1. ESTUDIO DE LIQUIDOS
BIOLOGICOS
LIC. TM DAVID G. QUISPE ARANDA
2008

2. ESPERMATOGRAMA ( ESPERMIOGRAMA)
Recuento VASECTOMIA
II. EXAMEN MICROSCOPICO Movilidad
I. EXAMEN MACROSCOPICO ( Características Físicas ) Índice de vitalidad
Estudio morfológico
VOLUMEN Normal 2 – 6 ml ( 3 – 5 días de abstinencia )
Polisemia > 8 ml 1. EXAMEN DIRECTO Observación en fresco en lamina P-O
Oligosemia < 2 ml Presencia y ausencia de esper. y cls espermáticas
Concentración aproximada de esp.
LICUEFACCION Normal 15 minutos tras emisión Movilidad
Aumentada > 15 minutos tras emisión Observar Aglutinación de espermatozoides
Formas anormales de esp.
COLOR Normal blanquecino – opalescente Leucocitos, hematíes
Amarillento Proceso supurativo ( piosperma ) Cristales de fosfato de espermita ( agujas)
Prolongada abstinencia sexual
Rosado-Rojizo Sangre 2. ESTUDIO DE MOTILIDAD
PH Normal 7.3 – 7.4
Variación Fisiológica 7- 8.1 prostatitis
> 8 infl. de glándulas sex. vesiculitis
epididimitis
Pat
< 8 oclusión de conductos eyac ( patol. crónicas )
VISCOCIDAD Se observa el deslizamiento del semen desde la punta de una
pipeta pasteur de forma que si su viscosidad es normal cuando
cae gota a gota Portaobjetos Depositar una Cubrir con Observar con el
Disminución - ausencia de coagulación espontánea calentado a 37 gota de muestra cubreobjetos objetivo 40 x
del liquido seminal ( disminución de espermatozoides o º
ausencia de espermatozoides )
Aumentada - anulación total de progresión Se valora observando varios campos ( 40 x), contando por lo menos
espermática en el moco cervical 200 espermatozoides
Se registrar el porcentaje total de espermatozoides que presentan
FILANCIA movilidad y el porcentaje de inmóviles
SE REALIZA CUANDO EL SEMEN ESTA YA LICUADO
Se debe hacer el porcentaje cualitativo ( % ) de la motilidad
clasificando los espermatozoides según categorías
El semen forma un filamento de hasta 1 cm al introducir una Otra forma de clasificarlos es según :
varilla fina o una asa de siembra y retíralo suavemente. • Movilidad activa ------ avanzan
Aumentada - filamento > 1 cm ( semen no • Movilidad pasiva------- se mueven pero no avanzan
licuado o viscosidad aumentada

3. • Movimiento rápido y rectilíneo categoría a
• Movimiento progresivo pero menor o no rectilíneo categoría b % de teñidos < % de inmóviles
• Movimiento sin progresión categoría c
Los resultados se expresan como % de espermatozoides teñidos
• Inmóviles categoría d
Normal ------ coloración con eosina < 40 %
Patológica --- ( infertilidad ) > 40 %
Interpretación Clínica
4. RECUENTO
NORMAL 60-50 % movilidad
ASTENOSPERMIA Menos de 50 % de formas móviles a las 2 horas Después de licuefacción del semen
NECROSPERMIA Todas las formas carecen de motilidad
1. homogeneizar muestra
3. INDICE DE VITALIDAD 2. Dilución de la muestra 1/20 ( diluyente macomber – saunders )
3. Llenar cámara de Neubauer – reposar 2 minutos ( cámara húmeda)
Estudio de Necrospermia ( espermatozoides muertos ) 4. Observar muestra 10 x – 2 cuadrados de leucocitos
Estudio complementario de la motilidad – distingue dentro del grupo de formas 5. Calculo ( espermatozoides / ml )
móviles las vivas de las muertas
Hasta 11 con
diluyente 0.5 muestra
Llenado de la pipeta de thoma Llenado de la cámara de Neubauer y
Sol. Sol. Dilución 1/20 sedimentación de los espermatozoides en
eosina nigrosina cámara húmeda
Zona de
Depositar 1 gota de Añadir una gota de Tapar con el cubre Observar con el recuento
muestra y 1 gota de sol. De nigrosina procurando no hacer objetivo de 40 x
sol. Eosina . Homogeneizar burbujas
Homogeneizar 20 “

4. Nº de espermatozoides contados = NC
Nº espermatozoides / ml =NC x 100 000
Normal = 50 – 120 millones de espermatozoides / ml
CLASIFICACION DEL SEMEN EN FUNCION DEL NUMERO DE ESPERMATOZIDES
HIPERESPERMIA Superior a 250 millones / ml
NORMOSPERMIA De 20 a 250 millones / ml
OLIGOSPERMIA De 1 a 20 millones / ml
AZOOSPERMIA Ausencia de espermatozoides maduros
Presencia de células de espermiogenesis
Depositar 1 Hacer una Cubrir con
ASPERMIA Ausencia de espermatozoides
gota de muestra alcohol metilico 5 Cubrir con
Ausencia de células de espermiogenesis extensión minutos y dejar wrigth durante
en un extremo
5. FORMULA ESPERMATICA secar 4 minutos
Valora el potencial fecundativo junto con el numero total de espermatozoides y
su motilidad. Se valora los tipos de espermatozoides normales y anormales en
extensiones teñidas también se observa células de espermiogenesis
7.2
NORMAL
Giemsa
• Cabezas duplicadas
ANOMALIAS • Cabezas gigantes *Lavar con agua
DE LA • Cabezas pequeñas
CABEZA • Cabezas redondas corriente
• Cabezas alargadas
• Cabezas amorfas suavemente
• Cabezas encogidas
ANOMALIAS
*Secar
• Engrosado
DEL
CUELLO • Largado *observar con
• Inmaduro
• Ausente objetivo 100x
• Bifida Diluir con agua Lavar con Cubrir con
ANOMALIAS • Mal implantada de ph 7.2 , 4 agua giemsa
DE LA COLA • Enrollada minutos destilada diluido 12
• Ausente minutos

5. Se registran los porcentajes de espermatozoides normales y anormales y dentro
de estas ultimas el tipo de anormales encontradas y su proporción ( Hallazgos en el liquido seminal en las patologías mas frecuentes
anormalidades en cola, cabeza y cuello ) . También se informa de la presencia Hallazgos en el liquido seminal Patologías
de células de espermiogenesis y teratogenas , células sanguíneas y cualquier Volumen, recuento y motilidad disminuidos • Infertilidad
otro tipo de células que se pueden observar . • Inflamación de próstata
Licuación • Inflamación de vesículas seminales
Viscosidad elevada • Función prostática defectuosa
EXAMEN MICROSCOPICO RANGO NORMAL Blanco • Infección
Numero de espermatozoides Mayor de 25 millones / ml Color alterado Claro • Oligospermia
Rojo • Sangre
Movilidad Mayor de 50 % Motilidad y recuento disminuidos ( menos del • Lesión de los testículos
Vitalidad Mayor de 50 % 50 % de movilidad a las 2 horas ) • Lesión del epidídimo
• Insuficiencia testicular de excreción
Espermatozoides normales Mas de 70 % Aspermia • Oclusión de conductos deferentes
Disminución del
Alteraciones de cabeza 18 % Numero de Oligospermia • Lesión en los testículos
Alteraciones de cuello 5% Espermatozoides con motilidad y • Trastorno en el mecanismo eyaculat
morfología • Estenosis de los conductos deferentes
Alteraciones de cola 5% normal • Periodo corto de abstinencia sexual
Alteraciones mixtas 0–2% Infertilidad debida a :
Células espermiogenicas y teratogenas 1–3% • Orquitis por parotiditis
• Mala nutrición
Leucocitos 1-2 / campo ( menos de 15/campo ) • Medicamentos
• Radiaciones
Eritrocitos Ausentes • Exceso de calor local ( rop apretad)
Morfología alterada • Cirugía
Otras células 0 – 0.5 %
• Infección de conductos deferentes
• Criptorquidia
• Aplasia germinal
• Defectos hormonales (hipofisiarios,
Normal – índice de malformaciones < 30 % tiroideos)
Patológica - > 40 % ( teratospermia esterilidad definitiva ) • Prostatitis
Liquido seminal hipofecundante - alteraciones morfológicas 30 – 40 % • Uretritis
Aumento de cls. Descamación (uretra – próstata) / uretritis – prostatitis Aumento de leucocitos • Epididimitos
• Orquitis
• Traumatismo
III. EXAMEN QUIMICO Presencia de eritrocitos o hemoglobina • Tumor maligno del tracto genital
• Daño renal
Dosificación de ciertos compuestos secretados por : • Inflamaciones prostáticas
Acido cítrico disminuido • Neoplasias prostáticas
Vesículas seminales - fructosa • Falta de estimulación hormonal
Próstata - acido cítrico, fosfatasa acida, zinc ( act. Bacteriana) Fructosa disminuida • Trastorno funcional de las
Epidídimo - carnitina vesículas seminales

6. HOJA DE INFORME DE UNA ANALISIS DE LIQUIDO SEMINAL ESTUDIO DEL LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO
CONDICIONES DEL EXAMEN
Hora de eyaculacion……………….. Método de obtención ……………………. I. TOMA DE MUESTRA
Hora de examen …………………… Abstinencia sexual …………………......... Estéril ( cultivo )
Tiempo de transporte ……………… Ultimo proceso febril …………………….
EXAMEN MACROSCOPICO VOLUMEN ( 2.5 – 5 ml ) Heparina ( citológico )
Volumen………………………....... Aspecto …………………………………..
Color……………………….........… Licuación………………………............…. 3 tubos Fluoruro de sodio ( bioquímica )
Olor………………………...……… Filancia………………………...………….
Viscosidad………………………… Ph………………………...……………….
EXAMEN MICROSCOPICO
PREPARADO DE ORIENTACION
Espermatozoos……………………. Aglutinación………………………………
Células……………………………. Cristalización……………………………...
Espermiofagia…………………….. Leucocitos por campo…………………….
NUMERO DE ESPERMATOZOIDES POR ML……………………………………..
MOVILIDAD
Inmóviles…………………………%
Movilidad total …………………...% Activa………….% Pasiva …………%
VITALIDAD
Espermatozoos teñidos ……………………………%
Índice de vitalidad…………………………………%
ESPERMIOCITOGRAMA Bioquímica Microbiología Citología
Espermatozoos normales…………….…%
Espermatozoos anormales……...…….…%
Alteraciones de cabeza……...………% Macros ………..% Micros ………% Análisis a realizar en una muestra de LCR
Alteraciones de Seg. Int……………..% EXAMEN FISICO Estudio de caracteres organolépticos
Alteraciones de cola……...…………%
Alteraciones mixtas……...……….…% EXAMEN Recuento y diferenciación de células
Células de espermiogenesis …………. CITOLOGICO sanguineas y tisulares
Leucocitos…………………………….
Otras células…………………………. EXAMEN QUIMICO Determinaciones de metabolitos y Ph
ANALISIS
BIOQUIMICA
Fructosa………………………..……..mg/dl Acido cítrico………………..mg/dl EXAMEN Demostración del germen causal o de
Fosfatasa acida……………………….UI/ml Zinc………...……………….mg/dl MICROBIOLOGICO etiología infecciosa
EXAMEN Detección de antigenos y anticuerpos
DIAGNOSTICO……………………………………………………… INMUNOLOGICO

7. II. EXAMEN FISICO III. EXAMEN CITOLOGICO Leucocitos mononucleares
Malignas
Normal : liquido / límpido / cristalino / transparente Células (escasas) Plasmáticas
ASPECTO Anormal :Turbio / empañado / opalescente / sanguinolento Macrófagos
Se expresa la turbidez en cruces ( 0-4) Glias . Ependimarias
Procesos Infecciosos
-TURBIDEZ-
Examen dentro de la primera media hora de extracción
pues las alteraciones celulares aparecen rápidamente
Leucocitos Eritrocitos Microorganismos 1. RECUENTO CELULAR TOTAL
Cuando hay aumento de proteínas ( exceso de fibrinogeno ) 1. Homogenizar muestra . Diluir ( muestra ) si esta turbio
pueden aparecer coágulos 2. Llenar cámara de Neubauer
3. Observar muestra ( 10x ) se cuentan los 4 cuadrados grandes de las
esquinas .
COLOR Normal : incoloro
Anormal : rojizo – hematíes Oxihemoglobina
Amarillo (xantocromico) :pigmento Metahemoglobin
Bilirrubina
Se diferencia una hemorragia traumática por
punción, cuando al centrifugar la muestra y se
observa el sobrenadante este esta claro.
Características físicas del LCR normal Retículo de la cámara de Neubauer. Dirección del contaje de leucocitos. Se
Zona de recuento cuentan los dos leucocitos sobre las
PARAMETRO VALORES NORMALES líneas gruesas
Volumen 90 – 200 ml (adultos) 4. Calcular leucocitos / ul ( si no hay dilución )
10-60 ml (recién nacidos) Nº de células contadas = NC
Presión 70-200 mm agua( adultos )
50-100 mm agua ( niños ) Nº células / ul = NC / 4 x 10
Color Transparentes
Turbidez Inexistente
Normal < 5 células / ul Monocitos Aumento PLEOCITOSIS
Viscosidad Similar a la del agua
Linfocitos de células
Densidad 1,005-1,008
pH 7,4 - 7,5 Enfermedades infecciosas inflamación

8. III. EXAMEN QUIMICO
1. RECUENTO DIFERENCIAL Sangre ( difusión )
Indica el porcentaje de Liquido Turbio Frotis directo del LCR 1. PROTEINAS Origen
mononucleares y SNC ( síntesis )
polimorfonucleares Liquido transparente Concentrar el LCR
La concentración de proteínas en el LCR son
1. Concentración celular ( centrifugación suave por 15 minutos 20 veces menor que las del plasma
2. Tinción con wrigth
3. Observación al microscopia ( 100 X) se cuentan los diferentes tipos de
células y se expresa en porcentaje. METODO TURBIDIMETRICO ( precipitación de proteínas )
1. Mezclar en un tubo LCR (sobrenadante de la centrifugación ) y
Resultados del análisis citológico en diferentes patologías reactivo tricloroacetico al 3% en partes iguales
2. Reposar 10 minutos
EXAMEN CITOLOGICO PATOLOGIAS ASOCIADAS 3. Leer absorbancia 500 nm frente al blanco de agua destilada
4. La Absorbancia leída es proporcional a la concentración de
Meningitis tuberculosa
Proteínas
Pleocitosis moderada Encefalitis
RECUENTO 10-30celulas/mm3 Tumores del SNC
Pleocitosis acentuada Normal : 0.2 - 0.4 gr /L
100-10,0000celulas/mm3 Meningitis purulenta Recién Nacidos : aumentan ( 5to – 6to mes )
TOTAL
Pleocitosis extrema > 40 años : aumentan mayor de 0.6 gr/L
Hasta 50,0000celulas/mm3 Roturas de abscesos cerebrales ******Procesos infecciosos que afectan al SNC aumenta la
concentración de Proteínas del LCR ******
Predominio de neutrofilos Meningitis purulenta
Meningitis tuberculosa y bacteriana Proteinorraquia Patologías Causas
tratada Sangre Hemoglobina
Predominio de linfocitos Meningitis víricas y sifilítica Proteínas plasmáticas
Meningitis nicóticas AUMENTO Siempre que haya
RECUENTO Síndrome de Guillain Barre Proteínas celulares
Pus Exudado por meninges
DIFERENCIAL Presencia de eosinofilos Meningitis de origen parasitario inflamadas
Inflamación de tejidos cerebrales
Presencia de células Procesos inflamatorios crónicos AUMENTO Esclerosis múltiple Exudación por la inflamación
plasmáticas con linfocitos Esclerosis múltiple Encefalitis , polineuritis Aumento del contenido celular
LIGERO Meningitis tuberculosa y luética Obstrucción de la circulación
Alteraciones vasculares
Presencia de histiocitos Tumores cerebrales
Procesos tumorales
malignos
AUMENTO Bloqueo del canal espinal Estasis en la resorción del LCR
Presencia de macrófagos Infartos craneales
Meningitis infecciosa Mayor permeabilidad de la
Sustancias extrañas en LCR
IMPORTANTE Abscesos cerebrales barrera sangre-LCR
Síndrome de Guillain-Barre Degeneración tisular

9. 2. GLUCOSA
difusión de sangre
3. LACTATO DESHIDROGENASA gérmenes,
La concentración de glucosa es la mitad de los ( LDH ) -origen- células ( leucocitos,
niveles sanguíneos ( 50 – 80 mg / dl ) células Tumorales )
Se utiliza para el diagnostico diferencial de una meningitis
Aumenta : diabetes mellitus bacteriana y vírica
Disminuye : uso aumentado debido a la presencia de Aumenta en hemorragias subaracnoideas, leucemias y linfomas o
leucocitos o gérmenes en el LCR carcinomas metastáticos del SNC
Se realiza por el método enzimático de la glucosa Oxidasa de manera 4. ADENOSIN DESAMINASA ( ADA )
manual o automatizada ( HITACHI )
Diagnostico de meningitis tuberculosa
Variaciones de la glucorraquia en diversas Valor > 9 U / L
patologías 5. TGO
Glucorraquia Patologías Aumenta en meningitis , hemorragias y tumores
Meningitis purulentas Reacción de PANDY : colocar en un tubo 2 ml
reactivo ( 10 gr fenol /100 ml agua destilada-
Meningitis tuberculosa estufa 37ºC 2 – dias. Tomar el sobrenadante ) , y
agregar 1 gota de LCR.
DISMINUIDA Carcinomas meníngeos Normal – no hay turbidez o ligera turbidez
Anormal – turbidez lechosa ( aumento de
Hipoglucemia globulinas ). Hemorragia, alteraciones
inflamatorias o degenerativas, meningitis TBC o
Infecciones virales sifilítica .
NORMAL
Meningitis no infecciosa
AUMENTADA Diabetes mellitus

10. Perfiles analíticos del LCR en diversas patologías del SNC
Patología Aspecto Células Proteínas Glucosa Cloruros Presión Otros
Muy turbio
Normal Claro De 2-5 mm3 50- 120-130 70-200
. 80mg/dl mmol/l mm
Linfocitos H2O
Turbio MME
Meningitis amarillo 80-90% de MME MD NoD ME
bacteriana coágulos granulocitos
Claro o ligero ME
Meningitis color amarillo Inicialmente
vírica Granulocitos E N N NoE
Después
linfocitos
Claro E
Meningitis Raramente Linfocitos ME D MD E Bacter
Muy hemorragico
Tuberculosa turbio +
en 3 tubos sucesivos
Incoloro. 10-1000 Pbas
Meningitis A veces cel/mm3 E NoD N ME Serolo
Sifilítica coágulos linfocitos +
Sanguinolen
Hemorragia Hematíes en 25-2000 MME NoE NoD E
cerebral sedimento Predominio
GLUCOSA Xantocromia linfocitos
Predominan
PROTEINAS Absceso Claro o turbio PMN al E NoE NoE E
cerebral inicio.
Después
Claro o linfocitos
poco turbio Trombosis
cerebral Claro NoE NoE NoE NoD E AST
Elev.
Elevadas
Esclerosis Claro E PT/IgG
múltiple Predominan Elevada N N E
linfocitos A/GT
Oligoclonal
PROTEINAS NoE
Tumor Incoloro o Predominan N o ME N N E Celu.
Cerebral Xantocromico linfocitos tumor
N = normal E = Elevado ME = Muy Elevado
Xantocromico MME = Muy Muy Elevado D = Disminuido MD = Muy Disminuido

11. ESTUDIO DEL LIQUIDO SINOVIAL
Hoja informe de un análisis de LCR
Muestra : liquido cefalorraquídeo
1.Características Físicas
VOLUMEN EXTRAIDO :
2. Bioquímica
PRESION :
3. Citología
ASPECTO :
4. Estudio de cristales
COLORACION :
5.Examen bacteriológico
PIGMENTOS :
6. Examen inmunológico
DENSIDAD :
EXAMEN CITOLOGICO CRITERIOS DE VALORACION
I. EXAMEN FISICO.
LEUCOCITOS TOTALES : Hasta 5/ ul
Mononucleares Hasta 5/ ul 1. ASPECTO Normal amarillo pálido – casi incoloro
Polinucleares Menos de 1/ul
HEMATIES : Ausencia
Aumento de
OTRAS CELULAS : Ausencia
leucocitos
BIOQUIMICA CRITERIOS DE VALORACION
PROTEINAS TOTALES 0,15-0,40 g/L Fragmento Procesos
PROTEINOGRAMA inflamatorio
cartílagos
Pre-albumina 3-7% Patológico
Albumina 50-70% -TURBIO-
0- 4 cruces
Globulinas totales 20-45%
Alfa-1 3-8%
Alfa-2 4-10%
Beta 7-12% Cristales Fibrina
Gamma 4-12%
Cociente A/GT Hasta 8
Adultos :0.4-0.75 g/L
GLUCOSA Niños : 0.5-0.8g/L Aspecto Normal : amarillo pálido transparente
CLORUROS 120-130mmol/L Artritis tuberculosa
LACTATO 1.1-2.8 mmol/L Artritis reumatoide crónica
TGO 7-45 mU/mL LECHOSO Artritis gotosa
Lupus eritematoso
ADA Hasta 5 U/L Artritis infecciosa
INMUNOLOGIA CRITERIOS DE VALORACION PURULENTO Artritis supurada de otro origen
Artritis por Hemophilus
AntiVIH Negativo VERDOSO Sinusitis aguda por gota o pseudo gota
FTA-ABS No se detectan AMARILLO INTENSO Procesos inflamatorios
ANTICUERPOS Ausentes Artritis traumática
Tumores sinoviales
ANTIMICROBIANOS ROJO SANGUINOLENTO Artropatía neurogenica
MICROBIOLOGIA CRITERIOS DE VALORACION Diatesis hemorrágicas
Punción traumática
Crecimiento de microorganismos
Estudio de sensibilidad

12. 2. VISCOCIDAD Y FILANCIA
PRUEBA DEL COAGULO DE MUCINA
Normal liquido viscoso , pegajoso al tacto
1. Colocar en un tubo 2 ml de acido acético 10 %
Patológico disminuye la viscosidad 2. Adicionar una gota de liquido sinovial
3. Normal, si se observa un coagulo o precipitado firme
Procedimiento Patológico , si el coagulo es blando que se fragmenta
fácilmente o se observa una suspensión turbia sin
1. Dejar gotear el liquido desde una jeringa desprovista de la coagulo. ( enfermedades inflamatorias activas )
aguja , a un tubo de ensayo
2. Se observa si cae gota agota formando un filamento en su II. EXAMEN CITOLOGICO
caída……….VISCOCIDAD NORMAL
1. RECUENTO CELULAR
***FILANCIA Estudio complementario de la viscosidad Normal 10 – 200 células / ul ( casi todos leucocitos )
Procedimiento Patológico > 200 leucocitos / ul
1. S coloca una gota de liquido sinovial entre el dedo pulgar
y el dedo índice y se presiona Procedimiento
2. Se separan los dedos
3. Se debe observar un filamento de 3 a 6 cm de longitud 1. Homogeneizar muestra
2. Dilución si es necesario ( 1/20 o 1/50 o 1/ 100 )
Una filancia disminuida se observa cuando el Con suero fisiológico al 0.1 % de azul de
metileno
filamento formado es menor de a 3cm
3. Reposar 10 minutos, antes de llenar la cámara
de Neubauer
4. Llenar cámara de recuento
5. Observar al microscopio con 10 x para
comprobar la distribución homogénea. Observar
con 40 x y se cuentan 4 cuadrados grandes de
VISCOSIDAD NORMAL :Elevada aunque depende de la articulación las esquinas ( leucocitos)
6. Calculo : Nº de células contadas = NC
DISMINUIDA Edad
Derrames articulares inflamatorios Nº células(leucocitos) / ul = NC x2.5x Dilución ( inversa)
Infecciones
SE MANTIENE ELEVADA Derrames traumáticos
Derrames de las artrosis Si el liquido sinovial es hemorrágico, lisar hematíes
utilizando una solución hipotónica (0.3% ),
Hematíes de cuantifican de manera cualitativa , ausencia
o presencia ( escasos, abundantes , muy abundantes )

13. 2. RECUENTO DIFERENCIAL. III. INVESTIGACION DE CRISTALES.
Polimorfonucleares 7 – 10 % ( aceptable hasta 25 % )
El liquido sinovial debe recogerse sin anticoagulantes o preservantes ( EDTA u
Mononucleares 70 % Linfocitos 15 - 35 % Oxalato de calcio ) porque pueden formar cristales que pueden dar falsos
Monolitos 35 - 55 % resultados .En el procedimiento para observar cristales :
1. Se utiliza un microscopio óptico convencional. También
Células sinoviales 3–5% se puede utilizar un microscopio de luz polarizada,
donde los cristales se observan mas brillantes y
Células plasmáticas 10 % birrefrigentes.
2. Se deposita una gota de liquido en una lamina porta
Otras células hasta 7 % objetos limpio.
3. Se cubre con una laminilla cubre objeto, realizando una
Procedimiento ligera presión
4. Se absorbe el liquido sobrante con papel filtro
1. Tinción directa de liquido sinovial o tinción 5. Se sella con barniz el borde de la laminilla para evitar la
del sedimento obtenida por centrifugación desecación
2. Elaboración del frotis 6. Observa al microscopio ( 40 x)
3. Tinción – Wrigth
4. Estudio morfológico celular – 100 x
Normal < 25 % PMN
Patológico Aumento de PMN ---- Inflamación e infecciones
articulares.
CELULAS AR…. Leucocitos PMN con
inclusiones citoplasmáticas abundantes y oscuras
que contienen IgG e IgM ( FR ).
Se presentan en pacientes con Artritis reumatoide ( Urato monosodico Pirofosfato calcico
no son especificas de esta patología ), gota, artritis
septicas .
CELULAS LE ….Son neutrofilos cuyas vacuolas
contienen material nuclear
Se presentan en la artritis del Lupus Eritematoso.
Hidroxiapatita Colesterol

14. MUESTRA LIQUIDO SINOVIAL
CRISTAL ESTRUCTURA PATOLOGIA
Procedencia:………………………...………………………...…………………….
URATO Alargados con forma de agujas de tamaño variable Presencia de derrame………………………...………………………...……….……
MONOSODICO Birrefringencia positiva GOTA Volumen extraído ………………………...………………………...………………
Abundantes en el líquidos sinovial de las articulaciones Aspecto………………………...………………………...……………………….....
Inflamadas flotando libres o en el citoplasma de neutrofilos Viscosidad /Mucina………………………...………………………..........................
Tienen forma de barra, bastones o romboides. PSEUDOGOTA
PIROFOSFATO
EXAMEN CITOLOGICO
Localizados dentro de los leucocitos y fuera de ellos
Pueden ser muy escasos
CALCICO LEUCOCITOS TOTALES………………..neutro/mm3 hasta 200
Birrefringencia positiva
Mononucleares ………………………...% 75 – 90 %
Polinucleares ………………………...…% 10 – 25 %
Brillantes con el contorno irregular y de muy pequeño
tamaño. ARTRITIS
HIDROXIAPATITA Forma de vara o aguja. Aislados solo visibles al microscopio
electrónico. Se ven agregados en masas brillantes no
FORMULA LEUCOCITARIA
birrefringentes en derrames
Segmentados…………..…..% 5 – 10 %
Cayados…………………....% 0–1%
ARTRITIS Eosinofilos………………...% 0–1%
COLESTEROL La forma habitual es en placas finas. En procesos crónicos,
REUMATOIDE Linfocitos……………….…% 15 – 35 %
forma de agujas o romboides.
(ocasionalmente) Monolitos……………….…% 35 – 55 %
Tamaño mayor que los anteriores
Plasmocitos………………..% 8 – 10 %
Fagocitos…………………..% hasta 7 %
Células sinoviales………….% hasta 5 %
IV. EXAMEN QUIMICO HEMATIES ..…………………… Ausentes
1. PROTEINAS Normal : 15 – 30 gr / L artritis reumatoide CRISTALES
Artritis séptica Presencia de : …………………... Ausentes
Patológico : procesos articulares gota
Artritis - TBC EXAMEN QUIMICO
Se realiza de manera automatizada ( HITACHI ) Glucosa …………………….... g/l 0.55 - 1.0 g/l
Proteínas totales …………….. g/l 5 – 30 g/l
2. GLUCOSA
Concentración similar al plasma sanguíneo o Lactato ………………….….. mg/dl 20 – 30 mg/dl
Ligeramente menor MICROBIOLOGICO
Si disminuye a la mitad sugiere infección bacteriana
Se realiza de manera automatizada ( HITACHI ) Sedimento………………………...………………………...………………………...
Cultivo………………………...………………………...………………………........
3. LDH
Indica alguna inflamación INMUNOLOGICO
> de 30 mg/dl …inflamación Complemento………………………...………………………...…………………….

15. ESTUDIO DEL LIQUIDO PLEURAL , PERICARDICO
Y PERITONEAL
Hallazgos en el LIQUIDO SINOVIAL en las patologías mas frecuentes
TRASUDADO EXUDADO
Valores No Inflamatorio
Séptico Hemorrágico
Insuficiencia congestiva Infección bacteriana o
TIPOS
inflamatorio nicótica
Normales
Cirrosis hepática Neoplasia
Traumatismo
Aspecto
Transparente Transparente Turbio Purulento Turbio HIpoproteinemia ( síndrome Enfermedad Reumatoidea
Color
Claro Amarillento Amarillo Amarillo7marro Rojizo nefrotico) Lupus Eritematoso
Viscosidad
Elevada Elevada Disminuida Disminuida Elevada Sistémico
Leucocitos
Menor de 200 20-2000 2000-75000 Mayor100000 Hematíes
FISICO Observación del aspecto
% de PMN
Menos del25% Menos del25% Mas del 50% Mas del 75 % Según sangre
Recuento de hematíes
Proteínas g/l
15 – 30 15 – 30 Mas de 30 Mas de 30 Mas de 30
ANALISIS DE CITOLOGICO Recuento de leucocitos
Glucosa
Similar a Similar a Reducida Muy reducida Similar a glucemia
Recuento diferencial
glucemia glucemia LOS
Cristales Proteínas totales
No No Si No Si BIOQUIMICO
Gérmenes DERRAMES ADA
No No No Si No
Tinciones , cultivos.
SEROSOS MICROBIOLOGICO Demostración del bacilo
*Artrosis *Artritis por *Artritis sépticas *Traumatismos tuberculoso.Enterobacterias
*Artropatías cristales articulares y anaerobios de tubo
digestivo
postraumáticas *reumatismos *Diatesis hemorrágicas
* Artropatías inflamatorios *Artropatías
PATOLOGIAS nerviosas neuropaticas
* Artropatías *Neoplásicas Las muestras de líquidos serosos se toman con
metabólicas tubos heparinizados ( tubos con 2 – 3 gotas
*Osteonecrosis heparina sodica 1% con 10 ul de liquido y se
mezcla rápidamente )

16. ASPECTO PATOLOGIAS I. EXAMEN CITOLOGICO
Transparente.Amarillo palido.Volumen < 20 ml Normal
Transparente.Amarillo palido.Volumen > 20 ml Insuficiencia cardiaca congesti 1. RECUENTO DE HEMATIES Y LEUCOCITOS
Turbio purulento Infección bacteriana
1) Homogenizar muestra . Diluir ( muestra ), si esta turbio
Liquido Aumento del numero de leucocitos Tuberculosis
2) Llenar cámara de Neubauer
Inflamación séptica o no Enfermedades Reumatoideas 3) Observar muestra ( 10x ) se cuentan los 4 cuadrados grandes de las
Pleural Lechoso esquinas .
Derrame quiloso Quilotorax
Hemorrágico Neoplasia de pulmón
Neumonía
*Si la sangre procede de la punción traumática , Traumatismo toracico
no esta uniformemente distribuida* Infarto pulmonar
Pancreatitis
Transparente.Amarillo palido.Volumen < 50 ml Normal
Turbio Peritonitis
Empañado Infección bacteriana
Liquido Traumatismo
Retículo de la cámara de Neubauer. Dirección del contaje de leucocitos
Ulcera duodenal perforada Zona de recuento cuentan los dos leucocitos sobre las
Pericardico Verdoso Intestino perforado líneas gruesas
Presencia de bilis Colecistitis o vesícula perforada
Prueba de bilirrubina para confirmar Pancreatitis aguda 4) Calcular leucocitos / ul ( si no hay dilución )
Lechoso Obstrucción linfática
Derrame quiloso Síndrome nefrotico Nº de células contadas = NC
Hemorrágico
*Diferenciar de manchas de sangre * Neoplasia
Nº células / ul = NC / 4 x 10
Purulento Patología infecciosa
Mucinoso Seudoxantoma peritoneal 2. RECUENTO DIFERENCIAL O ESTUDIO MORFLOGICO
Pericarditis
Infección bacteriana. Tubercul. 1. concentración de células por centrifugación lenta ( 10 ‘ )
Liquido Artritis reumatoidea .LE 2. Se resuspende el sedimento celular en 1-5 ml de tampón fosfato
Hemorrágico Carcinoma
Aneurisma hemorrágico isotónico ph = 7.4
Peritoneal Lechoso Obstrucción del conducto torác 3. Tinción con colorante wrigth
Derrame quiloso 4. Recuento diferencial , se distingue el porcentaje de linfocitos,
neutrofilos , monolitos y eosinofilos
Purulento Infección bacteriana.
……………..PARA REALIZAR EL ESTUDIO DE CELULAS
TUMORALES SE UTILIZA COLORACION PAP …………….

17. II. EXAMEN QUIMICO
Análisis
Químico
LIQUIDO PLEURAL
1 – 5 ml - Proteína equipo automatizado ( HITACHI )
- ADA Pleuritis TBC > 45 U/L
Centrifugar - Glucosa equipo automatizado ( HITACHI )
Citología
Anormal < de 60 mg/dl o 40 mg/dl menor que la
Ph=7.4 glucosa serica
Disminuye exudado
Normal trasudado
CITOLOGIA PATOLOGIAS -Triglicéridos equipo automatizado ( HITACHI )
Liquido pleural lechoso( QUILURIA )
Hipercelularidad ( >1000 leucocitos/ul) Tg ( < 50 mg/dl ) Pseudoquilotorax
Liquido Enfermedades de evolución crónica
Linfocitos ( mas del 50% ) Tromboembolismo pulmonar Colesterol aumenta ( TBC o reumatoideo)
Pleural Escasez de células mesoteliales
LILIQUIDO ASCITICO
Hipercelularidad ( >10000 leucocitos/ul) Enfermedades inflamatorias agudas
Predominio de neutrofilos (Pleuroneumonias)
- Glucosa equipo automatizado ( HITACHI )
Eosinofilia Lesión pleural inespecífica Igual concentración al del suero
Células malignas Derrames neoplásicos Disminuye < 60 mg/dl :peritonitis, carcinomas, TBC
Células LE Lupus eritematoso sistémico
- Fosfatasa equipo automatizado ( HITACHI )
Raras
Alcalina Aumenta al doble en una perforación del intestino
Trasudado delgado, apéndice perforado.
Liquido Recuento > 250/uL Infección o Tumor
Recuento > 500/uL Peritonitis LILIQUIDO PERICARDICO
Pericardico Mas del 50% neutrofilos Peritonitis infecciosa piógena - Glucosa equipo automatizado ( HITACHI )
Celularidad Variable Disminuye : pericarditis bacteriana, Inflamaciones
Presencia de hematíes Tumor no sépticas ( enfermedad reumatoide, tumor )
Insuficiencia cardiaca congestiva
Eosinofilia Linfoma abdominal REACCION DE RIVALTA : colocar en un tubo
Quiste hidatídico desgarrado 5 ml de agua destilada y 0.1 ml de acido acético glacial
Pericarditis bacteriana se mezcla bien , se deja caer una gota de liquido en
Liquido Recuento leucocitario > 1000 /ul
Algunas pericarditis víricas examen.
Peritoneal Predominio de neutrofilos TRASUDADO– no hay turbidez o ligera turbidez
Recuento leucocitario > 1000/ul Síndrome infarto posmiocardico
EXUDADO – nube blancoazulada en la estela de la
Predominio de linfocitos
gota como humo de cigarrillo ( aumento de globulinas ).

18. TRASUDADO EXUDADO PROTEINA DE BENCE JONES
Características Inflamatorio Empiema • Proteína de bajo peso molecular y de sensibilidad térmica,
• Parapoteina
Aspecto Claro, trasparente Turbio Purulento
• Presente en casos de mieloma múltiple( fase Terminal ) , neoplasias óseas ,
Densidad 1,003-1,019 Superior a 1,020 osteomalacia y leucemias linfoides y mieloides crónicas.
Proteínas Menos de 3 g/dl Mas de 3g/dl
Procedimiento :
Proteína liquido/ Menor de 0.5 Mayor de 0.5
1. Se colocan en cada uno de tres tubos 5 ml de orina filtrada.
Proteína serica
2. En el primer tubo se coloca una gota de acido acetico al 33 %
Glucosa Como la serica Menos de 60mg/dl 3. En el segundo tubo se colocan dos gotas de acido acetico al 33 %
4. El tercer tubo ( blanco ) no recibe acido
LDH Menos de 200UI/L Mas de 200UI/L
5. SE calienta gradualmente en baño maria, se agitan los tubos y se observa
LDH liquido/ la aparición de turbidez.
6. 5. La proteína de BJ aparece entre 40 y 60 ª C y desaparece a mayor
Menor de 0.6 Mayor de 0.6
LDH serica temperatura
7.
pH Mayor de 7.3 Menor de7.3
***Otras proteínas precipitan si la temperatura pasa de 65ºC. Si se
Leucocitos Menor de 1.000 Mayor de Mayor de encuentran otras proteínas estas deben ser calentadas hasta ebullición
y filtradas por papel en caliente, donde quedan retenidas. La proteína
1.000 25.000 de BJ aparece nuevamente cuando el filtrado alcanza unos 50ªC
Trastornos aproximadamente***
PATOLOGIAS Enfermedades que lesionan
Hemodinamicos Se colocan 5 ml de orina en un tubo y cuidadosamente
Directamente la serosa
2ml de HCl concentrado por sus paredes. En la zona de
separación de ambos fluidos aparece un anillo de color
blanco. Puede diferenciarse de otras proteínas presentes,
<< pues la proteína de BJ da positiva la prueba después de
diluir la orina