis de ADN y marcaje con dos colorantes fluorescentes (Cy3 y Cy5).  Hibridación sobre el array.  La diferencia de expresión del ARN entre ambos tejidos se puede evaluar a partir de la relación Cy3/Cy5 para cada gen.  El análisis nos permite definir el patrón de expresión génica para cada muestra concreta.
  • 60. MICROARRAYS Principales aplicaciones:  Clasificación de neoplasias morfológicamente similares pero con comportamiento biológico heterogéneo.  Evaluación del pronóstico.  Respuesta al tratamiento.
  • 61. PCR  Preparación y dosaje de ácidos nucleicos (ADN-ARN) por reacción en cadena de polimerasa (PCR), técnica de amplificación in vitro de secuencias conocidas del genoma, que permite la detección de deleciones, mutaciones o rearreglos cromosómicos
  • 62. PCR
  • 63. NO OLVIDAR  Conocer datos clínicos y exámenes complementarios del paciente.  Seleccionar el tipo de biopsia a realizar según la patología y órgano afectado.  Envío del material en óptimas condiciones y con los datos pertinentes.  Fijación y procesamiento adecuados.  Descripción macroscópica.  Diagnósticos microscópicos.  Aspectos relacionados con el pronóstico y terapéutica.
  • 64. BIBLIOGRAFÍA  Besuschio, S.C.. Patología general. Ed. El Ateneo. Bs As .1992  Cooke, R. A. Stewart, B. Atlas de Anatomía Patológica. Ed. Doyma.1989.  Cotran R.S.; Kumar, V.y Robbins, S.. Patología estructural y funcional. 4º Ed. 1990  XXII Congreso de la SEAP. Curso largo de Patología Molecular. 2005  XXII Congreso de la SEAP. Aplicaciones diagnósticas del FISH en Patología. 2005  XXII Congreso de la SEAP. Seminario del club de Inmunohistoquímica y Patología Molecular. 2005
  • 65. Fin de la presentación