Infección del torrente
sanguíneo asociado CVC

Contenidos
Epidemiología de ITS asociado a CVC
Complicaciones infecciosas asociadas
Estrategias de prevención de bacteriemias
1
2
3

Definición
• Son las infecciones que se producen en relación al uso
de dispositivos vasculares localizados en
compartimentos intravasculares centrales (grandes
venas). Los agentes involucrados pueden ser bacterias u
hongos, que pueden o no ser aislados en sangre
(bacteriemia o fungemia según agente).
Fuente: Otaíza, Minsal 2017

Epidemiología
• Las bacteriemias relacionadas a los DI son las principales
complicaciones de su uso.
• La incidencia varía de acuerdo a factores del huésped,
del catéter y de la manipulación.
• Incidencia de ITS /DI es de 4 a 5 eventos por 1000 días
de cateterización en Chile
• Mortalidad atribuible: 14-24%.
• Los costos asociados superan a otras infecciones
asociadas a la atención de salud.
Fuente: Otaíza, Minsal 2017

Prevalencia
Fuente: Otaíza, Minsal 2017

Prevalencia
Fuente: Otaíza, Minsal 2017

Agentes etiológicos
Fuente: Otaíza, Minsal 2017

Fuente: Otaíza, Minsal 2017
Prevalencia

Fuente: Otaíza, Minsal 2017
Prevalencia

Fuente: Otaíza, Minsal 2017

Prevalencia
Fuente: Otaíza, Minsal 2017

Clasificación de dispositivos invasivos

Clasificación de dispositivos invasivos
• Clasificación de CVC
A) Tunelizados- No tunelizados
B) Transitorios- Permanentes

Clasificación de dispositivos invasivos
• Dispositivo intravascular implantable de larga
duración RESERVORIO
• Dispositivo intravascular tunelizado de larga
duración
• Dispositivo intravascular central de inserción
periférica PICC

Complicaciones Infecciosas
Patogenia
Vías de contaminación
• Vía intraluminal
• Vía extraluminal

Complicaciones Infecciosas
Más frecuentes (piel del paciente y manos del
personal)
• Staphylococcus coagulasa negativa.
• Staphylococcus aureus (SAMS, SAMR).
• Candida spp.

Complicaciones Infecciosas
Menos frecuentes
• Bacilos gram negativos: Pseudomonas
aeruginosa, Acinetobacter spp,
Stenotrophomonas maltophilia, enterobacterias.
Otros: Corynebacterium spp, Bacillus
spp, etc.

Complicaciones Infecciosas
• Colonización
• Flebitis
• Infección local: bolsillo, sitio de inserción,
infección del túnel
• Bacteremia

Diagnóstico
El diagnóstico de la ITS asociada a CVC, que es la
infección relacionada a CVC más importante, se
realiza basado en criterios clínicos y
microbiológicos.
Criterios clínicos:
1) Bacteriemia o fungemia en paciente con CVC
2) Manifestaciones clínicas de infección: fiebre,
calosfríos, hipotensión.
3) Sin otra fuente aparente de infección
Fuente: MINSAL

Diagnóstico
Criterios microbiológicos:
Al menos 1 de los siguientes:
1) Cultivo positivo del extremo del catéter (≥ 15 ufc en
su extremo distal por el método semicuantitativo o ≥
100 ufc del cultivo cuantitativo) con identificación del
mismo microorganismo que en la sangre (igual especie y
antibiograma).
Método “No Conservador”, porque debe retirarse el CVC
Fuente: MINSAL

Diagnóstico
Criterios microbiológicos:
Al menos 1 de los siguientes:
2) Hemocultivos cuantitativos simultáneos a través
del catéter y por venopunción con una razón ≥ 3:1
(sangre por catéter vs sangre Periférica).
3) En sistemas de hemocultivos automatizados:
tiempo diferencial de al menos 2 horas entre el
hemocultivo central v/s el periférico.
Fuente: MINSAL

Diagnóstico: Técnica
Tiempo diferencial:
• Debe tomarse 1 hemocultivo transcatéter, y en el
mismo procedimiento tomar 2 hemocultivos periféricos,
todos en sus respectivos frascos automatizados. La
cantidad inoculada en cada frasco debe ser la misma,
pues influye en el tiempo de positivización. Todo el
procedimiento es con técnica aséptica.
Fuente: MINSAL

Diagnóstico: Técnica
Cultivo cuantitativo punta CVC
• En paciente que cumple con criterios clínicos y se
decide retirar el CVC, este procedimiento debe hacerse
con técnica aséptica y cortar 5 cm distales del dispositivo
y depositar en un frasco seco estéril, para ser enviado al
laboratorio de microbiología.
Fuente: Acuña M. Infecciones Asociadas a Catéter Venoso Central. MINSAL

Diagnóstico
Toma de muestras
Procesamiento de los hemocultivos
Fuente: MINSAL
Elementos básicos para la catalogación definitiva

Diagnóstico
No se debe retirar en forma inmediata y
sistemática todos los catéteres vasculares en
pacientes con sospecha de infección relacionada
Elementos básicos para la catalogación definitiva

Diagnóstico: Toma de Muestras
Fuente: Manual de toma y transporte de muestras microbiológicas, Hospital San Juan de
Dios (2014)

Fuente: Manual de toma y transporte de muestras microbiológicas, Hospital San Juan de
Dios (2014)
Diagnóstico: Toma de Muestras

Fuente: Manual de toma y transporte de muestras microbiológicas, Hospital San Juan de
Dios (2014)
Diagnóstico: Toma de Muestras

Factores de riesgo
A. Factores asociados con un mayor riesgo.
1. Hospitalización prolongada antes del cateterismo.
2. Duración prolongada del cateterismo
3. Colonización microbiana intensa en el sitio de
inserción.
4. Colonización microbiana intensa del centro del catéter.
5. Cateterismo yugular interno
6. Cateterismo femoral en adultos.
Fuente: Marschall, J., Mermel, L., Fakih, M., Hadaway, L., Kallen, A., O’Grady, N., . . . Yokoe, D. (2014).

Factores de riesgo
A. Factores asociados con un mayor riesgo.
7. Neutropenia
8. Premadurez (es decir, edad gestacional temprana)
9. Relación enfermera-paciente reducida en la UCI 26,27
10. Nutrición parenteral total
11. Cuidado deficiente del catéter (p. Ej., Manipulación
excesiva del catéter)
12. Transfusión de productos sanguíneos (en niños)
Fuente: Marschall, J., Mermel, L., Fakih, M., Hadaway, L., Kallen, A., O’Grady, N., . . . Yokoe, D. (2014).

Factores de riesgo
B. Factores asociados con la reducción del riesgo.
1. Sexo femenino
2. Administración de antibióticos.
3. Catéteres impregnados con minociclina-
rifampicina
Fuente: Marschall, J., Mermel, L., Fakih, M., Hadaway, L., Kallen, A., O’Grady, N., . . . Yokoe, D. (2014).

Estrategias para la Prevención de
Bacteremias asociadas a DI

Prácticas básicas para prevenir y
monitorear
Antes de la inserción
1. Proporcione un acceso fácil a una lista de indicaciones
basadas en evidencia para el uso de CVC para minimizar la
colocación innecesaria de CVC
2. Requerir educación del personal de atención médica
involucrado en la inserción, atención y mantenimiento de CVC
sobre la prevención
3. Bañe a los pacientes de la UCI mayores de 2 meses con
clorhexidina a diario
Fuente: Marschall, J., Mermel, L., Fakih, M., Hadaway, L., Kallen, A., O’Grady, N., . . . Yokoe, D. (2014).

Prácticas básicas para prevenir y
monitorear
En la inserción
1. Establecer un proceso para garantizar el cumplimiento de
las prácticas de prevención de infecciones en el momento
de la inserción del CVC en la UCI y en entornos no
pertenecientes a la UCI, como una lista de verificación.
2. Realizar la higiene de las manos antes de la inserción o
manipulación del catéter
3. Evitar usar la vena femoral para el acceso venoso central
en pacientes adultos obesos cuando el catéter se coloca
en condiciones planificadas y controladas
Fuente: Marschall, J., Mermel, L., Fakih, M., Hadaway, L., Kallen, A., O’Grady, N., . . . Yokoe, D. (2014).

Prácticas básicas para prevenir y
monitorear
En la inserción
4. Usar un carrito o kit de catéter con todo incluido
5. Utilizar ultrasonido para la inserción del catéter yugular
interno
6. Use las máximas precauciones de barrera estéril durante la
inserción de CVC
7. Use un antiséptico de clorhexidina alcohólica para la
preparación de la piel
Fuente: Marschall, J., Mermel, L., Fakih, M., Hadaway, L., Kallen, A., O’Grady, N., . . . Yokoe, D. (2014).

Prácticas básicas para prevenir y
monitorear
Después de la inserción
1. Asegure una proporción adecuada de enfermeras/os a
pacientes y limite el uso de enfermeras flotantes en las UCI
2. Desinfecte las tapas del catéter, los conectores sin aguja y los
puertos de inyección antes de acceder al catéter
3. Retire los catéteres no esenciales
4. Para CVC sin túneles en adultos y niños, cambie los apósitos
transparentes y realice el cuidado del sitio con un antiséptico a
base de clorhexidina cada 5–7 días o inmediatamente si el
apósito está sucio, suelto o húmedo; cambie los apósitos de
gasa cada 2 días o antes si el apósito está sucio, suelto o
húmedo
Fuente: Marschall, J., Mermel, L., Fakih, M., Hadaway, L., Kallen, A., O’Grady, N., . . . Yokoe, D. (2014).

Prácticas básicas para prevenir y
monitorear
Después de la inserción
5. Reemplazar las bajadas que no se usan para sangre,
productos sanguíneos o lípidos a intervalos no mayores a 96
horas
6. Use ungüentos antimicrobianos para los sitios de inserción
del catéter de hemodiálisis
7. Realizar vigilancia en entornos de UCI y no UCI
Fuente: Marschall, J., Mermel, L., Fakih, M., Hadaway, L., Kallen, A., O’Grady, N., . . . Yokoe, D. (2014).

Enfoques especiales de prevención
1. Use CVC impregnados con antisépticos o
antimicrobianos en pacientes adultos
2. Use apósitos que contengan clorhexidina para
los CVC en pacientes mayores de 2 meses
3. Use un concentrador / tapa de conector /
protector de puerto que contenga antiséptico
para cubrir los conectores
4. Use catéteres umbilicales impregnados con
zeolita de plata en recién nacidos prematuros (en
países donde está aprobado para su uso en
niños)
Fuente: Marschall, J., Mermel, L., Fakih, M., Hadaway, L., Kallen, A., O’Grady, N., . . . Yokoe, D. (2014).

Enfoques especiales de prevención
5. Utilice bloqueos antimicrobianos para CVC
6. Use factor activador de plasminógeno de
tejido recombinante una vez por semana
después de la hemodiálisis en pacientes
sometidos a hemodiálisis a través de un CVC
Fuente: Marschall, J., Mermel, L., Fakih, M., Hadaway, L., Kallen, A., O’Grady, N., . . . Yokoe, D. (2014).

Prácticas que no se deben realizar
1. No utilice la profilaxis antimicrobiana para la
inserción de catéteres a corto plazo o
tunelizados o mientras los catéteres estén in
situ
2. No reemplace rutinariamente los catéteres
venosos centrales o arteriales
Fuente: Marschall, J., Mermel, L., Fakih, M., Hadaway, L., Kallen, A., O’Grady, N., . . . Yokoe, D. (2014).

Referencias Bibliográficas
1. Otaíza F., Orsini M., Pohlenz M., Tarride T. (2017) Informe de Vigilancia de
Infecciones Asociadas a la Atención en Salud. Disponible en
https://www.minsal.cl/wp-content/uploads/2015/09/informe-vigilancia-
2017.pdf
2. Marschall, J., Mermel, L., Fakih, M., Hadaway, L., Kallen, A., O’Grady, N., . . .
Yokoe, D. (2014). Strategies to Prevent Central Line–Associated
Bloodstream Infections in Acute Care Hospitals: 2014 Update. Infection
Control and Hospital Epidemiology, 35(7), 753-771. doi:10.1086/676533
3. Manual de toma y transporte de muestras microbiológicas, Hospital San
Juan de Dios (2014). Disponible en
http://www.hsjd.cl/Intranet/Calidad/Servicios%20de%20Apoyo/APL-
1/1.2/Manual%20de%20Toma%20y%20transporte%20de%20muestras%20
microbiologicas_2.pdf

Referencias Bibliográficas
4. F. Chaves, J. Garnacho-Montero, J.L. del Pozo, E. Bouza, J.A. Capdevila, M. de
Cueto, M.Á. Domínguez, J. Esteban, N. Fernández-Hidalgo, M. Fernández
Sampedro, J. Fortún, M. Guembe, L. Lorente, J.R. Paño, P. Ramírez, M.
Salavert, M. Sánchez, J. Vallés (2017). Diagnosis and treatment of catheter-
related bloodstream infection: Clinical guidelines of the Spanish Society of
Infectious Diseases and Clinical Microbiology and (SEIMC) and the Spanish
Society of Spanish Society of Intensive and Critical Care Medicine and
Coronary Units (SEMICYUC). Med Intensiva. 2018;42:5-
3610.1016/j.medin.2017.09.012. Disponible en
https://www.medintensiva.org/es-diagnostico-tratamiento-bacteriemias-
asociadas-con-articulo-S0210569118300019

www.perfeccionachile.cl