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Ing´s. M. Ramirez A. y Kristel.
Equipo técnico - Micosaf
Pucallpa, 15 de julio del 2011
Introducción.
 La palabra micorriza, de origen griego, define la simbiosis entre un hongo
(mycos) y las raíces (rhizos) de una planta. Como en otras relaciones
simbióticas, ambos participantes obtienen beneficios.[1]
 En este caso la planta recibe del hongo principalmente nutrientes minerales y
agua,[2] y el hongo obtiene de la planta hidratos de carbono y vitaminas que él
por sí mismo es incapaz de sintetizar mientras que ella lo puede hacer gracias a
la fotosíntesis y otras reacciones internas.[3]
 Muchas plantas presentan micorrizas para aumentar la absorción de agua y
sales minerales del suelo. Las micorrizas son la asociación entre raíces de una
planta y el micelio de un hongo, de forma que toda la extensión del micelio
participa en la absorción de nutrientes para la planta.
 En la Naturaleza esta simbiosis se produce espontáneamente. Se estima que
entre el 90 y el 95% de las plantas superiores presentan micorrizas de forma
habitual.[4]
En las endomicorrizas, en
cambio, no hay manto externo
que pueda verse a simple vista.
Las hifas se introducen inicialmente
entre las células de la raíz, pero luego
penetran en el interior de éstas,
formando vesículas alimenticias y
arbúsculos. Por ello se las conoce
también como micorrizas VAM o
micorrizas vesículo arbusculares.
Los hongos pertenecen a la división
Glomeromycota y se dan en todo tipo de
plantas, aunque con predominio de
hierbas y gramíneas. Abundan en suelos
pobres como los de las praderas y
estepas, la alta montaña y las selvas
tropicales. En el bosque atlántico
aparecen junto a las ectomicorrizas.
Al germinar las semillas en sustratos micorrizados, se desencadena un proceso
simbiótico que comienza cuando las esporas son atraídas por las sustancias que
segregan las raicillas de la plántula.
La relación se establece de la siguiente manera:
 Las raicillas de la plántula segregan sustancias en su metabolismo, que son
atractivas para las micorrizas.
 Las esporas de las micorrizas maduran, se convierten en hifas e inician la
aproximación a las raíces.
 Las hifas forman una tupida red de tubos que envuelven a las raíces como un
guante.
 Las hifas invaden el interior de las raíces, bordean a las células que la forman.
 Las hifas forman una cabellera adicional de absorción, en torno a las raíces, de
varios kilómetros por hectárea.
 La redecilla, extrae el fósforo, el nitrógeno y otros minerales del suelo, y lo
transporta junto con el agua hacia la células de las raíces.
 En el interior de las células, se forman las estructuras arbusculares que
almacenan las substancias que han extraído las hifas del suelo.
 La planta absorbe estos nutrientes por medio de su sistema vascular de
conducción y lo distribuye por los tejidos de acuerdo a sus necesidades.
Estudios realizados.
 En relación a la densidad visual en las raíces, ésta no fue afectada por el
material genético de palma aceitera, mostrando valores bajos (ej. 1.01 %
en Guayas; 5.48% en Santo Domingo), versus el valor de 47,50%, que es
el porcentaje máximo “teórico” que se puede lograr. En cuanto a la taza
de colonización, las micorrizas no fueron afectadas por el material
genético de palma aceitera y tampoco por las zonas de cultivo. Todas las
zonas con excepción de El Guayas, mostraron valores superiores al 50%
de colonización, con la mayor tasa encontrándose en las muestras de
Santo Domingo con un valor promedio de 72,95%. Los valores
obtenidos son relativamente altos si consideramos el manejo
agronómico de la mayoría de las plantaciones muestreadas en las zonas
estudiadas, que incluye el uso de agroquímicos. Algunos autores
reportan que, la aplicación de estos químicos, tienen un efecto negativo
en la colonización micorrízica. Los resultados de la taza de
colonización demuestran que existe una alta dependencia de la
simbiosis entre la palma aceitera y las micorrizas (ANCUPA, .
Existen evidencias de que las micorrizas
juegan un rol importante en la absorción de
nutrientes en palma aceitera
En especial del fósforo (P). En
Malasia e Indonesia, se han
reportado incrementos positivos
en el rendimiento por
inoculación de micorrizas
arbusculares en turba (Corley y
Tinker, 2003). Blal et al. (1990)
reportaron que palmas aceiteras
propagadas vegetativamente
incrementaron el coeficiente de
utilización de fertilizante de 4 a 5
veces, después de la inoculación
micorrízica, en particular de la
roca fosfórica (ANCUPA, 2008).
Comportamiento de las asociaciones micorrizas en el gerplasma
de palma aceitera, (Lucrecia Maldonado, Rocio Morales, Gustavo Bernal, 2008)
Plántulas de palma de
aceite a los 180 dds
Respuesta de la Variedad Deli x Lame a la
Inoculación con inóculo.
Las plantas de los tratamientos con
inóculo se desarrollaron mejor que las
plantas no inoculadas. En el caso de la
variedad Deli x Lame, se observó una
mejor respuesta de la palma de aceite
hacia el final del experimento, que en las
épocas anteriormente evaluadas. Para las
variables peso seco radical y peso seco
parte aérea, se observa un aumento
considerable a los 240 días con respecto a
los 180 días. Ese aumento que se presenta
en la masa seca de la planta (parte aérea y
raíz) es el reflejo del efecto que tienen los
HMA sobre la planta, al absorber el
fósforo del suelo y hacerlo disponible para
la planta (Silva & Williams, 1992, citados
por Chacón & Guerra, 2000). A través del
experimento, el tratamiento
Convencional + inóculo fue el que se
comportó mejor o mostró los mejores
resultados en cuanto crecimiento de la
planta, lo que indica que la planta, fue
más eficiente, aprovechando los
nutrientes que le son facilitados por el
hongo como N, P, Ca, y Mg (Sanchez de
Prager, 1999), Silvia Barrera 2009.
Roca fosfórica de Carolina del Norte- No tratada
(Nelson Walter Osorio, Ph.D.)
Roca fosfórica de Carolina del Norte- tratada con
PSM (Nelson Walter Osorio, Ph.D.)
Diagrama de que muestra la solubilización microbiol de fosfatos
en la micorrizosfera y la captación micorrizal de P
H2PO4
-
PSM
Micorriza
•RP aplicado
•Ca-P Native
•Pi adsorbido
Micorrizosfera
Rizodeposición
de Carbon
Acid oxálico
Solución del suelo
Adsorción
de P
NH4
+
Disolución
Desorción
Inmovilización
Pi uptake
Minerales
del Suelo
Palma de la campaña 2008, Pampa
Hermosa.
Programa de fertilización de palma aceitera
en sus primeros 3 años de instalación.
Años de cultivo kg/planta kg/ha N K2O CaO MgO B Cl S/. x ha $/. x ha
1er año 2.03 289.58 33 17 27 39 13 1 20 293.15 98.37
2do año 2.85 407.55 53 21 43 46 15 1 33 452.45 151.83
3er año 3.68 525.53 66 27 54 62 21 2 41 578.72 194.20
8.55 1,222.65 151 65 125 147 49 3 94 1,324 444
P2O5
Cuadro de formulación establecida para la zona de Campo Verde y nueva
requena, Ucayali.
Aplicación de roca fosfórica y dolomita en
los platos con relación a la cobertura de
palma aceitera.
Historia de aplicación de fertilizantes y
abonos de origen mineral.
Fundo El Refugio Bosque secundario, sin quema.
1 2 3
Urea 0.50 0.80 1.20 2.50 357.50
Cloruro de potasio 0.50 0.80 1.20 2.50 357.50
Sulpomag - - 0.60 0.60 85.80
S. Fosfato triple - - 0.25 0.25 35.75
Dolomita 0.50 0.60 1.00 2.10 300.30
Foca Fosforica 0.50 0.60 1.00 2.10 300.30
Fertibagra 0.03 0.05 0.10 0.18 25.03
Compomaster Palma - - - - -
Humus de lombriz - - - - -
2.03 2.85 5.35 10.23 1,462.18
kg/ha
acumulado
kg/planta
Insumos/años Sumatoria
Fundo El Porvenir Purma, sin quema.
1 2 3
Urea 0.40 0.80 1.10 2.30 328.90
Cloruro de potasio 0.40 0.83 1.09 2.32 331.05
Sulpomag - 0.70 0.53 1.23 176.18
S. Fosfato triple - 0.19 - 0.19 27.17
Dolomita 0.50 - 1.10 1.60 228.80
Foca Fosforica 0.50 0.80 1.10 2.40 343.20
Fertibagra 0.03 0.10 0.16 0.28 40.18
Compomaster Palma - - 0.42 0.42 59.35
Humus de lombriz - - - - -
1.83 3.42 5.49 10.73 1,534.82
kg/ha
acumuladoInsumos/años
kg/planta
Sumatoria
Fundo Adonai Pastizal con torurco, sin quema
1 2 3
Urea 0.50 0.85 1.00 2.35 336.05
Cloruro de potasio 0.50 1.20 1.20 2.90 414.70
Sulpomag - 0.80 0.60 1.40 200.20
S. Fosfato triple - - - - -
Dolomita 0.50 1.00 1.00 2.50 357.50
Foca Fosforica 0.50 1.00 1.00 2.50 357.50
Fertibagra 0.03 0.12 0.15 0.30 42.19
Compomaster Palma - - - - -
Humus de lombriz - 3.00 - 3.00 429.00
2.03 7.97 4.95 14.95 2,137.14
kg/ha
acumuladoInsumos/años
kg/planta
Sumatoria
Aplicación de roca fosfórica en bandas
circulares de palma.
Muestreo en el plato a distancias de 50, 100, 150
y 200 cm al estipe.
Colecta de raíces de palma.
El muestreo en palmas de 3 años
de instalado a campo definitivo.
Se coge las raíces primerias,
secundaria de la palma.
METODOLOGÍA EN LABORATORIO
Selección de raíces finas Conservación de
raíces
KOH al 10%
Peróxido alcalino
(0,5% NH4OH, 0,5% H2O2 en
agua)
24 Horas Autoclave a 120 C x 1,01
kg/cm2 x 20 min.
Autoclave a 120 C x 1,01
kg/cm2 x 20 min.
HCl al 1% x 3
min.
Tinta pelican + vinagre casero
Vinagre casero
Baño maría x 15
min.
Procedencia
Distancia (m)
50 100 150 200
% * Int** % Int % Int % Int
Pampa 3 1 7 2 8 2 7 2
Adonai 11 2 21 2 15 2 5 2
Porvenir 13 2 16 2 9 2 10 2
Palma Agro 28 3 21 2 35 3 20 2
* Porcentaje de colonización, ** Intensidad
Clases Intensidad Porcentaje (%) Descripción
1
2
3
4
5
1
2
3
4
5
0-5
6-25
26-50
51-75
76-100
Escasas zonas colonizadas
Zonas pequeñas
Zonas más extensas
Sólidamente colonizada
Sin zonas no colonizadas
Cuadro 1. Método no sistemático de estimación de colonización HMA en raíces
HIFAS
ARBÚSCULOS TIPO PARIS
VESÍCULAS
Tareas de investigación científica.
 El bajo nivel visual de micorrizas, desarrollar
inoculante que permita mejorar el crecimiento de la
palma aceitera a nivel de vivero, y como consecuencia
su nivel de producción en el futuro.

 Evaluar la eficiencia en el control de patógenos del
suelo de las micorrizas arbusculares nativas y
comerciales.

 Evaluar la eficiencia de la adsorción de fosforo
existente en el suelo en condiciones propias .
Tareas de servicio y comerciales.
 Brindar el servicios de muestreo, análisis de suelo y
resultados de la existencia de micorrizas en laboratorio
(tasa de colonias ó poblaciones/mg de suelo) con
relación a las condiciones edáficas.
 Recomendación de roca fosfórica y dolomita como
patrón correctivo de los suelos de trópico húmedo y su
eficiente absorción por micorrizas y otros
microorganismos.
Agradecimiento al Equipo profesional del laboratorio de
suelo – microorganismos – planta (Universidad Pontifica
Javeriana - Colombia)
• Vierheilig, H., Couhgland A., Wyss, U. and Piché Y. 1998. Tinción y vinagre una
técnica simple de tinción de hongos micorrizógenos arbusculares.
• MYCORRHIZAL ASSOCIATIONS: The Web Resource
http://mycorrhizas.info/resource.html
• http://micorrizasylombrihumus.com
• http://es.wikipedia.org/wiki/Micorriza
•http://www.diccionariosdigitales.net/glosarios%20y%20vocabularios/bota
nica-9-micorrizas.htm
• http://www.ancupa.com/index.shtml?apc=M---Recursos62xx51xx-xx1-
&x=102
• http://www.engormix.com/MA-agricultura/cultivos-
tropicales/articulos/evaluacion-efecto-simbiosis-micorrizica-t2605/078-
p0.htm
• …
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Micorrizas nativas presentes en las raíces de palma

  • 1. Ing´s. M. Ramirez A. y Kristel. Equipo técnico - Micosaf Pucallpa, 15 de julio del 2011
  • 2. Introducción.  La palabra micorriza, de origen griego, define la simbiosis entre un hongo (mycos) y las raíces (rhizos) de una planta. Como en otras relaciones simbióticas, ambos participantes obtienen beneficios.[1]  En este caso la planta recibe del hongo principalmente nutrientes minerales y agua,[2] y el hongo obtiene de la planta hidratos de carbono y vitaminas que él por sí mismo es incapaz de sintetizar mientras que ella lo puede hacer gracias a la fotosíntesis y otras reacciones internas.[3]  Muchas plantas presentan micorrizas para aumentar la absorción de agua y sales minerales del suelo. Las micorrizas son la asociación entre raíces de una planta y el micelio de un hongo, de forma que toda la extensión del micelio participa en la absorción de nutrientes para la planta.  En la Naturaleza esta simbiosis se produce espontáneamente. Se estima que entre el 90 y el 95% de las plantas superiores presentan micorrizas de forma habitual.[4]
  • 3. En las endomicorrizas, en cambio, no hay manto externo que pueda verse a simple vista. Las hifas se introducen inicialmente entre las células de la raíz, pero luego penetran en el interior de éstas, formando vesículas alimenticias y arbúsculos. Por ello se las conoce también como micorrizas VAM o micorrizas vesículo arbusculares. Los hongos pertenecen a la división Glomeromycota y se dan en todo tipo de plantas, aunque con predominio de hierbas y gramíneas. Abundan en suelos pobres como los de las praderas y estepas, la alta montaña y las selvas tropicales. En el bosque atlántico aparecen junto a las ectomicorrizas.
  • 4. Al germinar las semillas en sustratos micorrizados, se desencadena un proceso simbiótico que comienza cuando las esporas son atraídas por las sustancias que segregan las raicillas de la plántula. La relación se establece de la siguiente manera:  Las raicillas de la plántula segregan sustancias en su metabolismo, que son atractivas para las micorrizas.  Las esporas de las micorrizas maduran, se convierten en hifas e inician la aproximación a las raíces.  Las hifas forman una tupida red de tubos que envuelven a las raíces como un guante.  Las hifas invaden el interior de las raíces, bordean a las células que la forman.  Las hifas forman una cabellera adicional de absorción, en torno a las raíces, de varios kilómetros por hectárea.  La redecilla, extrae el fósforo, el nitrógeno y otros minerales del suelo, y lo transporta junto con el agua hacia la células de las raíces.  En el interior de las células, se forman las estructuras arbusculares que almacenan las substancias que han extraído las hifas del suelo.  La planta absorbe estos nutrientes por medio de su sistema vascular de conducción y lo distribuye por los tejidos de acuerdo a sus necesidades.
  • 5. Estudios realizados.  En relación a la densidad visual en las raíces, ésta no fue afectada por el material genético de palma aceitera, mostrando valores bajos (ej. 1.01 % en Guayas; 5.48% en Santo Domingo), versus el valor de 47,50%, que es el porcentaje máximo “teórico” que se puede lograr. En cuanto a la taza de colonización, las micorrizas no fueron afectadas por el material genético de palma aceitera y tampoco por las zonas de cultivo. Todas las zonas con excepción de El Guayas, mostraron valores superiores al 50% de colonización, con la mayor tasa encontrándose en las muestras de Santo Domingo con un valor promedio de 72,95%. Los valores obtenidos son relativamente altos si consideramos el manejo agronómico de la mayoría de las plantaciones muestreadas en las zonas estudiadas, que incluye el uso de agroquímicos. Algunos autores reportan que, la aplicación de estos químicos, tienen un efecto negativo en la colonización micorrízica. Los resultados de la taza de colonización demuestran que existe una alta dependencia de la simbiosis entre la palma aceitera y las micorrizas (ANCUPA, .
  • 6. Existen evidencias de que las micorrizas juegan un rol importante en la absorción de nutrientes en palma aceitera En especial del fósforo (P). En Malasia e Indonesia, se han reportado incrementos positivos en el rendimiento por inoculación de micorrizas arbusculares en turba (Corley y Tinker, 2003). Blal et al. (1990) reportaron que palmas aceiteras propagadas vegetativamente incrementaron el coeficiente de utilización de fertilizante de 4 a 5 veces, después de la inoculación micorrízica, en particular de la roca fosfórica (ANCUPA, 2008).
  • 7. Comportamiento de las asociaciones micorrizas en el gerplasma de palma aceitera, (Lucrecia Maldonado, Rocio Morales, Gustavo Bernal, 2008)
  • 8. Plántulas de palma de aceite a los 180 dds Respuesta de la Variedad Deli x Lame a la Inoculación con inóculo. Las plantas de los tratamientos con inóculo se desarrollaron mejor que las plantas no inoculadas. En el caso de la variedad Deli x Lame, se observó una mejor respuesta de la palma de aceite hacia el final del experimento, que en las épocas anteriormente evaluadas. Para las variables peso seco radical y peso seco parte aérea, se observa un aumento considerable a los 240 días con respecto a los 180 días. Ese aumento que se presenta en la masa seca de la planta (parte aérea y raíz) es el reflejo del efecto que tienen los HMA sobre la planta, al absorber el fósforo del suelo y hacerlo disponible para la planta (Silva & Williams, 1992, citados por Chacón & Guerra, 2000). A través del experimento, el tratamiento Convencional + inóculo fue el que se comportó mejor o mostró los mejores resultados en cuanto crecimiento de la planta, lo que indica que la planta, fue más eficiente, aprovechando los nutrientes que le son facilitados por el hongo como N, P, Ca, y Mg (Sanchez de Prager, 1999), Silvia Barrera 2009.
  • 9. Roca fosfórica de Carolina del Norte- No tratada (Nelson Walter Osorio, Ph.D.)
  • 10. Roca fosfórica de Carolina del Norte- tratada con PSM (Nelson Walter Osorio, Ph.D.)
  • 11. Diagrama de que muestra la solubilización microbiol de fosfatos en la micorrizosfera y la captación micorrizal de P H2PO4 - PSM Micorriza •RP aplicado •Ca-P Native •Pi adsorbido Micorrizosfera Rizodeposición de Carbon Acid oxálico Solución del suelo Adsorción de P NH4 + Disolución Desorción Inmovilización Pi uptake Minerales del Suelo
  • 12. Palma de la campaña 2008, Pampa Hermosa.
  • 13. Programa de fertilización de palma aceitera en sus primeros 3 años de instalación. Años de cultivo kg/planta kg/ha N K2O CaO MgO B Cl S/. x ha $/. x ha 1er año 2.03 289.58 33 17 27 39 13 1 20 293.15 98.37 2do año 2.85 407.55 53 21 43 46 15 1 33 452.45 151.83 3er año 3.68 525.53 66 27 54 62 21 2 41 578.72 194.20 8.55 1,222.65 151 65 125 147 49 3 94 1,324 444 P2O5 Cuadro de formulación establecida para la zona de Campo Verde y nueva requena, Ucayali.
  • 14. Aplicación de roca fosfórica y dolomita en los platos con relación a la cobertura de palma aceitera.
  • 15. Historia de aplicación de fertilizantes y abonos de origen mineral. Fundo El Refugio Bosque secundario, sin quema. 1 2 3 Urea 0.50 0.80 1.20 2.50 357.50 Cloruro de potasio 0.50 0.80 1.20 2.50 357.50 Sulpomag - - 0.60 0.60 85.80 S. Fosfato triple - - 0.25 0.25 35.75 Dolomita 0.50 0.60 1.00 2.10 300.30 Foca Fosforica 0.50 0.60 1.00 2.10 300.30 Fertibagra 0.03 0.05 0.10 0.18 25.03 Compomaster Palma - - - - - Humus de lombriz - - - - - 2.03 2.85 5.35 10.23 1,462.18 kg/ha acumulado kg/planta Insumos/años Sumatoria Fundo El Porvenir Purma, sin quema. 1 2 3 Urea 0.40 0.80 1.10 2.30 328.90 Cloruro de potasio 0.40 0.83 1.09 2.32 331.05 Sulpomag - 0.70 0.53 1.23 176.18 S. Fosfato triple - 0.19 - 0.19 27.17 Dolomita 0.50 - 1.10 1.60 228.80 Foca Fosforica 0.50 0.80 1.10 2.40 343.20 Fertibagra 0.03 0.10 0.16 0.28 40.18 Compomaster Palma - - 0.42 0.42 59.35 Humus de lombriz - - - - - 1.83 3.42 5.49 10.73 1,534.82 kg/ha acumuladoInsumos/años kg/planta Sumatoria Fundo Adonai Pastizal con torurco, sin quema 1 2 3 Urea 0.50 0.85 1.00 2.35 336.05 Cloruro de potasio 0.50 1.20 1.20 2.90 414.70 Sulpomag - 0.80 0.60 1.40 200.20 S. Fosfato triple - - - - - Dolomita 0.50 1.00 1.00 2.50 357.50 Foca Fosforica 0.50 1.00 1.00 2.50 357.50 Fertibagra 0.03 0.12 0.15 0.30 42.19 Compomaster Palma - - - - - Humus de lombriz - 3.00 - 3.00 429.00 2.03 7.97 4.95 14.95 2,137.14 kg/ha acumuladoInsumos/años kg/planta Sumatoria
  • 16. Aplicación de roca fosfórica en bandas circulares de palma.
  • 17. Muestreo en el plato a distancias de 50, 100, 150 y 200 cm al estipe.
  • 18. Colecta de raíces de palma.
  • 19. El muestreo en palmas de 3 años de instalado a campo definitivo.
  • 20. Se coge las raíces primerias, secundaria de la palma.
  • 21. METODOLOGÍA EN LABORATORIO Selección de raíces finas Conservación de raíces KOH al 10% Peróxido alcalino (0,5% NH4OH, 0,5% H2O2 en agua) 24 Horas Autoclave a 120 C x 1,01 kg/cm2 x 20 min. Autoclave a 120 C x 1,01 kg/cm2 x 20 min.
  • 22. HCl al 1% x 3 min. Tinta pelican + vinagre casero Vinagre casero Baño maría x 15 min.
  • 23.
  • 24. Procedencia Distancia (m) 50 100 150 200 % * Int** % Int % Int % Int Pampa 3 1 7 2 8 2 7 2 Adonai 11 2 21 2 15 2 5 2 Porvenir 13 2 16 2 9 2 10 2 Palma Agro 28 3 21 2 35 3 20 2 * Porcentaje de colonización, ** Intensidad Clases Intensidad Porcentaje (%) Descripción 1 2 3 4 5 1 2 3 4 5 0-5 6-25 26-50 51-75 76-100 Escasas zonas colonizadas Zonas pequeñas Zonas más extensas Sólidamente colonizada Sin zonas no colonizadas Cuadro 1. Método no sistemático de estimación de colonización HMA en raíces
  • 25. HIFAS
  • 28. Tareas de investigación científica.  El bajo nivel visual de micorrizas, desarrollar inoculante que permita mejorar el crecimiento de la palma aceitera a nivel de vivero, y como consecuencia su nivel de producción en el futuro.   Evaluar la eficiencia en el control de patógenos del suelo de las micorrizas arbusculares nativas y comerciales.   Evaluar la eficiencia de la adsorción de fosforo existente en el suelo en condiciones propias .
  • 29. Tareas de servicio y comerciales.  Brindar el servicios de muestreo, análisis de suelo y resultados de la existencia de micorrizas en laboratorio (tasa de colonias ó poblaciones/mg de suelo) con relación a las condiciones edáficas.  Recomendación de roca fosfórica y dolomita como patrón correctivo de los suelos de trópico húmedo y su eficiente absorción por micorrizas y otros microorganismos.
  • 30. Agradecimiento al Equipo profesional del laboratorio de suelo – microorganismos – planta (Universidad Pontifica Javeriana - Colombia)
  • 31. • Vierheilig, H., Couhgland A., Wyss, U. and Piché Y. 1998. Tinción y vinagre una técnica simple de tinción de hongos micorrizógenos arbusculares. • MYCORRHIZAL ASSOCIATIONS: The Web Resource http://mycorrhizas.info/resource.html • http://micorrizasylombrihumus.com • http://es.wikipedia.org/wiki/Micorriza •http://www.diccionariosdigitales.net/glosarios%20y%20vocabularios/bota nica-9-micorrizas.htm • http://www.ancupa.com/index.shtml?apc=M---Recursos62xx51xx-xx1- &x=102 • http://www.engormix.com/MA-agricultura/cultivos- tropicales/articulos/evaluacion-efecto-simbiosis-micorrizica-t2605/078- p0.htm • … REFERENCIA BIBLIOGRÁFICA