Laboratorio

2. Concepto
 Es una prueba ampliamente realizada en los
centros sanitarios. Consiste en la toma de una
muestra del esputo obtenido bien de forma
espontánea tras un acceso de tos, o bien
mediante el uso de aparatos capaces de inducir
el esputo, de forma que, una vez conseguida la
muestra, puedan ser analizadas sus células,
provenientes del tracto respiratorio del paciente,
o bien realizar un estudio microbiológico con el fin
de aislar un posible germen infeccioso.

3. Objetivos
 Se trata de una prueba muy útil, que es capaz de
detectar tumores, o en ocasiones infecciones por
diversos microorganismos, lo cual supone una gran
ayuda en el diagnóstico y tratamiento de las
diferentes enfermedades pulmonares.

4. Materiales
 Equipo de lavado de manos
 Materiales de bioseguridad
 Guantes
 Recipiente de boca ancha
 Alcohol al 50%
 Aerosoles de suero salino

5. Procedimiento
 La muestra debe ser obtenida en perfectas
condiciones.
 correcta higiene bucal lavado y enjuague.
 el paciente deberá arrancar profundamente un
esputo secreciones más inferiores.
 esputo en la primera hora de la mañana

6. 1. Enjuagar la boca con agua antes de emitir la muestra.
3. Inspirar dos veces profundamente, conteniendo el aliento durante unos
pocos segundos después. Inspirar por tercera vez y expulsar el aire
vigorosamente. Inspire una vez más y luego toser.
5. Sostener el envase cerca de los labios y depositar la muestra en el con
cuidado después de haber generado una tos productiva.
Indicaciones para la toma de
muestra

7. 1. Si la muestra es insuficiente, invitar al paciente a que tosa de nuevo
hasta obtener una muestra satisfactoria.
3. Cerrar bien el envase.
5. Rotular claramente.
7. Lavar las manos con
agua y jabón.
8. Traer la muestra al centro de salud o al laboratorio.
Indicaciones para la toma de
muestra

9.  Se puede conservar en una nevera un tiempo máximo de 24
horas, o bien de no poder remitir la muestra en ese plazo se
deberá añadir a la muestra 20 cc de alcohol al 50%
pudiéndose conservar posteriormente a temperatura
ambiente.
 La muestra debe enviarse lo antes posible al departamento
de microbiología, aunque si no pudiera realizarse de una
forma inmediata se recomienda mantener en nevera. En este
caso no se recomienda la instilación de alcohol en la muestra
pues puede alterar la composición de la muestra.

11. Concepto
 Visión directa en esputo del bacilo de tuberculosis,
con técnicas de tinción para bacilos ácido-alcohol
resistentes (Ziehl-Neelsen) o auramina.

12. Materiales
 El equipo mínimo necesario para realizar las bacilosco-pias
está integrado por los siguientes elementos:
- batas
- Microscopio, en el caso de realizarse la técnica de
fuorescencia es necesario, además, un microscopio de
fuorescencia con oculares de 40 x
- Envases para recolección de muestras
- Láminas portaobjetos
- Frascos color ámbar para soluciones colorantes
- Dispositivo para desechos
- Bandeja

13. Materiales
-Un soporte
- Varillas de vidrio u otro soporte inoxidable
- Un mechero
-Lápiz marcador de vidrio: graso o de tinta indeleble
- Papel de filtro
- Una pinza
- Un recipiente para descartar los envases con muestras
-Soluciones antisépticas: fenol al 5% hipoclorito de sodio
al 1%

14. Procedimiento
 Lavarse las manos.
 Ordenar las muestras.
 Marcar los portaobjetos.
 Partir el aplicador.

15.  Seleccionar la partícula
más purulenta.
 Depositar en el
portaobjetos.
 Extender la muestra
uniformemente.
 Fijar el extendido cuando
esté totalmente seco.

17. Baciloscopía
Preparación
del frotis
Tinción
Lectura
Toma de
muestra

18.  Material mucopurulento.
 El volumen debe ser de 3 a 5 mL.
 Evitar la exposición al calor excesivo y la luz solar directa
 El derrame del contenido del envase puede causar
contaminaciones
 Usar el medio de transporte que garantice mayor rapidez y
confianza de entrega
Indicaciones para la toma de muestra
Precauciones

19. Mucoide
Saliva o expectoración inducida
Hemoptisis
Calidad de la muestra
Purulento

20. Cada muestra, para ser enviada, debe ser rotulada con los siguientes datos:
No. de serie* : BCIII04-219A
No. de serie* : BCIII04-219A
Juan López Ramírez
Juan López Ramírez
36 años Sexo M
36 años Sexo M
Expectoración
Expectoración
Estado BC
Estado BC
CSU 4
CSU 4
25-09-2006
25-09-2006
La conservación, manejo y envío de muestras para cultivo

22.  Esta prueba diagnóstica consiste en analizar las heces de una persona y es
una herramienta de gran utilidad en múltiples enfermedades. Sirve para
determinar el contenido y peso de las heces, si hay muchas grasas, pus,
moco o sangre, detectar posibles microorganismos que estén causando
cuadros infecciosos, etc.

23. Tipos de exámenes de heces
Examen Parasitológico: consiste en la detección de
parásitos como:
- helmintos (gusanos) que se pueden ver a simple vista
- huevos o larvas de estos helmintos, que solamente son visibles por
medio de microscopio
- protozoarios que pueden estar provistos de movilidad o carecer de
ella y encontrarse como formas inmóviles, resistentes (quistes)
Examen Bacteriológico: consiste en detectar, mediante el
cultivo de las heces fecales, bacterias causantes de
enfermedades

24. Examen Químico: se efectúan principalmente para
descubrir sangre oculta en las heces

25. Recolección de heces fecales
La confiabilidad de los resultados depende del cuidado que
se ejerza al recolectar las heces fecales. Se deben tomar las
precauciones que se exponen a continuación para los análisis
de heces fecales en busca de parásitos.
1. Marcar todas las muestras con el nombre del paciente, fecha,
persona que tomo la muestra. Nombre y edad del paciente,
Número de cuarto o sala, naturaleza de la muestra y sitio de
donde se obtuvo, diagnóstico clínico y duración de la
enfermedad, y prueba requerida.

26. 2. Recolección en cantidad suficiente. Ésta es necesaria para:
- facilitar la detección de los parásitos cuando se encuentran poco
concentrados
- evitar que las heces se sequen con demasiada rapidez. Cada muestra debe contener
por lo menos 4ml
3. Uso de un recipiente apropiado. Se hará lo posible para que el paciente
disponga de recipientes como los que se indican a continuación para recoger la
muestra:
- Recipiente de boca ancha para recoger las heces, no es necesario que esté
estéril, solo es preciso que esté limpio. No contendrá restos de jabones,
detergentes, desinfectantes o iones metálicos.
- Recipiente estéril de boca ancha y cierre hermético para enviar la muestra.
(ejemplo: frasco de urocultivos). La muestra de heces para colocar en el frasco
se recoge con espátula o bajalenguas.
- Medios de transporte para heces. Se emplean solo si el envío de la muestra
se demora y sesolicita en laboratorio de Microbiología. Existen sistemas
comerciales para bacterias. (Cary-Blair o solución de glicerol tamponado)
Recolección de heces fecales

27. 4. Examen de las heces cuando aún están frescas.
- las heces se deben examinar menos de una hora después de que se
hayan recogido
- si en el laboratorio se recibe al mismo tiempo cierto número de muestras,
apártese las que contienen heces líquidas, moco y sangre y examínense
primero, ya que puede haber en ellas amebas que mueren rápidamente.
Recolección de heces fecales

28. Lo que no se debe hacer
1. Nunca deje las muestras de heces expuestas al aire en
recipientes sin tapa.
2. Nunca deje muestras para examinarlas al terminar la
mañana (2 o 3 horas después)
3. Nunca acepte muestras mezcladas con orina
4. Nunca coloque el recipiente que contiene la muestra de
heces sobre la plantilla de solicitud del examen
5. Obtener en lo posible muestras antes de administrar
antibióticos a agentes antimicrobianos

29. Caracteres macroscópicos
1) Cantidad. Depende fundamentalmente de los residuos
alimenticios procedentes de la dieta, según su contenido en
verduras y frutas, es decir, en celulosa. Y de la existencia de
estreñimiento o diarrea en el enfermo.
Por término medio, y con una alimentación corriente, se
eliminan normalmente entre 150 y 250 g por día de heces.
Con un régimen vegetariano se llega a 370 g., más, mientras
que con un régimen cárneo se excretan sólo unos 60 g. diarios.
En estado patológico pueden alcanzar las deposiciones un
peso superior al kilogramo diario, y si se trata de diarreas
agudas graves, pueden eliminarse varios litros diarios.

30. 2) Consistencia. Normalmente, la deposición debe ser sólida y "formada", es
decir, cilíndrica y consistente para mantener esta forma después de
excretada. El régimen de prueba sin celulosa puede dar lugar a unas heces
algo más blandas, pero normales.
Los estreñidos eliminan deposiciones pequeñas, duras, y a menudo "en bolas"
o "caprinas". Las falsas diarreas de los constipados se caracterizan por la
deposición mixta, compacta la primera parte y pastosa el final.
Son fluidas, pastosas o líquidas las heces en las diarreas. En el cólera se han
comparado con la "sopa de arroz", y en la tifoidea con el "puré de
guisantes", pero esta última es inconstante en su presentación. Parece una
"papilla" la deposición de los enfermos con insuficiencia gástrica
descompensada. Es cremosa y pegajosa, como "mantequilla", en las
esteatorreas de origen biliar, pancreático o entérico (esprue y diarreas
esprueiformes en el adulto, celiaquía del niño). Pegajosa y oscuras, como
alquitrán, son generalmente las heces de las melenas. Pastosa y esponjada,
espumosa, es la deposición en la llamada dispepsia de fermentación. Son
apreciables los restos groseros de alimentos en la "lienteria" por tránsito
rápido, especialmente en la insuficiencia gástrica.
Caracteres macroscópicos

31. 3) Color. Normalmente y con dieta mixta, la deposición es de color pardo o
marrón más o menos oscuro en el adulto, oscureciéndose a medida que
pasa el tiempo expuesta al aire. Con dieta láctea y en los lactantes es
amarillo canario. Con dieta cárnea se hace marrón oscuro. Una
alimentación rica en verduras (espinacas especialmente) tiñe las heces de
un color verdoso, mientras que si preponderan las patatas y el pan, las
heces se aclaran hacia un marrón amarillento. El régimen de prueba
antedicho tiende a producir heces de color ocre, normales. Un exceso de
café oscurece la deposición.
En general, las heces duras de los estreñidos son más oscuras que
normalmente, y las deposiciones diarreicas suelen ser más claras, aunque
en esto último hay numerosas excepciones.
Caracteres macroscópicos

32. 4) Olor. El olor fecal, característico, se hace fétido en todos los
procesos que cursan con petrufacción de las proteínas
ingeridas o endógenas (lo cual puede ocurrir, aunque no
obligadamente, en pacientes con insuficiencia gástrica, biliar o
pancreática, colitis, cáncer, etc.), y sobre todo en las melenas,
en el cáncer de colon y en el absceso abierto en el intestino
grueso. En la acolia es desagradable, pero no hediondo
(SCHMIDT, EPPINGER).
De olor rancio, agrio, son las "diarreas de fermentación" con
tránsito rápido a partir del ciego. Inodoras se vuelven las
deposiciones durante las curas con antibióticos intestinales. De
olor amoniacal son las diarreas urémicas y en las fístulas
rectovesicales.
Caracteres macroscópicos

33. 5) Moco. Su aparición en las deposiciones suele ser reconocible ya
macroscópicamente, por lo menos en la emulsión de heces observada sobre
todo oscuro. Si está finamente dividido y mezclado en las heces, dándoles un
aspecto brillante procede del intestino delgado, a diferencia del moco en
copos visibles, que tienen un origen más bajo y sobre todo en tiras o gleras,
cuyo punto de partida está en el colon distal. Su significación clínica es muy
distinta si se presenta aisladamente como moco perlado, transparente, o si es
opaco, mezclado con células epiteliales, sangre o pus: en el primer caso se
trata de un catarro alérgico, puramente funcional o mixoneurosis ("colitis
mucomembranosa"), y excepcionalmente, si es muy abundante, de un tumor
vellos; mientras que en el segundo caso señala la existencia de un proceso
inflamatorio, más o menos profundo (enteritis y colitis genuinas)
Caracteres macroscópicos

34. Examen directo Macroscópico
Fundamento: permite observar directamente las características
morfológicas de los parásitos adultos, enteros o fraccionados,
así como los cambios en las características organolépticas de
las heces eliminadas (color, presencia de sangre y/o moco,
consistencia,…)
Materiales:
- Suero fisiológico
- Aplicador (bajalengua)
- Pinza de metal
- Malla metálica

35. Procedimiento: Agregar suero fisiológico en cantidad suficiente
para homogeneizar la muestra. En caso de presencia de
parásitos adultos, tamizar o colar la muestra.
Observación: las características organolépticas de las heces son
útiles para la ayuda diagnóstica (consistencia, color, presencia
de moco, sangre, alimento sin digerir), así como la presencia de
gusanos cilíndricos, anillados o aplanados.
Resultado: en caso que la muestra no sea normal, es decir,
contenga información útil para el diagnóstico se debe adicionar
al informe del examen parasitológico las características
macroscópicas de las heces.
Examen directo Macroscópico

36. Examen directo Microscópico
Fundamento: buscar en muestras frescas la presencia de formas
evolutivas móviles de parásitos de tamaño microscópico
(trofozoitos, quistes de protozoos, larvas o huevos de helmintos).
Materiales:
- láminas portaobjetos
- laminillas cubreobjetos
- aplicador de vidrio o madera
- microscopio óptico
- marcador de vidrio
- suero fisiológico
- solución de lugol
- verde brillante
- rojo neutro

37. Procedimiento: colocar en un extremo de la lámina
portaobjetos una gota de suero fisiológico y con ayuda del
aplicador agregar 1 a 2 mg de materia fecal, emulsionarla y
cubrirla con una laminilla cubreobjetos. Colocar en el otro
extremo de la lámina portaobjeto una gota de lugol y
proceder a la aplicación de la muestra fecal como se hizo
anteriormente. Con el suero fisiolígico, los trofozoitos y quistes
de los protozoarios se observan en forma natural y con lugol,
las estructuras internas, núcleos y vacuolas.
En algunos casos se recomienda el uso de colorantes vitales,
debido a que no alteran la actividad del trofozoito (verde
brillante 0,2% y rojo neutro 0.01%)
Examen directo Microscópico

38. Observación: observar al microscopio a x10 o x40. No se
aconseja usar el objetivo de inmersión x100 porque puede
ensuciar el microscopio.
Recorrer la lámina siguiendo en sentido direcciónal. Izq-der. O
arriba-abajo
Resultado: en un formato y en el cuaderno de registro
correspondiente anotar el nombre de la especie del parásito y
su estadio evolutivo, indicando la densidad
Examen directo Microscópico

39. Registro de resultados de
Exámenes de heces fecales
Se deben anotar los sgtes detalles:
2. Consistencia de las heces
3. Anomalías que se observan a simple vista
4. Parásitos encontrados en el examen microscópico,
especificando:
- especie
- etapa de desarrollo
- cantidad

41. DEFINICION
Detección de un
parasito llamado:
Enterobius
Vermicularis
Oxiuriasis (pidulles)

42. MATERIALES
 Equipo de lavado de manos
 Guantes
 Depresor de lengua (madera, plástico, etc.), de 7-8
cm de longitud por 1,5 cm de anchura
 Cinta de papel adhesivo transparente
 Portaobjetos

43. PROCEDIMIENTO
 No se buscaran los huevos en las heces sino en los
márgenes del ano que es donde la hembra va a
depositarlos.
 Se emplea el depresor de lengua (madera, plástico,
etc.), de 7-8 cm de longitud por 1,5 cm de anchura, en
uno de cuyos extremos se coloca la cinta de papel
adhesivo transparente con la cara engomada hacia
fuera, o sea, contraria al depresor.

44. PROCEDIMIENTO
 Por la mañana, antes de levantarse el explorado,
se separan las nalgas y se hace presión hacia
ambos márgenes, para que en la cara engomada
queden adheridos los huevos.
 La cinta adhesiva se coloca sobre un portaobjetos
con la cara engomada hacia el cristal
 Se envía al laboratorio en un sobre o envuelto en
varias capas de papel

46. Materiales
 Recolector de orina estéril.
 Riñón o bandeja.
 Torundas de algodón.
 Jabón o solución desinfectante.
 Suero fisiológico o agua.
 Dispositivo para desechos.
 Orden médica.

47. Indicaciones
- Realizar un lavado genital completo, con abundante agua y con jabón, antes de
recolectar la muestra en el recipiente estéril.
- Recoja la primera orina de la mañana de la siguiente manera: descarte la primera
parte de la micción, a continuación, y sin detener la micción deberá recogerse la
segunda mitad de la misma en un frasco estéril de unos 20 o 35 ml. evitando tocar el
interior o borde del frasco y descarte la última parte.
- Cuando haya terminado, ajuste la tapa del envase y limpie cualquier resto de orina
que hubiera salpicado al exterior de éste. Compruebe que su nombre esté
correctamente escrito en el envase.
- Entregue el envase con la orina, bien tapado, al personal que lo atiende, dentro de
las 2 horas siguientes a la recogida la muestra.
Tenga en cuenta que la recolección adecuada nos permitirá proporcionar resultados útiles a
su médico.

48. EXAMEN FISICO
COLOR: Normalmente amarillo claro
La orina normal puede variar en color, desde casi
incolora hasta amarilla oscura. Algunos alimentos,
como la remolacha y la mora, pueden darle a la
orina un color rojo.
 Rosado o Rojo: en hematuria, porfiria, hemoglobinuria,
ingesta de remolacha, anilina, sind. carcinoide.
 Pardo o Coluria: ictericia hepatocelular u obstructiva.
 Negra: alcaptonuria, en metahemoglobinemia.

49. ASPECTO: Normalmente es transparente.
Puede ser turbio por: piurias, fosfaturias. Proteinurias
DENSIDAD: 1.010 1.020
Aumenta en diabetes mellitus y
Disminuye en diabetes insípida
pH: Normalmente es ácida (Pero oscilan de 4.5-8.0)
Es muy ácida en acidosis metabólica, o por medicamento.
Alcalina en alcalosis metábolica
EXAMEN FISICO

50. GLUCOSA:
Negativo, normalmente.
Positivo,
Sí glicemia >(160-180
mg/dl), aparece en la
orina (glucosuria) DM I-II.
Causa renal, glucosuria
renal o normoglucémica:
diabetes renal, glucosuria
del embarazo, disfunciones
tubulares.
EXAMEN QUIMICO

51. CUERPOS CETONICOS:
Negativo, normalmente.
Positivo, (cetonuria). Puede presentarse en:
 Cetoacidosis diabética
 Ayuno prolongado
 Incapacidad para metabolizar carbohidratos
 Hiperinsulinismo con hipoglicemia
 Agotamiento hepático, etc.
EXAMEN QUIMICO

52.  PROTEINAS
Normalmente se elimina hasta 150mg/24
horas o 10 mg por decilitro de orina. Que
incluye albúmina y otras proteínas.
Causas de proteinuria:
Falsa proteinuria: por leucocituria
EXAMEN QUIMICO

53.  PROTEINAS
 < 0.5 g/l Suele corresponder a indicios
 0.5 - 1.0g/l +
 1 - 5 g/l ++
 5 - 10 g/l +++
 > 10 g/l ++++

54. BILIRRUBINA.
Coluria:
Indica la presencia de bilirrubina directa en orina,
que confiere una coloración amarillenta intensa que
llega hasta color de cerveza oscura. Aparece en
todas las ictericias obstructivas o parenquimatosas.
Esta ausente en las ictericias hemolíticas o
prehepáticas.
La espuma, al agitar la orina esta teñida también
de orina.
EXAMEN QUIMICO

55.  Urobilina:
 Normalmente se encuentra una pequeña cantidad
en la orina (+-).
 Se hace negativa cuando existe ictericia
obstructiva completa
 Esta aumentada en las anemias hemolíticas
EXAMEN QUIMICO

56.  Nitritos:
 Negativo: Normalmente
 Positivo: Indicativo de infección urinaria.
 Por la nitrato reductasa presente en las
enterobacterias
EXAMEN QUIMICO

57.  Estearasa Leucocitaria:
 Negativo: Normalmente
 Positivo : es indicativo de piuria
 Hemoglobina:
 Negativo: Normalmente
 Positivo: Es indicativo de hemólisis intravascular,
Hemoglobinuria paroxística nocturna
Hemoglobinuria paroxística “a frigore”
Post transfusiones incompatibles
Hemoglobinuria de la marcha,
Hemolíticas mecánicas, etc.
EXAMEN QUIMICO

58. Procedimiento en niños
 Informar al niño o algún familiar del procedimiento a
realizar.
 Lávese las manos .
 Prepare la bandeja con todo el material necesario.
 Colóquese guantes estériles.
 El niño debe ser sostenido por un ayudante, en posición
decúbito dorsal con las piernas flectadas y abducidas.

59. Procedimiento en niños
 En el R.N y el lactante se realiza aseo genital prolijo y
fijar en forma adecuada el recolector desechable estéril
de 100cc.
 El recolector es mas fácil de aplicar si se fija primero en
el perineo y se prosigue después hasta la sínfisis.
 Una vez que haya orinado el lactante se retira el
recolector, y se extrae la muestra de orina con una
jeringa estéril y se introduce en el tubo correspondiente.

60. Procedimiento en niños
 El recolector puede estar como máximo 30 minutos
instalado, mas tiempo la muestra se considera
contaminada.
 En el niño mayor donde es posible obtener una
muestra de segundo chorro, el procedimiento es
igual al adulto.

65. Análisis de orina que es el más
frecuentemente solicitado
Observación al microscopio de una
muestra de orina
Permite el recuento e identificación de
elementos celulares
Pasos principales
Obtención de la
muestra
Preparación de
la muestra
Examen
microscópico de la
muestra

66. Materiales (toma de muestra)
 Equipo de lavado de manos
 Guantes
 Jabón desinfectante
 Agua destilada o suero fisiológico
 Gasa estéril
 Recipiente de boca ancha estéril
 Bandeja
 Plumón indeleble
 Pato
 Orden médica

67. Toma de la muestra
 Realizar el lavado de manos.
 Debe hacerse una antisepsia previa de la zona genital.
 Destapar el frasco.
 Colocar la tapa con el lado plano hacia abajo.
 Recoger la muestra de la porción media de la micción.
 Cerrar el frasco.
 Rotular con el nombre del paciente.
 Enviarlo al servicio donde será analizado.

68. Materiales (laboratorio)
 Muestra de orina
 Protocolo de solicitud
 Centrífuga
 Microscopio
 Lámina portaobjetos con cubreobjetos
 Ansa de 0,05 ml

69. Procedimiento
 Mezclar perfectamente la muestra (10ml).
 Centrifugar a velocidad moderada (2000 RPM)
durante 5 minutos.
 Eliminar el liquido sobrenadante.
 Pasar una gota del sedimento al portaobjetos con el
ansa y taparla con un cubreobjetos.
 Examinar toda la zona a 10x y 40x.

71. Cultivo de orina
Para diagnosticar bacteriuria
significativa
Cultivar la mayor parte de
microorganismos que infectan el aparato
urinario
Para instaurar un tratamiento adecuado

72. Materiales (laboratorio)
 Muestra de orina
 Ansa calibrada de 0,05 ml
 Placa de agar Cled
 Protocolo de solicitud
 Estufa de incubación

73. Procedimiento
 Con el ansa se hacen tres estrías.
 Incubar la placa en la estufa a 37 ºC.
 Retirar la placa de la estufa 24 horas
después.
 Realizar el recuento de colonias.

74.  Desarrollo de colonias:
 En la 1ra estría
103
unidades formadoras de colonia por ml
 En la 2da estría
104
ufc/ml
 En la 3ra estría
105
ufc/ml o más