2. UNA MIRADA A
LOS PARÁSITOS EN
EQUINOS: TENIAS
INTRODUCCIÓN
La parasitología inicia como una ciencia aplicada en la
veterinaria, agricultura y salud pública, a mitad del si-
glo XIX, donde se expone la revolución biológica por
varios científicos de la época, poniendo fin a la teoría
de la generación espontanea, y podemos destacar la
presencia de Francisco Redi (1626 – 1697) como el pa-
dre de la parasitología moderna. En los equinos se pre-
sentan diferentes parásitos que muestran importancia
clínica en esta especie, donde encontramos artrópo-
dos (Gasterophilus sp.) y helmintos que se clasifican
en Nemátodos (parásitos redondos) y Platyhelmintos
(parásitos planos), que en este último grupo encontra-
mos los céstodos, los cuales haremos énfasis en este
boletín.Los equinos son frecuentemente afectados por
tres especies de céstodos pertenecientes a la familia
Anoplocephalidae, orden Cyclophilidae, (Anoplocephala
perfoliata, Anoplocephala magna y Paranoplocephala ma-
millana). Estos parásitos tienen características particu-
lares que permiten su diferenciación morfológica entre
especies (Cordero del Campillo y Rojo 1999, Kassai
2002). Hasta hace poco una infección por A. perfoliata
era considerada sin importancia clínica para el caballo,
posiblemente por la dificultad para su detección. En la
década de 1980, el interés por esta infestación cobró
importancia porque la tenia se asociaba con determi-
nados tipos de "accidentes intestinales", que implica-
ban invaginación intestinal y la ruptura del ciego. Estas
observaciones clínicas condujeron a renovar el interés
para establecer su posible relación con el cólico equino
(Proudman, 2003).
EPIDEMIOLOGÍA
A nivel mundial,A. perfoliata está distribuida con tasas
de prevalencia que varían del 13 al 82%, dependien-
do del lugar y del método diagnóstico (Williamson et
al., 1997). Brasil presenta prevalencias de 21,2% y 85%
(Sangioni et al., 2000, Pereira y Vianna 2006),Alemania
35.2% (Epe et al 2001),Australia 62 % Brucknell et al.
1995), Canada 13.6% (Slocombe, 1979), Francia 60,7%
(Collobert et al. 1997), México 28% (Anguiano et al.
2001), Reino unido 60% (Imrie y Jacobs, 1987).Aunque
Colombia se describe como una zona positiva para la
presencia de A. perfoliata (Benavides et al., 2008) exis-
ten escasos trabajos de investigación sobre el tema.
Usando métodos coprológicos, se estimaron prevalen-
cias del 13.97% en los municipios de Manizales,Villama-
ría, Chinchiná y Palestina (Aristizábal et al., 1981). En
el departamento de Caldas se evaluaron 135 équidos
(distribuidos en 105 equinos, 2 asnales y 28 mulares) el
31.7% resultaron positivos para el parásito (Benavides
et al., 2008). En un estudio realizado en Medellín, se
encontró presencia de Anoplocephala sp. en un 22.2%
(Cardona, 2005). En la Sabana de Bogotá se presentó
una prevalencia del 60% (Mateus, 1976).
3. CICLO DEVIDA
Los équidos albergan sólo tres especies de céstodos,
y sólo uno de ellos puede ser considerado común y
como casi todos los céstodos requieren de un hués-
ped intermediario para la transmisión, que implica un
artrópodo intermedio, los ácarosoribátidos que sirven
como huéspedes intermediarios de céstodos anoplo-
cephalide. Estos ácaros se encuentran presentes en
las pasturas de la vida libre y son muy abundantes, los
detalles acerca de supresencia,abundancia,y la adecua-
ción del hábitat para estos huéspedes intermediarios
debe ser entendido. Son comunes en las raíces de las
plantas (principalmente pasto) y en el suelo o cerca de
lasraíces, en todo el mundo, la densidad depende de
lahumedad del suelo, la temperatura y contenido de-
materia orgánica, encontrándose hasta 20.000 ácaros
Oribátidos por metro cuadrado (Estrada-Peña, Bous-
quet,. Sanquer, Sánchez Sanz, 2007). Estos ácaros de
vida libre ingieren los huevos de tenia de los equinos
infestados, accidentalmente mientras se alimentan de
materia orgánica en los niveles superiores del suelo y
forraje. Después de la ingestión, una oncósfera (esen-
cialmente el escólex de un gusano adulto futuro) se
digiere a partir del huevo dentro del tracto alimentario
de los ácaros. La oncósfera migra por la cavidad celó-
mica de los ácaros, y se desarrolla en una etapa infec-
ciosa conocida como un cisticercoide (2-6 meses). Los
cisticercoides probablemente permanecen durante el
tiempo de vida del ácaro (Cordero del Campillo,2001).
Los caballos se infectan por ingestión inadvertida delos
ácaros, en el pastoreo. Los cisticercoides se digieren
liberándose del tejido del ácaro en el tractogastroin-
testinal del caballo, los escolex primitivos se adhieren
a las paredes de la región blanco delintestino, llegando
a céstodos adultos (2-4 meses),los que son capaces
de regenerar un organismo completo (conocido como
estróbilo) desde el escólex (Reynemeyer, 2013). El es-
tróbilo está conformado por anillos llamados proglóti-
des, que cuentan con un sistema reproductor mascu-
lino y femenino, donde se forman dentro del estróbilo
los huevos de las tenias.
A diferencia de los nemátodos, los céstodos equinos
aparentemente no liberan los huevos de forma indivi-
dual, más bien, liberan proglótides grávidas que alcan-
zan a contener hasta 200 huevos, que probablemente
se desintegran durante el tránsito al ambiente exter-
no. Esto resulta en una distribución bastante irregular
de huevos de céstodos en la salida de la materia fecal
de los caballos infestados, con evidentes implicaciones
diagnósticas, por una distribución intermitente e irre-
gular de los huevos en la materia fecal del equino,com-
pletando el ciclo de este parásito.
DIAGNÓSTICO
En la actualidad el diagnóstico de las infestaciones de
céstodos en equinos sigue siendo un reto, donde se
debe analizar las debilidades y fortalezas de cada me-
dio diagnóstico.
•Examen coprológico: Al presentarse una eliminación
intermitente de los huevos de los céstodos y desinte-
grase la proglótide en el transito del intestino, dificul-
ta la detección de huevos por este método. Aunque
Rehbein.(2011) presenta un estudio donde informa
mejores resultados con medios enriquecidos con azú-
cares muestra una sensibilidad del 61% mejorando las
técnicas tradicionales de coprológicos con medios sa-
turados de sales o sulfato de zinc, pero no se obtie-
nen resultados confiable con infestaciones bajas (Rey-
nemeyer, 2013)
Tomado de: Handbook of equine
parasite control, 2013
4. •Serología: El diagnóstico por ELISA esta actualmen-
te disponible para la detección de anticuerpos contra
12/13 kDa de excreción/secreción (ES) de antígenos
de A. perfoliata. El ELISA ha sido ampliamente validado,
con determinación de la sensibilidad y especificidad de
la prueba diagnóstica, así como la correlación con la
carga de gusanos conocidos (Proudman & Trees 1996).
Sin embargo, la interpretación de los resultados no es
tan sencillo como se podría suponer. Un estudio en un
matadero danés evaluó este ensayo y encontró mayo-
res niveles de fondo de anticuerpos en caballos A. per-
foliata negativos, lo que resultó en una alta proporción
de resultados falsos positivos (Kjaer et al. 2007). Otro
estudio evaluó los niveles de anticuerpos después del
tratamiento (Abbott et al. 2008) y se ha encontrado
que los caballos mantuvieron anticuerpo-positivo has-
ta 5 meses después del tratamiento. Además, datos
recientes de caballos co-infectadas con A. perfoliata y
A. magna sugieren una falta de especificidad del anti-
cuerpo de suero ELISA (Meana et al. 2009). Estas defi-
ciencias indican que los títulos de anticuerpos reflejan
la exposición más que la infestación actual. La prueba
de ELISA en suero sigue siendo una prueba muy útil
para la investigación histórica a la exposición de Ano-
plocephala sp. en un rebaño, pero un resultado positivo
para un animal individual puede no ser un indicador
fiable de la infestación actual.
•Diagnóstico molecular: En un estudio realizado por la
Dra. Barrera (2011), donde plantea el diagnóstico por
medio de PCR para Anaplocephala perfoliata, concluye
que esta técnica presenta una sensibilidad y especifici-
dad del 100%,pero representa altas inversiones econó-
micas y por el tipo de prueba solo identifica infestacio-
nes por A. perfoliata.
SINTOMATOLOGIA
En grandes números (> 20 adultos), la Anoplocephala
perfoliata puede causar una inflamación severa en los
sitios de unión alrededor de la unión ileocecal. Ulce-
ración de la mucosa con formación de pseudomem-
branas, junto con fibrosis de las capas musculares del
intestino ciego, e incluso inflamación transmural de la
capa adventicia.Encuestas en mataderos han relaciona-
do las cargas de tenia con el grado de daño patológico
local (Williamson et al 1997;.. Kjær et al 2007), pero
no hay ninguna evidencia correspondiente que corre-
laciona el grado de daño de la mucosa a los signos
clínicos en infestaciones bajas con cargas menores de
20 parásitos adultos, causando poco daño a la mucosa.
Teorías adicionales han demostrado que suelen obsta-
culizar la motilidad digestivo (peristaltismo), al produ-
cir daño local en el sistema nervioso autonómico del
intestino (Wright 1972). Numerosos informes de ca-
sos han asociado la infestación por tenia con intusus-
cepción ileocecal e incluso ruptura intestinal (Barclay
et al 1982, Owen et al 1989, Reinemeyer, 2013)
Tomado de: Handbook of equine parasi-
te control, 2013
El control y la prevención es la mejor opción
5. En conclusión este parásito da lugar a la ulceración
de la membrana mucosa y la inflamación con engro-
samiento y endurecimiento de las capas más profun-
das de la pared intestinal. Estos cambios patológicos
probablemente representan algunos casos de diarrea
persistente y puede predisponer a invaginación del
íleon en el ciego o rotura de la pared intestinal en
la vecindad de la válvula ileocecal (Barclay, Phillips, y
Foerner, 1982; Beroza et al, 1983). El 81% de los cóli-
cos por Impactación ileocecal fueron relacionados a la
presencia de A. perfoliata, y demostró que los caballos
con este tipo de infestaciones eran 28 veces mas pre-
disponentes de sufrir esta patología, que los caballos
no infestados.(Proudman, 1998)
TRATAMIENTO
El praziquantel es el único miembro de las isoqui-
nolonas utilizado en los caballos. Es también el único
en que no tiene actividad contra nemátodos (gusanos
redondos) siendo eficaz sólo contra céstodos,o tenias
(Anoplocephala sp.). Actúa mediante el ingreso de Ca
al parasito resultando en una parálisis espástica y con
la interrupción el tegumento (la capa exterior del gu-
sano), que hace que el gusano se incapaz de mantener
un equilibrio balanceado de líquidos corporales y pro-
ductos químicos. Para el control de este tipo de infes-
taciones, se ha demostrando mayor eficacia el uso de
praziquantel como cestodicidas observando una efec-
tividad desde el 98% (Cordero del Campillo, 2001).
Los caballos pueden ser tratados con una dosis única
de 1,5 mg / kg (Craig et al, 2003). En el 2003 la FDA ,
aprobó la combinación de Praziquantel con otros prin-
cipios activos, como antihelmínticos de amplio espec-
tro como la ivermectina. Para la rápida recuperación
de los potros, tras la eliminación del agente etiológico,
debe recomendarse una cuidados alimentación, con
concentrados ricos en proteínas, minerales y vitami-
nas que complementen los forrajes y henos.Puede ser
conveniente el cambio de praderas para evitar reinfes-
taciones..
M
ÁXIMO
En desparasitación
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endectocida en pasta, a base de ivermectina y praziquantel, de amplio espectro, efectivo en el control de parásitos internos; nemátodos, cestodos y larvas
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aplicador especial, para regular la dosis, lo que facilita su manejo.Tiene un volumen de 6 mL. (6.42 g.) para manejar 600 Kg., lo que facilita su dosificación y
administración, pues se aplica poco volumen por dosis y evita el rechazo por el animal. Equimax es un producto seguro, puede ser utilizado en animales de
cualquier tipo y edad, incluyendo potros y yeguas gestantes. Indicaciones: Para el tratamiento y control de parasitosis causadas por nemátodos, céstodos y
parásitos externos comunes en caballos.Vía de Administración: Vía Oral. Presentación: Jeringa Dosificadora por 6 mL. (6.42 g.). Dosis: 1 mL/100 Kg, vía
Oral en la parte posterior de la lengua. Precauciones: No usarse en animales destinados para consumo humano. Conservar en el empaque original en un
lugar seco, fresco y protegido de la luz solar. Los organismos acuáticos son altamente sensibles a la toxicidad de la ivermectina por lo cual los recipientes
vacíos y cualquier contenido residual deben ser desechados en forma segura enterrándolos o incinerándolos.
David Quintana
EspecialistaTécnico Animales de Compañía
Departamento de Marketing /
Virbac Colombia Ltda.
david.quintana@virbac.com.mx
www.virbac.co