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Méthodes pratiques de
prélèvements de sang (1)
Par : S / Abdessemed
Salle de
prélèvement
Elle doit être
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prélèvement
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immédiatement la plaie à l’eau de javel 12°
chlorométrique dilué au 1/10 ou soluté de
Dakin ou à défaut à l’alcool à 70° ou à la
polyvidone iodée en solution dermique en
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envisager un éventuel traitement
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souillée.
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conteneur prévu pour cet usage
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recommandé lors du prélèvement car en
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patient.
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fréquente possible
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sang.
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ou double qui supprime tout contact
avec l’aiguille souillée.
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La centrifugation
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Dosage de l'Albuminémie
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Méthodes pratiques de prélèvements de sang (1

  • 1. Méthodes pratiques de prélèvements de sang (1) Par : S / Abdessemed
  • 2. Salle de prélèvement Elle doit être Claire, propre et aérée. Température de 20-22 °C quelque soit la saison
  • 3. Confort du patient • Porte manteau et chaise. • Siège de prélèvement confortable avec accoudoir amovible
  • 4. Confort de travail du préleveur • Eclairage adéquat • Lavabo • distributeur de savon liquide, • essuie mains, serviettes à usage unique • Table de travail dégagée avec portoirs • éléments de rangements accessibles
  • 5. Matériel de base dans la salle de prélèvement Aiguilles de prélèvements
  • 6. Matériel de base dans la salle de prélèvement Garrots tubes Gants
  • 7. Antiseptiques  Alcool modifié 70% vol.  Alcool iodé à 1%.  Bétadine.  Antiseptique sans alcool pour l’alcoolémie.  Flacon d’éther.  Solution hydro-alcoolique.
  • 8. Coton. Compresses stériles. Pansements adhésifs hypoallergéniques.  Portoirs Conteneur pour objets piquant, tranchant ou coupant incinérables
  • 9. Poubelle avec couvercles en plastique et de couleur jaune portant le sigle du risque biologiques pour recueillis les déchets infectieux non coupants et non tranchant.
  • 10. Choix des tubes de prélèvement Analyses Couleur du bouchon Anticoagulant Biochimie Vert Héparine de sodium ou de lithium Glycémie Gris EDTA + fluorure de sodium Hématologie Violet EDTA Vitesse de sédimentation Noir Citrate de sodium Hémostase Bleu Citrate de sodium Sérologie, hormonologie, pharmacologie, toxicologie Rouge Absence d’anticoagulant
  • 11. Tubes avec gel séparateur de sérum • Ces tubes contiennent un gel semi-rigide de polymère de silicone ou de polyester qui, après coagulation du sérum et centrifugation, se place à l’interface sérum/caillot car de densité intermédiaire. Ainsi, après centrifugation, les hématies sont sous le gel en culot et le sérum surnage
  • 12. Les avantages • Ils permettent une séparation efficace du culot globulaire du sérum. • Ils améliorent la conservation du sérum. • Ils permettent de recueillir une plus grande quantité de sérum. • Ils permettent un transfert aisé du sérum sans transvasement de globules rouges.
  • 13. Les inconvénients • Ils coûtent cher. • Ils peuvent présenter un danger pour certains automates travaillant en tube primaire qui peuvent ne pas détecter le gel et l’aspirer à la place du sérum d’où un risque de panne
  • 14. Ordre de prélèvement conseillé • Dans le cas de prélèvements multiples, il est conseillé de respecter l’ordre suivant :  Tube sans anticoagulant dit, tube sec.  Tube avec citrate pour l’étude de la coagulation.  Tube avec héparine ou tube avec fluorure pour les examens de biochimie.  Tube avec EDTA pour l’hématologie.  Tube avec citrate pour l’étude de la vitesse de sédimentation
  • 15. Principaux facteurs pré-analytique perturbant les résultats d’analyse • Physiologie du patient. • Thérapeutique suivie par le patient. • L’heure de prélèvement. • La position du patient. • Le temps de pose du garrot trop long
  • 16. • Le non respect du ratio sang/anticoagulant. • Le prélèvement sur un anticoagulant inadéquat. • L’ordre des prélèvements. • La mauvaise homogénéisation de l’échantillon. • Un matériel de prélèvement inadéquat. • Un délai de transmission prolongé des prélèvements
  • 17. Incidents/accidents au cours d’un prélèvement sanguin  Incidents :  Malaise du patient : • L’allonger en abaissant le dossier et relever les jambes. Aérer la pièce et éventuellement lui faire boire un peu d’eau sucrée.  Hématome : • Appliquer une compresse alcoolisée ou de la pommade type Hémoclar
  • 18. En cas d’AES Par piqûre : Nettoyer immédiatement à l’eau courante et au savon antiseptique puis, désinfecter immédiatement la plaie à l’eau de javel 12° chlorométrique dilué au 1/10 ou soluté de Dakin ou à défaut à l’alcool à 70° ou à la polyvidone iodée en solution dermique en assurant un temps de contact d’au moins 5 minutes.
  • 19. Prendre un avis médical immédiat pour envisager un éventuel traitement préventif en fonction du degré de risque
  • 20. Par projection sur les muqueuses : Rincer abondamment, de préférence au sérum physiologique ou sinon à l’eau pendant au moins 5 minutes. Prendre un avis médical immédiat pour envisager un éventuel traitement préventif en fonction du degré de risque.
  • 21. Application des règles universelles de sécurité • Tout prélèvement doit être considéré comme potentiellement contaminant. • Ne jamais recapuchonner une aiguille souillée. • Il faut toujours la jeter dans le conteneur prévu pour cet usage
  • 22. • Le port de gants est fortement recommandé lors du prélèvement car en cas de piqûre accidentelle, il diminue considérablement le risque de contamination. Ils doivent être changés entre chaque patient. • La désinfection des mains doit être la plus fréquente possible
  • 23. • Le système de prélèvement sous vide diminue le risque de contact avec le sang. • Il existe des corps de protection simple ou double qui supprime tout contact avec l’aiguille souillée. • Préférer les tubes en plastique non cassables
  • 24. • Pour le transport des tubes utiliser des sachets à double poche l’une pour les tubes, l’autre pour la fiche d’enregistrement ou de renseignement. Tout sachet contenant des tubes brisés ou débouchés doit être éliminé
  • 25. Causes de refus d’un prélèvement  Problème d’identification du prélèvement.  Tubes incorrectement remplis.  Tubes non conformes par rapport à l’anticoagulant.  Délai et conditions de transport incorrects.  Prélèvement coagulé.  Non-respect des règles élémentaires d’hygiène.