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DR. BENLARIBI IMANE HALIMA
Pharmacienne praticienne spécialiste
Assistante en parasitologie _ mycologie médicale
Année: 2018/2019
INTRODUCTION
Le diagnostic mycologique:
Identification
Culture
Examen direct
Prélèvement
Collaboration
clinicien/ biologiste
FICHE DE RENSEIGNEMENT
• Identité du patient;
• Adresse;
• Profession;
• Notion de voyage;
• Contact avec les animaux;
• Signes cliniques et paracliniques;
• Signes radiologiques;
• Antécédents médicaux;
• Prise de traitement (antifongique ou autres).
PRELEVEMENT
La qualité du prélèvement détermine
la qualité du diagnostic.
PRELEVEMENT
• Les modalités du prélèvement dépendent de
la localisation des lésions
• Les prélèvements:
– Effectués au labo
– Acheminés rapidement au labo
– Conservés à +4°C.
PRELEVEMENT
• Conditions:
– Avant toute toilette
– Avant traitement spécifique ou après une fenêtre
thérapeutique:
• 15 jours (ATF local)
• 2-3 mois (ATF systémique, vernis ou une solution
filmogène).
Matériel
Modalités du prélèvement
• Lésions squameuses : grattage en périphérie des
lésions.
Diagnostic mycologique  dr benlaribi imane halima
Modalités du prélèvement
• Lésions squameuses : grattage en périphérie des
lésions.
• Lésions suintantes/ Plaies: écouvillonner les lésions.
Diagnostic mycologique  dr benlaribi imane halima
Modalités du prélèvement
• Lésions squameuses : grattage en périphérie des
lésions.
• Plaies: écouvillonner les lésions.
• Nodules: ponctionner avec une aiguille stérile, ou faire
une biopsie
• Pityriasis versicolor: scotch-test cutané
Diagnostic mycologique  dr benlaribi imane halima
Modalités du prélèvement
• Lampe de Wood
•Verte: une teigne microsporique,
•Jaune-vert: une teigne favique
•Absence: teigne trichophytique, teigne
inflammatoire
Modalités du prélèvement
• Lampe de Wood
• Arracher avec une pince à épiler les cheveux fluorescents
Diagnostic mycologique  dr benlaribi imane halima
Modalités du prélèvement
• Lampe de Wood
• Arracher avec une pince à épiler les cheveux fluorescents
• Ou prélever les cheveux cassés à la loupe
• Prélever les squames et les croûtes en raclant à la curette.
• Lésion inflammatoire/suppurée: prélever le pus par
écouvillon
Périonyxis
Récolter le pus avec un
écouvillon stérile
Leuconychie
superficielle
Gratter à la surface
blanche
Onyxis
Couper la partie atteinte
de l’ongle
Gratter le matériel friable à
l’interface saine
Modalités du prélèvement
Modalités du prélèvement
• Bouche: écouvillon, en grattant la zone atteinte.
Diagnostic mycologique  dr benlaribi imane halima
Diagnostic mycologique  dr benlaribi imane halima
Modalités du prélèvement
• Bouche: écouvillon, en grattant la zone atteinte.
• Anus: racler les squames en périphérie.
• Cavité vaginale: écouvillonnage sous spéculum
• Oreille: bouchon noirâtre ,le prélever à la pince.
Modalités du prélèvement
Les
prélèvements
réalisés
LBA
Crachats
Aspiration
bronchiqueExpectoration
induite
Biopsie
pulmonaire
Modalités du prélèvement
• Désinfection soigneuse des parties génito-
urinaires
• Urines du milieu du jet
• Récolte dans un récipient stérile
Modalités du prélèvement
• Récolter les selles dans des boites stériles à
fermeture hermétique
•Écouvillonnage rectal : nourrisson
Modalités du prélèvement
• Asepsie rigoureuse
• À l’aide d’une aiguille, la ponction se fait entre
les vertèbres L4-L5 ou L3-L4
• La récolte se fait dans un tube stérile
Diagnostic mycologique  dr benlaribi imane halima
Modalités du prélèvement
• 5-10 ml sur anticoagulant
•Directement sur milieu de culture
•Un tube sec sans anticoagulant: sérologie.
sang
hémoculture sérum
Sérologie
antigénémie
Tube
sec
Sur
anticoagulant
5-10ml
• Fongémie
• Formes disséminées
Modalités du prélèvement
Diviser en 2 parties:
• Culture: dans l’eau physiologique
• Examen anatomopathologique: fixation dans
du liquide de Bouin ou du formol.
Prélèvement et conditionnement
Localisation Prélèvement Conditionnement Délai d’acheminement Conservation
Superficielle
 Peau (squame)
 Phanères : cheveux,
poils et ongles
Grattage (curette ou
vaccinostyle)
Pince à épiler (cheveux
parasités)
Ciseaux
Boites stériles 1 à 3 jours +4°C
Sous cutanée (nodules) Ecouvillonnage
Biopsie
Flacons stériles 24 heures +4°C
Broncho-pulmonaire Lavage broncho-alvéolaire
(LBA)
Aspiration
Crachats
Flacons stériles 24 heures +4°C
Pleurale
Articulaire
Péritonéale
Liquide de ponction
Liquide de dialyse, drains
Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
Cérébrale Ponction lombaire (LCR) Flacons stériles de 1ml 2 heures Traiter immédiatement
Septicémie Sang
Cathéters centraux
Hémoculture fongique
Flacons stériles
24 heures Température ambiante
Tissus profonds Biopsie Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
Prélèvement et conditionnement
Localisation Prélèvement Conditionnement Délai d’acheminement Conservation
Superficielle
 Peau (squame)
 Phanères : cheveux,
poils et ongles
Grattage (curette ou
vaccinostyle)
Pince à épiler (cheveux
parasités)
Ciseaux
Boites stériles 1 à 3 jours +4°C
Sous cutanée (nodules) Ecouvillonnage
Biopsie
Flacons stériles 24 heures +4°C
Broncho-pulmonaire Lavage broncho-alvéolaire
(LBA)
Aspiration
Crachats
Flacons stériles 24 heures +4°C
Pleurale
Articulaire
Péritonéale
Liquide de ponction
Liquide de dialyse, drains
Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
Cérébrale Ponction lombaire (LCR) Flacons stériles de 1ml 2 heures Traiter immédiatement
Septicémie Sang
Cathéters centraux
Hémoculture fongique
Flacons stériles
24 heures Température ambiante
Tissus profonds Biopsie Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
Prélèvement et conditionnement
Localisation Prélèvement Conditionnement Délai d’acheminement Conservation
Superficielle
 Peau (squame)
 Phanères : cheveux,
poils et ongles
Grattage (curette ou
vaccinostyle)
Pince à épiler (cheveux
parasités)
Ciseaux
Boites stériles 1 à 3 jours +4°C
Sous cutanée (nodules) Ecouvillonnage
Biopsie
Flacons stériles 24 heures +4°C
Broncho-pulmonaire Lavage broncho-alvéolaire
(LBA)
Aspiration
Crachats
Flacons stériles 24 heures +4°C
Pleurale
Articulaire
Péritonéale
Liquide de ponction
Liquide de dialyse, drains
Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
Cérébrale Ponction lombaire (LCR) Flacons stériles de 1ml 2 heures Traiter immédiatement
Septicémie Sang
Cathéters centraux
Hémoculture fongique
Flacons stériles
24 heures Température ambiante
Tissus profonds Biopsie Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
Prélèvement et conditionnement
Localisation Prélèvement Conditionnement Délai d’acheminement Conservation
Superficielle
 Peau (squame)
 Phanères : cheveux,
poils et ongles
Grattage (curette ou
vaccinostyle)
Pince à épiler (cheveux
parasités)
Ciseaux
Boites stériles 1 à 3 jours +4°C
Sous cutanée (nodules) Ecouvillonnage
Biopsie
Flacons stériles 24 heures +4°C
Broncho-pulmonaire Lavage broncho-alvéolaire
(LBA)
Aspiration
Crachats
Flacons stériles 24 heures +4°C
Pleurale
Articulaire
Péritonéale
Liquide de ponction
Liquide de dialyse, drains
Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
Cérébrale Ponction lombaire (LCR) Flacons stériles de 1ml 2 heures Traiter immédiatement
Septicémie Sang
Cathéters centraux
Hémoculture fongique
Flacons stériles
24 heures Température ambiante
Tissus profonds Biopsie Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
Prélèvement et conditionnement
Localisation Prélèvement Conditionnement Délai d’acheminement Conservation
Superficielle
 Peau (squame)
 Phanères : cheveux,
poils et ongles
Grattage (curette ou
vaccinostyle)
Pince à épiler (cheveux
parasités)
Ciseaux
Boites stériles 1 à 3 jours +4°C
Sous cutanée (nodules) Ecouvillonnage
Biopsie
Flacons stériles 24 heures +4°C
Broncho-pulmonaire Lavage broncho-alvéolaire
(LBA)
Aspiration
Crachats
Flacons stériles 24 heures +4°C
Pleurale
Articulaire
Péritonéale
Liquide de ponction
Liquide de dialyse, drains
Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
Cérébrale Ponction lombaire (LCR) Flacons stériles de 1ml 2 heures Traiter immédiatement
Septicémie Sang
Cathéters centraux
Hémoculture fongique
Flacons stériles
24 heures Température ambiante
Tissus profonds Biopsie Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
Prélèvement et conditionnement
Localisation Prélèvement Conditionnement Délai d’acheminement Conservation
Superficielle
 Peau (squame)
 Phanères : cheveux,
poils et ongles
Grattage (curette ou
vaccinostyle)
Pince à épiler (cheveux
parasités)
Ciseaux
Boites stériles 1 à 3 jours +4°C
Sous cutanée (nodules) Ecouvillonnage
Biopsie
Flacons stériles 24 heures +4°C
Broncho-pulmonaire Lavage broncho-alvéolaire
(LBA)
Aspiration
Crachats
Flacons stériles 24 heures +4°C
Pleurale
Articulaire
Péritonéale
Liquide de ponction
Liquide de dialyse, drains
Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
Cérébrale Ponction lombaire (LCR) Flacons stériles de 1ml 2 heures Traiter immédiatement
Septicémie Sang
Cathéters centraux
Hémoculture fongique
Flacons stériles
24 heures Température ambiante
Tissus profonds Biopsie Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
Prélèvement et conditionnement
Localisation Prélèvement Conditionnement Délai d’acheminement Conservation
Superficielle
 Peau (squame)
 Phanères : cheveux,
poils et ongles
Grattage (curette ou
vaccinostyle)
Pince à épiler (cheveux
parasités)
Ciseaux
Boites stériles 1 à 3 jours +4°C
Sous cutanée (nodules) Ecouvillonnage
Biopsie
Flacons stériles 24 heures +4°C
Broncho-pulmonaire Lavage broncho-alvéolaire
(LBA)
Aspiration
Crachats
Flacons stériles 24 heures +4°C
Pleurale
Articulaire
Péritonéale
Liquide de ponction
Liquide de dialyse, drains
Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
Cérébrale Ponction lombaire (LCR) Flacons stériles de 1ml 2 heures Traiter immédiatement
Septicémie Sang
Cathéters centraux
Hémoculture fongique
Flacons stériles
24 heures Température ambiante
Tissus profonds Biopsie Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
Question N°1
Quelles sont les étapes du diagnostic
mycologique?
Question N°2
Quelles sont les conditions de prélèvement
mycologique?
Question N° 3
Quelles sont les modalités de prélèvement des
lésions squameuses?
Question N° 4
Quelles sont les modalités de prélèvement de
Pityriasis versicolor?
Question N° 5
Quelles sont les modalités de prélèvement des
teignes?
Question N° 6
Quelles sont les modalités de prélèvement
d’onyxis?
Question N° 7
Quelles sont les modalités de prélèvement de
périonyxis?
Question N° 8
Quelles sont les modalités de prélèvement de
muguet buccal?
EXAMEN DIRECT
Indispensable, ED+:
Oriente le
diagnostic
Suspecter ou
confirme la
pathogénicité
Apprécier la
présence et
l’abondance
Débuter un
traitement
antifongique
EXAMEN DIRECT
Technique
Objectif X40
EXAMEN DIRECT
Liquide de montage
Liquide de montage
Eau phy:
muqueuses,
par
l’écouvillon,
selles
Eclaircissant:
•Lactophénol :
cheveu,
crachat, pus…
•Potasse à
30% : squames,
ongles
Lugol 2% : tous
les
prélèvements,
levures et
filaments
mycéliens
brun.
Encre de chine
diluée au
1/5e :
indispensable
et obligatoire
pour LCR.
capsule des
Cryptocoques
Noir
chlorazol :
éléments
fongiques en
noir
Bleu
lactophénol
(bleu coton) :
éléments
fongiques en
bleu.
EXAMEN DIRECT
Eau physiologique
EXAMEN DIRECT
Liquide de montage
Liquide de montage
Eau phy:
muqueuses,
par
l’écouvillon,
selles
Eclaircissant:
•Lactophénol :
cheveu,
crachat, pus…
•Potasse à
30% : squames,
ongles
Lugol 2% : tous
les
prélèvements,
levures et
filaments
mycéliens
brun.
Encre de chine
diluée au
1/5e :
indispensable
et obligatoire
pour LCR.
capsule des
Cryptocoques
Noir
chlorazol :
éléments
fongiques en
noir
Bleu
lactophénol
(bleu coton) :
éléments
fongiques en
bleu.
EXAMEN DIRECT
Eclaircissement
Objectif X40
EXAMEN DIRECT
Liquide de montage
Liquide de montage
Eau phy:
muqueuses,
par
l’écouvillon,
selles
Eclaircissant:
•Lactophénol in
colore :
cheveu,
crachat, pus…
•Potasse à
30% : squames,
ongles
Lugol 2% : tous
les
prélèvements,
levures et
filaments
mycéliens
brun.
Encre de chine
diluée au
1/5e :
indispensable
et obligatoire
pour LCR.
capsule des
Cryptocoques
Noir
chlorazol :
éléments
fongiques en
noir
Bleu
lactophénol
(bleu coton) :
éléments
fongiques en
bleu.
EXAMEN DIRECT
Encre de chine
EXAMEN DIRECT
Liquide de montage
Liquide de montage
Eau phy:
muqueuses,
par
l’écouvillon,
selles
Eclaircissant:
•Lactophénol in
colore :
cheveu,
crachat, pus…
•Potasse à
30% : squames,
ongles
Lugol 2% : tous
les
prélèvements,
levures et
filaments
mycéliens
brun.
Encre de chine
diluée au
1/5e :
indispensable
et obligatoire
pour LCR.
capsule des
Cryptocoques
Noir
chlorazol :
éléments
fongiques en
noir
Bleu
lactophénol
(bleu coton) :
éléments
fongiques en
bleu.
EXAMEN DIRECT
Noir chlorazol
EXAMEN DIRECT
Liquide de montage
Liquide de montage
Eau phy:
muqueuses,
par
l’écouvillon,
selles
Eclaircissant:
•Lactophénol in
colore :
cheveu,
crachat, pus…
•Potasse à
30% : squames,
ongles
Lugol 2% : tous
les
prélèvements,
levures et
filaments
mycéliens
brun.
Encre de chine
diluée au
1/5e :
indispensable
et obligatoire
pour LCR.
capsule des
Cryptocoques
Noir
chlorazol :
éléments
fongiques en
noir
Bleu
lactophénol
(bleu coton) :
éléments
fongiques en
bleu.
EXAMEN DIRECT
Bleu coton
EXAMEN DIRECT
LCR, LBA, liquides biologiques
Centrifugation
1500t/mn pd
3mn
EXAMEN DIRECT
Biopsie d’organes ou tissus, pièces
opératoires, MO…
Giemsa :
bonne résultats ;
cytoplasme violet,
la paroi reste
blanche.
Gram :
tous les
champignons sans
gram +.
Bleu de méthylène :
recouvrir la lame
de BM ; laisser agir
3 minutes, rincer,
les éléments
fongiques bleu.
EXAMEN DIRECT
MGG
EXAMEN DIRECT
Biopsie d’organes ou tissus, pièces
opératoires, MO…
Giemsa :
bonne résultats ;
cytoplasme violet,
la paroi reste
blanche.
Gram :
tous les
champignons sans
gram +.
Bleu de méthylène :
recouvrir la lame
de BM ; laisser agir
3 minutes, rincer,
les éléments
fongiques bleu.
EXAMEN DIRECT
Biopsie d’organes ou tissus/ colorations
spécifiques de l’anapath
Gomori Grocott ou
imprégnation argentique :
parois fongiques en noir,
le fond de la préparation vert
pâle.
pas pour cytoplasme et noyau.
L’Acide Périodique Schiff (PAS):
polysaccharides de la paroi et
glycogène
champignons rouge-violet.
cytoplasme et noyaux bien
visibles.
EXAMEN DIRECT
Imprégnation argentique
EXAMEN DIRECT
Biopsie d’organes ou tissus/ colorations
spécifiques de l’anapath
Gomori Grocott ou
imprégnation argentique :
parois fongiques en noir,
le fond de la préparation vert
pâle.
pas pour cytoplasme et noyau.
L’Acide Périodique Schiff (PAS):
polysaccharides de la paroi et
glycogène
champignons rouge-violet.
cytoplasme et noyaux bien
visibles.
EXAMEN DIRECT
PAS
EXAMEN DIRECT- RESULTATS-
Levure du genre Candida
EXAMEN DIRECT
Levure Malassezia furfur
EXAMEN DIRECT- RESULTATS-
Genre Aspergillus
EXAMEN DIRECT- RESULTATS-
Dermatophytes –squames et ongles-
EXAMEN DIRECT- RESULTATS-
Dermatophytes –cheveux et poils-
Parasitisme endo-ectothrix Intrapilaire ou endothrix
Microsporique Miroïde Mégasporé Tricophytique Favique
EXAMEN DIRECT- RESULTATS-
Dermatophytes –cheveux et poils-
EXAMEN DIRECT- RESULTATS-
Dermatophytes –cheveux et poils-
EXAMEN DIRECT- RESULTATS-
Dermatophytes –cheveux et poils-
EXAMEN DIRECT- RESULTATS-
Dermatophytes –cheveux et poils-
EXAMEN DIRECT- RESULTATS-
Dermatophytes –cheveux et poils-
Culture
Culture
Isolement
Identification
Culture
Le milieu Sabouraud :
• Universel, +simple
• Glucose + peptone +agar
• Tous les champignons
responsables de mycoses.
Le milieu Sabouraud –
chloramphénicol et/
ou gentamycine
• Inhiber la pousse des
bactéries
Le milieu Sabouraud –
chloramphénicol –
actidione :
• Inhibiteur des moisissures
saprophytes
• Inhibe la croissance de
certains champignons:
critère d’identification.
Milieux d’isolement:
Culture
Milieux d’isolement:
• Milieux spécifiques des champignons
• Milieu MycosisLes hémocultures:
• Malassezia furfur.
Milieu Sabouraud
+l’huile d’olive
• Dermatophytes exigeants.
Milieu Brain
Heart agar
Culture
En boite :
• Grande surface
d’isolement (association
de champignons)
• Contamination facile
• Milieu se dessèche
rapidement
En tube :
• Bonne conservation
• Moins de contamination
• Surface d’ensemencement
réduite.
Culture
• Ensemencer en abondance et stérilement.
– Hotte à flux laminaire
– Bec Bunsen.
Techniques d’ensemencement:
Sabouraud-
chloramphénicol
Sabouraud-
chloramphénicol-actidione
Examen direct/ reste du
produit
Culture
Techniques d’ensemencement:
• Couler le produit liquide sur le tube incliné
• Ensemencer par stries en boiteLiquide
• Frotter l’écouvillon en le roulant sur toute la surface du milieu
Ecouvillons
• Déposer le produit pathologique à la surface du milieu de culture.Squames, fragments
d’ongle ou cheveux
• Prélever avec une pipette Pasteur recourbée, ensemencer largement sur
toute la surface.Expectorations, selles
• Découper dans une boite de Pétri stérile avec un bistouri, le produit en
petits fragments ou broyer avec un peu d’eau physiologique stérile,
• Ensemencer plusieurs fragments sur la surfaces du milieu.
Biopsies
Culture
Incubation:
27°C 37°C
Culture
Lecture:
Tous les 5j
pendant
4semaines
Après 24h et
tout les jours
pendant 8 j
IDENTIFICATION
Levures:
IDENTIFICATION
Levures:
IDENTIFICATION
Levures:
24-48h à 27°C
Diagnostic mycologique  dr benlaribi imane halima
Diagnostic mycologique  dr benlaribi imane halima
IDENTIFICATION
Levures:
• Etude de
l’assimilation
des sucres
Auxanogramme
• Etude de la
fermentation
des sucres
Zymogramme
IDENTIFICATION
Levures:
IDENTIFICATION
Champignons filamenteux:
IDENTIFICATION
Champignons filamenteux:
Critères morphologiques
Examen macroscopique :
• Délai de pousse
• La consistance de la colonie
• La couleur : du recto et du verso
• La présence d’un pigment
diffusible
Examen microscopique :
• Prélever un fragment de la
colonie à l’aide d’une spatule,
• Technique de drapeau
IDENTIFICATION
Champignons filamenteux:
Espèce Délai de
pousse
Examen macroscopique Examen microscopique
Epidermophyton
floccosum
Rapide
5 à 6
jours
Colonie poudreuse
Recto : vert olive
Verso : chamois
Pas de microconidies
Macroconidies : en raquette, à paroi lisse et
mince, disposés en bouquet « régime de banane »
Espèce Délai de
pousse
Examen macroscopique Examen microscopique
Epidermophyton
floccosum
Rapide
5 à 6
jours
Colonie poudreuse
Recto : vert olive
Verso : chamois
Pas de microconidies
Macroconidies : en raquette, à paroi lisse et
mince, disposés en bouquet « régime de banane »
Espèce Délai de
pousse
Examen macroscopique Examen microscopique
Microsporum
canis
Rapide
5 à 6
jours
Colonie duveteuse,
étoilée
Recto : blanc
Verso : pigment jaune
orangé
Microconidies : piriformes, peuvent être
présentes.
Macroconidies : de grandes tailles, renflées au
centre, pointues aux 2extémités, parois épaisses,
échinulées, contiennent 6-12 logettes
Espèce Délai de
pousse
Examen macroscopique Examen microscopique
Microsporum
canis
Rapide
5 à 6
jours
Colonie duveteuse,
étoilée
Recto : blanc
Verso : pigment jaune
orangé
Microconidies : piriformes, peuvent être
présentes.
Macroconidies : de grandes tailles, renflées au
centre, pointues aux 2extémités, parois épaisses,
échinulées, contiennent 6-12 logettes
Espèce Délai de
pousse
Examen macroscopique Examen microscopique
Trichophyton
rubrum
10 jours Colonie duveteuse
Recto : blanc
Verso : pigment rouge
Microconidies : plus ou moins nombreuses,
piriformes et disposées en aclafium.
Macroconidies : absentes
Espèce Délai de
pousse
Examen macroscopique Examen microscopique
Trichophyton
rubrum
10 jours Colonie duveteuse
Recto : blanc
Verso : pigment rouge
Microconidies : plus ou moins nombreuses,
piriformes et disposées en aclafium.
Macroconidies : absentes
Espèce Délai de
pousse
Examen macroscopique Examen microscopique
Trichophyton
mentagrophytes
Rapide
5 à 6
jours
Colonie poudreuse
Recto : blanc à crème
Verso : jaune rouge ou
brun
Microconidies : nombreuses, rondes et disposées
en aclafium.
Macroconidies : en massues, à paroi lisse et mince
et contiennent de 5-6 logettes.
Ornementations particulières : vrilles, organes
pectinés.
Espèce Délai de
pousse
Examen macroscopique Examen microscopique
Trichophyton
mentagrophytes
Rapide
5 à 6
jours
Colonie poudreuse
Recto : blanc à crème
Verso : jaune rouge ou
brun
Microconidies : nombreuses, rondes et disposées
en aclafium.
Macroconidies : en massues, à paroi lisse et mince
et contiennent de 5-6 logettes.
Ornementations particulières : vrilles, organes
pectinés.
IDENTIFICATION
Champignons filamenteux:
Espèce Incubation Délai
de
pousse
Recto des
colonies
Conidiophore Tête
aspergillaire
Vésicules Rangées
de
phialides
Conidies
A.fumigatus 37°C 24-48
heures
Poudreuses
Vert à gris
Lisse, incolore En colone Hémisphérique 1 Globuleuses
Vertes
Echinulées
Espèce Incubation Délai
de
pousse
Recto des
colonies
Conidiophore Tête
aspergillaire
Vésicules Rangées
de
phialides
Conidies
A.fumigatus 37°C 24-48
heures
Poudreuses
Vert à gris
Lisse, incolore En colone Hémisphérique 1 Globuleuses
Vertes
Echinulées
Espèce Incubation Délai
de
pousse
Recto des
colonies
Conidiophore Tête
aspergillaire
Vésicules Rangées
de
phialides
Conidies
A.nidulans 27°C 4-5
jours
Poudreuses
Vert cresson
Lisse, sinueux
Court
En colone Hémisphérique 2 Rondes
Vertes
Echinulées
Espèce Incubation Délai
de
pousse
Recto des
colonies
Conidiophore Tête
aspergillaire
Vésicules Rangées
de
phialides
Conidies
A.nidulans 27°C 4-5
jours
Poudreuses
Vert cresson
Lisse, sinueux
Court
En colone Hémisphérique 2 Rondes
Vertes
Echinulées
Espèce Incubation Délai
de
pousse
Recto des
colonies
Conidiophore Tête
aspergillaire
Vésicules Rangées
de
phialides
Conidies
A.nidulans 27°C 4-5
jours
Poudreuses
Vert cresson
Lisse, sinueux
Court
En colone Hémisphérique 2 Rondes
Vertes
Echinulées
Espèce Incubation Délai
de
pousse
Recto des
colonies
Conidiophore Tête
aspergillaire
Vésicules Rangées
de
phialides
Conidies
A.flavus 27°C 4-5
jours
Poudreuses
Vert jaune
Rugueux,
incolore
Radiée Sphérique 1-2 Globuleuses
Vertes
Echinulées
Espèce Incubation Délai
de
pousse
Recto des
colonies
Conidiophore Tête
aspergillaire
Vésicules Rangées
de
phialides
Conidies
A.flavus 27°C 4-5
jours
Poudreuses
Vert jaune
Rugueux,
incolore
Radiée Sphérique 1-2 Globuleuses
Vertes
Echinulées
Espèce Incubation Délai
de
pousse
Recto des
colonies
Conidiophore Tête
aspergillaire
Vésicules Rangées
de
phialides
Conidies
A.niger 27°C 4-5
jours
Granuleuses
Noir
Lisse, incolore
à brun
Très long
Radiée Globuleuse 2 Globuleuses
Noires
Echinulées
Espèce Incubation Délai
de
pousse
Recto des
colonies
Conidiophore Tête
aspergillaire
Vésicules Rangées
de
phialides
Conidies
A.niger 27°C 4-5
jours
Granuleuses
Noir
Lisse, incolore
à brun
Très long
Radiée Globuleuse 2 Globuleuses
Noires
Echinulées
IDENTIFICATION
Champignons filamenteux:
Milieux Champignons Intérêt
Milieu eau gélosée à 2% ( EG) Trichophyton rubrum Meilleure fructification
Brain-Heart en boite de pétri T.ochraceum,T. violaceum, T.
schoenleinii
Dermatophytes exigeants
Milieu P.D.A (pomme de terre-
glucose-agar)
Microsporum canis Pigments
Milieux lactrimel de Borelli T. rubrum , M.canis Pigments
Milieu Czapek Aspergillus Pigments
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Milieu extrait de malt Aspergillus Pigments

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Diagnostic mycologique dr benlaribi imane halima

  • 1. DR. BENLARIBI IMANE HALIMA Pharmacienne praticienne spécialiste Assistante en parasitologie _ mycologie médicale Année: 2018/2019
  • 2. INTRODUCTION Le diagnostic mycologique: Identification Culture Examen direct Prélèvement Collaboration clinicien/ biologiste
  • 3. FICHE DE RENSEIGNEMENT • Identité du patient; • Adresse; • Profession; • Notion de voyage; • Contact avec les animaux; • Signes cliniques et paracliniques; • Signes radiologiques; • Antécédents médicaux; • Prise de traitement (antifongique ou autres).
  • 4. PRELEVEMENT La qualité du prélèvement détermine la qualité du diagnostic.
  • 5. PRELEVEMENT • Les modalités du prélèvement dépendent de la localisation des lésions • Les prélèvements: – Effectués au labo – Acheminés rapidement au labo – Conservés à +4°C.
  • 6. PRELEVEMENT • Conditions: – Avant toute toilette – Avant traitement spécifique ou après une fenêtre thérapeutique: • 15 jours (ATF local) • 2-3 mois (ATF systémique, vernis ou une solution filmogène).
  • 8. Modalités du prélèvement • Lésions squameuses : grattage en périphérie des lésions.
  • 10. Modalités du prélèvement • Lésions squameuses : grattage en périphérie des lésions. • Lésions suintantes/ Plaies: écouvillonner les lésions.
  • 12. Modalités du prélèvement • Lésions squameuses : grattage en périphérie des lésions. • Plaies: écouvillonner les lésions. • Nodules: ponctionner avec une aiguille stérile, ou faire une biopsie • Pityriasis versicolor: scotch-test cutané
  • 15. •Verte: une teigne microsporique, •Jaune-vert: une teigne favique •Absence: teigne trichophytique, teigne inflammatoire
  • 16. Modalités du prélèvement • Lampe de Wood • Arracher avec une pince à épiler les cheveux fluorescents
  • 18. Modalités du prélèvement • Lampe de Wood • Arracher avec une pince à épiler les cheveux fluorescents • Ou prélever les cheveux cassés à la loupe • Prélever les squames et les croûtes en raclant à la curette. • Lésion inflammatoire/suppurée: prélever le pus par écouvillon
  • 19. Périonyxis Récolter le pus avec un écouvillon stérile Leuconychie superficielle Gratter à la surface blanche Onyxis Couper la partie atteinte de l’ongle Gratter le matériel friable à l’interface saine Modalités du prélèvement
  • 20. Modalités du prélèvement • Bouche: écouvillon, en grattant la zone atteinte.
  • 23. Modalités du prélèvement • Bouche: écouvillon, en grattant la zone atteinte. • Anus: racler les squames en périphérie. • Cavité vaginale: écouvillonnage sous spéculum • Oreille: bouchon noirâtre ,le prélever à la pince.
  • 25. Modalités du prélèvement • Désinfection soigneuse des parties génito- urinaires • Urines du milieu du jet • Récolte dans un récipient stérile
  • 26. Modalités du prélèvement • Récolter les selles dans des boites stériles à fermeture hermétique •Écouvillonnage rectal : nourrisson
  • 27. Modalités du prélèvement • Asepsie rigoureuse • À l’aide d’une aiguille, la ponction se fait entre les vertèbres L4-L5 ou L3-L4 • La récolte se fait dans un tube stérile
  • 29. Modalités du prélèvement • 5-10 ml sur anticoagulant •Directement sur milieu de culture •Un tube sec sans anticoagulant: sérologie.
  • 31. Modalités du prélèvement Diviser en 2 parties: • Culture: dans l’eau physiologique • Examen anatomopathologique: fixation dans du liquide de Bouin ou du formol.
  • 32. Prélèvement et conditionnement Localisation Prélèvement Conditionnement Délai d’acheminement Conservation Superficielle  Peau (squame)  Phanères : cheveux, poils et ongles Grattage (curette ou vaccinostyle) Pince à épiler (cheveux parasités) Ciseaux Boites stériles 1 à 3 jours +4°C Sous cutanée (nodules) Ecouvillonnage Biopsie Flacons stériles 24 heures +4°C Broncho-pulmonaire Lavage broncho-alvéolaire (LBA) Aspiration Crachats Flacons stériles 24 heures +4°C Pleurale Articulaire Péritonéale Liquide de ponction Liquide de dialyse, drains Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement Cérébrale Ponction lombaire (LCR) Flacons stériles de 1ml 2 heures Traiter immédiatement Septicémie Sang Cathéters centraux Hémoculture fongique Flacons stériles 24 heures Température ambiante Tissus profonds Biopsie Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
  • 33. Prélèvement et conditionnement Localisation Prélèvement Conditionnement Délai d’acheminement Conservation Superficielle  Peau (squame)  Phanères : cheveux, poils et ongles Grattage (curette ou vaccinostyle) Pince à épiler (cheveux parasités) Ciseaux Boites stériles 1 à 3 jours +4°C Sous cutanée (nodules) Ecouvillonnage Biopsie Flacons stériles 24 heures +4°C Broncho-pulmonaire Lavage broncho-alvéolaire (LBA) Aspiration Crachats Flacons stériles 24 heures +4°C Pleurale Articulaire Péritonéale Liquide de ponction Liquide de dialyse, drains Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement Cérébrale Ponction lombaire (LCR) Flacons stériles de 1ml 2 heures Traiter immédiatement Septicémie Sang Cathéters centraux Hémoculture fongique Flacons stériles 24 heures Température ambiante Tissus profonds Biopsie Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
  • 34. Prélèvement et conditionnement Localisation Prélèvement Conditionnement Délai d’acheminement Conservation Superficielle  Peau (squame)  Phanères : cheveux, poils et ongles Grattage (curette ou vaccinostyle) Pince à épiler (cheveux parasités) Ciseaux Boites stériles 1 à 3 jours +4°C Sous cutanée (nodules) Ecouvillonnage Biopsie Flacons stériles 24 heures +4°C Broncho-pulmonaire Lavage broncho-alvéolaire (LBA) Aspiration Crachats Flacons stériles 24 heures +4°C Pleurale Articulaire Péritonéale Liquide de ponction Liquide de dialyse, drains Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement Cérébrale Ponction lombaire (LCR) Flacons stériles de 1ml 2 heures Traiter immédiatement Septicémie Sang Cathéters centraux Hémoculture fongique Flacons stériles 24 heures Température ambiante Tissus profonds Biopsie Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
  • 35. Prélèvement et conditionnement Localisation Prélèvement Conditionnement Délai d’acheminement Conservation Superficielle  Peau (squame)  Phanères : cheveux, poils et ongles Grattage (curette ou vaccinostyle) Pince à épiler (cheveux parasités) Ciseaux Boites stériles 1 à 3 jours +4°C Sous cutanée (nodules) Ecouvillonnage Biopsie Flacons stériles 24 heures +4°C Broncho-pulmonaire Lavage broncho-alvéolaire (LBA) Aspiration Crachats Flacons stériles 24 heures +4°C Pleurale Articulaire Péritonéale Liquide de ponction Liquide de dialyse, drains Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement Cérébrale Ponction lombaire (LCR) Flacons stériles de 1ml 2 heures Traiter immédiatement Septicémie Sang Cathéters centraux Hémoculture fongique Flacons stériles 24 heures Température ambiante Tissus profonds Biopsie Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
  • 36. Prélèvement et conditionnement Localisation Prélèvement Conditionnement Délai d’acheminement Conservation Superficielle  Peau (squame)  Phanères : cheveux, poils et ongles Grattage (curette ou vaccinostyle) Pince à épiler (cheveux parasités) Ciseaux Boites stériles 1 à 3 jours +4°C Sous cutanée (nodules) Ecouvillonnage Biopsie Flacons stériles 24 heures +4°C Broncho-pulmonaire Lavage broncho-alvéolaire (LBA) Aspiration Crachats Flacons stériles 24 heures +4°C Pleurale Articulaire Péritonéale Liquide de ponction Liquide de dialyse, drains Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement Cérébrale Ponction lombaire (LCR) Flacons stériles de 1ml 2 heures Traiter immédiatement Septicémie Sang Cathéters centraux Hémoculture fongique Flacons stériles 24 heures Température ambiante Tissus profonds Biopsie Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
  • 37. Prélèvement et conditionnement Localisation Prélèvement Conditionnement Délai d’acheminement Conservation Superficielle  Peau (squame)  Phanères : cheveux, poils et ongles Grattage (curette ou vaccinostyle) Pince à épiler (cheveux parasités) Ciseaux Boites stériles 1 à 3 jours +4°C Sous cutanée (nodules) Ecouvillonnage Biopsie Flacons stériles 24 heures +4°C Broncho-pulmonaire Lavage broncho-alvéolaire (LBA) Aspiration Crachats Flacons stériles 24 heures +4°C Pleurale Articulaire Péritonéale Liquide de ponction Liquide de dialyse, drains Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement Cérébrale Ponction lombaire (LCR) Flacons stériles de 1ml 2 heures Traiter immédiatement Septicémie Sang Cathéters centraux Hémoculture fongique Flacons stériles 24 heures Température ambiante Tissus profonds Biopsie Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
  • 38. Prélèvement et conditionnement Localisation Prélèvement Conditionnement Délai d’acheminement Conservation Superficielle  Peau (squame)  Phanères : cheveux, poils et ongles Grattage (curette ou vaccinostyle) Pince à épiler (cheveux parasités) Ciseaux Boites stériles 1 à 3 jours +4°C Sous cutanée (nodules) Ecouvillonnage Biopsie Flacons stériles 24 heures +4°C Broncho-pulmonaire Lavage broncho-alvéolaire (LBA) Aspiration Crachats Flacons stériles 24 heures +4°C Pleurale Articulaire Péritonéale Liquide de ponction Liquide de dialyse, drains Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement Cérébrale Ponction lombaire (LCR) Flacons stériles de 1ml 2 heures Traiter immédiatement Septicémie Sang Cathéters centraux Hémoculture fongique Flacons stériles 24 heures Température ambiante Tissus profonds Biopsie Flacons stériles 2 heures Traiter immédiatement
  • 39. Question N°1 Quelles sont les étapes du diagnostic mycologique?
  • 40. Question N°2 Quelles sont les conditions de prélèvement mycologique?
  • 41. Question N° 3 Quelles sont les modalités de prélèvement des lésions squameuses?
  • 42. Question N° 4 Quelles sont les modalités de prélèvement de Pityriasis versicolor?
  • 43. Question N° 5 Quelles sont les modalités de prélèvement des teignes?
  • 44. Question N° 6 Quelles sont les modalités de prélèvement d’onyxis?
  • 45. Question N° 7 Quelles sont les modalités de prélèvement de périonyxis?
  • 46. Question N° 8 Quelles sont les modalités de prélèvement de muguet buccal?
  • 47. EXAMEN DIRECT Indispensable, ED+: Oriente le diagnostic Suspecter ou confirme la pathogénicité Apprécier la présence et l’abondance Débuter un traitement antifongique
  • 49. EXAMEN DIRECT Liquide de montage Liquide de montage Eau phy: muqueuses, par l’écouvillon, selles Eclaircissant: •Lactophénol : cheveu, crachat, pus… •Potasse à 30% : squames, ongles Lugol 2% : tous les prélèvements, levures et filaments mycéliens brun. Encre de chine diluée au 1/5e : indispensable et obligatoire pour LCR. capsule des Cryptocoques Noir chlorazol : éléments fongiques en noir Bleu lactophénol (bleu coton) : éléments fongiques en bleu.
  • 51. EXAMEN DIRECT Liquide de montage Liquide de montage Eau phy: muqueuses, par l’écouvillon, selles Eclaircissant: •Lactophénol : cheveu, crachat, pus… •Potasse à 30% : squames, ongles Lugol 2% : tous les prélèvements, levures et filaments mycéliens brun. Encre de chine diluée au 1/5e : indispensable et obligatoire pour LCR. capsule des Cryptocoques Noir chlorazol : éléments fongiques en noir Bleu lactophénol (bleu coton) : éléments fongiques en bleu.
  • 53. EXAMEN DIRECT Liquide de montage Liquide de montage Eau phy: muqueuses, par l’écouvillon, selles Eclaircissant: •Lactophénol in colore : cheveu, crachat, pus… •Potasse à 30% : squames, ongles Lugol 2% : tous les prélèvements, levures et filaments mycéliens brun. Encre de chine diluée au 1/5e : indispensable et obligatoire pour LCR. capsule des Cryptocoques Noir chlorazol : éléments fongiques en noir Bleu lactophénol (bleu coton) : éléments fongiques en bleu.
  • 55. EXAMEN DIRECT Liquide de montage Liquide de montage Eau phy: muqueuses, par l’écouvillon, selles Eclaircissant: •Lactophénol in colore : cheveu, crachat, pus… •Potasse à 30% : squames, ongles Lugol 2% : tous les prélèvements, levures et filaments mycéliens brun. Encre de chine diluée au 1/5e : indispensable et obligatoire pour LCR. capsule des Cryptocoques Noir chlorazol : éléments fongiques en noir Bleu lactophénol (bleu coton) : éléments fongiques en bleu.
  • 57. EXAMEN DIRECT Liquide de montage Liquide de montage Eau phy: muqueuses, par l’écouvillon, selles Eclaircissant: •Lactophénol in colore : cheveu, crachat, pus… •Potasse à 30% : squames, ongles Lugol 2% : tous les prélèvements, levures et filaments mycéliens brun. Encre de chine diluée au 1/5e : indispensable et obligatoire pour LCR. capsule des Cryptocoques Noir chlorazol : éléments fongiques en noir Bleu lactophénol (bleu coton) : éléments fongiques en bleu.
  • 59. EXAMEN DIRECT LCR, LBA, liquides biologiques Centrifugation 1500t/mn pd 3mn
  • 60. EXAMEN DIRECT Biopsie d’organes ou tissus, pièces opératoires, MO… Giemsa : bonne résultats ; cytoplasme violet, la paroi reste blanche. Gram : tous les champignons sans gram +. Bleu de méthylène : recouvrir la lame de BM ; laisser agir 3 minutes, rincer, les éléments fongiques bleu.
  • 62. EXAMEN DIRECT Biopsie d’organes ou tissus, pièces opératoires, MO… Giemsa : bonne résultats ; cytoplasme violet, la paroi reste blanche. Gram : tous les champignons sans gram +. Bleu de méthylène : recouvrir la lame de BM ; laisser agir 3 minutes, rincer, les éléments fongiques bleu.
  • 63. EXAMEN DIRECT Biopsie d’organes ou tissus/ colorations spécifiques de l’anapath Gomori Grocott ou imprégnation argentique : parois fongiques en noir, le fond de la préparation vert pâle. pas pour cytoplasme et noyau. L’Acide Périodique Schiff (PAS): polysaccharides de la paroi et glycogène champignons rouge-violet. cytoplasme et noyaux bien visibles.
  • 65. EXAMEN DIRECT Biopsie d’organes ou tissus/ colorations spécifiques de l’anapath Gomori Grocott ou imprégnation argentique : parois fongiques en noir, le fond de la préparation vert pâle. pas pour cytoplasme et noyau. L’Acide Périodique Schiff (PAS): polysaccharides de la paroi et glycogène champignons rouge-violet. cytoplasme et noyaux bien visibles.
  • 71. EXAMEN DIRECT- RESULTATS- Dermatophytes –cheveux et poils- Parasitisme endo-ectothrix Intrapilaire ou endothrix Microsporique Miroïde Mégasporé Tricophytique Favique
  • 78. Culture Le milieu Sabouraud : • Universel, +simple • Glucose + peptone +agar • Tous les champignons responsables de mycoses. Le milieu Sabouraud – chloramphénicol et/ ou gentamycine • Inhiber la pousse des bactéries Le milieu Sabouraud – chloramphénicol – actidione : • Inhibiteur des moisissures saprophytes • Inhibe la croissance de certains champignons: critère d’identification. Milieux d’isolement:
  • 79. Culture Milieux d’isolement: • Milieux spécifiques des champignons • Milieu MycosisLes hémocultures: • Malassezia furfur. Milieu Sabouraud +l’huile d’olive • Dermatophytes exigeants. Milieu Brain Heart agar
  • 80. Culture En boite : • Grande surface d’isolement (association de champignons) • Contamination facile • Milieu se dessèche rapidement En tube : • Bonne conservation • Moins de contamination • Surface d’ensemencement réduite.
  • 81. Culture • Ensemencer en abondance et stérilement. – Hotte à flux laminaire – Bec Bunsen. Techniques d’ensemencement: Sabouraud- chloramphénicol Sabouraud- chloramphénicol-actidione Examen direct/ reste du produit
  • 82. Culture Techniques d’ensemencement: • Couler le produit liquide sur le tube incliné • Ensemencer par stries en boiteLiquide • Frotter l’écouvillon en le roulant sur toute la surface du milieu Ecouvillons • Déposer le produit pathologique à la surface du milieu de culture.Squames, fragments d’ongle ou cheveux • Prélever avec une pipette Pasteur recourbée, ensemencer largement sur toute la surface.Expectorations, selles • Découper dans une boite de Pétri stérile avec un bistouri, le produit en petits fragments ou broyer avec un peu d’eau physiologique stérile, • Ensemencer plusieurs fragments sur la surfaces du milieu. Biopsies
  • 84. Culture Lecture: Tous les 5j pendant 4semaines Après 24h et tout les jours pendant 8 j
  • 91. IDENTIFICATION Levures: • Etude de l’assimilation des sucres Auxanogramme • Etude de la fermentation des sucres Zymogramme
  • 94. IDENTIFICATION Champignons filamenteux: Critères morphologiques Examen macroscopique : • Délai de pousse • La consistance de la colonie • La couleur : du recto et du verso • La présence d’un pigment diffusible Examen microscopique : • Prélever un fragment de la colonie à l’aide d’une spatule, • Technique de drapeau
  • 96. Espèce Délai de pousse Examen macroscopique Examen microscopique Epidermophyton floccosum Rapide 5 à 6 jours Colonie poudreuse Recto : vert olive Verso : chamois Pas de microconidies Macroconidies : en raquette, à paroi lisse et mince, disposés en bouquet « régime de banane »
  • 97. Espèce Délai de pousse Examen macroscopique Examen microscopique Epidermophyton floccosum Rapide 5 à 6 jours Colonie poudreuse Recto : vert olive Verso : chamois Pas de microconidies Macroconidies : en raquette, à paroi lisse et mince, disposés en bouquet « régime de banane »
  • 98. Espèce Délai de pousse Examen macroscopique Examen microscopique Microsporum canis Rapide 5 à 6 jours Colonie duveteuse, étoilée Recto : blanc Verso : pigment jaune orangé Microconidies : piriformes, peuvent être présentes. Macroconidies : de grandes tailles, renflées au centre, pointues aux 2extémités, parois épaisses, échinulées, contiennent 6-12 logettes
  • 99. Espèce Délai de pousse Examen macroscopique Examen microscopique Microsporum canis Rapide 5 à 6 jours Colonie duveteuse, étoilée Recto : blanc Verso : pigment jaune orangé Microconidies : piriformes, peuvent être présentes. Macroconidies : de grandes tailles, renflées au centre, pointues aux 2extémités, parois épaisses, échinulées, contiennent 6-12 logettes
  • 100. Espèce Délai de pousse Examen macroscopique Examen microscopique Trichophyton rubrum 10 jours Colonie duveteuse Recto : blanc Verso : pigment rouge Microconidies : plus ou moins nombreuses, piriformes et disposées en aclafium. Macroconidies : absentes
  • 101. Espèce Délai de pousse Examen macroscopique Examen microscopique Trichophyton rubrum 10 jours Colonie duveteuse Recto : blanc Verso : pigment rouge Microconidies : plus ou moins nombreuses, piriformes et disposées en aclafium. Macroconidies : absentes
  • 102. Espèce Délai de pousse Examen macroscopique Examen microscopique Trichophyton mentagrophytes Rapide 5 à 6 jours Colonie poudreuse Recto : blanc à crème Verso : jaune rouge ou brun Microconidies : nombreuses, rondes et disposées en aclafium. Macroconidies : en massues, à paroi lisse et mince et contiennent de 5-6 logettes. Ornementations particulières : vrilles, organes pectinés.
  • 103. Espèce Délai de pousse Examen macroscopique Examen microscopique Trichophyton mentagrophytes Rapide 5 à 6 jours Colonie poudreuse Recto : blanc à crème Verso : jaune rouge ou brun Microconidies : nombreuses, rondes et disposées en aclafium. Macroconidies : en massues, à paroi lisse et mince et contiennent de 5-6 logettes. Ornementations particulières : vrilles, organes pectinés.
  • 105. Espèce Incubation Délai de pousse Recto des colonies Conidiophore Tête aspergillaire Vésicules Rangées de phialides Conidies A.fumigatus 37°C 24-48 heures Poudreuses Vert à gris Lisse, incolore En colone Hémisphérique 1 Globuleuses Vertes Echinulées
  • 106. Espèce Incubation Délai de pousse Recto des colonies Conidiophore Tête aspergillaire Vésicules Rangées de phialides Conidies A.fumigatus 37°C 24-48 heures Poudreuses Vert à gris Lisse, incolore En colone Hémisphérique 1 Globuleuses Vertes Echinulées
  • 107. Espèce Incubation Délai de pousse Recto des colonies Conidiophore Tête aspergillaire Vésicules Rangées de phialides Conidies A.nidulans 27°C 4-5 jours Poudreuses Vert cresson Lisse, sinueux Court En colone Hémisphérique 2 Rondes Vertes Echinulées
  • 108. Espèce Incubation Délai de pousse Recto des colonies Conidiophore Tête aspergillaire Vésicules Rangées de phialides Conidies A.nidulans 27°C 4-5 jours Poudreuses Vert cresson Lisse, sinueux Court En colone Hémisphérique 2 Rondes Vertes Echinulées
  • 109. Espèce Incubation Délai de pousse Recto des colonies Conidiophore Tête aspergillaire Vésicules Rangées de phialides Conidies A.nidulans 27°C 4-5 jours Poudreuses Vert cresson Lisse, sinueux Court En colone Hémisphérique 2 Rondes Vertes Echinulées
  • 110. Espèce Incubation Délai de pousse Recto des colonies Conidiophore Tête aspergillaire Vésicules Rangées de phialides Conidies A.flavus 27°C 4-5 jours Poudreuses Vert jaune Rugueux, incolore Radiée Sphérique 1-2 Globuleuses Vertes Echinulées
  • 111. Espèce Incubation Délai de pousse Recto des colonies Conidiophore Tête aspergillaire Vésicules Rangées de phialides Conidies A.flavus 27°C 4-5 jours Poudreuses Vert jaune Rugueux, incolore Radiée Sphérique 1-2 Globuleuses Vertes Echinulées
  • 112. Espèce Incubation Délai de pousse Recto des colonies Conidiophore Tête aspergillaire Vésicules Rangées de phialides Conidies A.niger 27°C 4-5 jours Granuleuses Noir Lisse, incolore à brun Très long Radiée Globuleuse 2 Globuleuses Noires Echinulées
  • 113. Espèce Incubation Délai de pousse Recto des colonies Conidiophore Tête aspergillaire Vésicules Rangées de phialides Conidies A.niger 27°C 4-5 jours Granuleuses Noir Lisse, incolore à brun Très long Radiée Globuleuse 2 Globuleuses Noires Echinulées
  • 114. IDENTIFICATION Champignons filamenteux: Milieux Champignons Intérêt Milieu eau gélosée à 2% ( EG) Trichophyton rubrum Meilleure fructification Brain-Heart en boite de pétri T.ochraceum,T. violaceum, T. schoenleinii Dermatophytes exigeants Milieu P.D.A (pomme de terre- glucose-agar) Microsporum canis Pigments Milieux lactrimel de Borelli T. rubrum , M.canis Pigments Milieu Czapek Aspergillus Pigments Milieu Corn meal agar (CMA) Aspergillus Pigments Milieu extrait de malt Aspergillus Pigments