1. MV. Muriel Gómez Sánchez Orezzoli
Subdirección de Sanidad Acuícola
8 Noviembre, 2019
Resultados de los programas e
investigaciones relacionados al RAM en
SANIPES
2. ORGANISMO NACIONAL DE SANIDAD PESQUERA
Creación y Origen
Es el Organismo Técnico Especializado adscrito al Ministerio de la
Producción, encargado de normar, supervisar y fiscalizar las
actividades de sanidad e inocuidad pesquera, acuícola y de piensos
de origen hidrobiológico, en el ámbito de su competencia.
Misión
Garantizar la sanidad e inocuidad en toda la cadena productiva de la
actividad pesquera y acuícola con el propósito de proteger la vida y la
salud pública, interviniendo mediante la vigilancia, control, habilitación y
certificación sanitaria eficaz y oportuna.
3. Objetivos estratégicos Institucionales
• Garantizar la sanidad de los recursos hidrobiológicos
priorizados
• Asegurar la inocuidad con el suficiente nivel de
protección para garantizar alimentos aptos para el
consumo humano
• Modernizar la gestión institucionales
• Gestionar el riesgo ante desastres
Plan Estratégico institucional 2019 -2022 aprobado mediante Resolución de Presidencia Ejecutiva Nº045-2019-
SANIPES
4. Marco de Intervención de SANIPES dentro
de la Cadena de Valor de Alimentos
Pesqueros y Acuícolas
5. VIGILANCIA INTEGRADA DE RAM?
Sec: PRODUCCIÓN ANIMAL Sec: ALIMENTOS
Vigilancia productos 2017 y 2018
Vigilancia moluscos planta
Vigilancia cultivo MB 2017 y 2018
Registros de Prod. Vet.
Reporte de Comercialización de
Piensos
Investigación RAM
Prevalencia M.O
Antimicrobianos
RAM
Vigilancia recursos sanidad
Estructura de la información
Recomendaciones internacionles
para selección de M.O. target
7. PLAN DE TRABAJO: SISTEMA DE
VIGILANCIA DE ENFERMEDADES DE LOS
RECURSOS HIDROBIOLÓGICOS
ENFERMEDADES NOTIFICABLES – OIE EN CRUSTÁCEOS
• Infección por el genotipo 1 del virus de la
cabeza amarilla - YHV
• Necrosis Hipodérmica y hematopoyética
Infecciosa - IHHNV
• Mionecrosis Infecciosa - IMNV
• Síndrome de Taura - TSV
• Enfermedad de las Manchas Blancas – WSSV
• Hepatopancreatitis Necrotizante - NHP
• Enfermedad de la Necrosis Hepatopancreática
Aguda - AHPND
8. UNIDADES
EPIDEMIOLÓGICAS –
LANGOSTINO DE CULTIVO
Departamento
Unidades
epidemiológicas
Distrito
Fuente de
abastecimiento
de agua
Número
de
Centros
Tumbes
Norte
Zarumilla,
Aguas
verdes,
Tumbes
Estero / Agua de
pozo
37
Centro Tumbes Estero 12
Sur 1 Corrales
Estero / Agua de
mar
10
Sur 2 Zorritos Agua de mar 4
Piura Piura Piura
Agua de Río de
Chira
1
TOTAL 64
9. METODLOGÍA
Unidad epidemiológica (UE) N° centros
Total pools / UE/
Año
Tumbes Norte 37 148
Tumbes Centro 12 48
Tumbes Sur 1 10 40
Tumbes Sur 2 04 16
Punta mero 01 32
Piura 01 32
• Muestreo dirigido: “pozas
problema”
• Métodos de diagnóstico
(Manual Acuático – OIE)
10. RESULTADOS
Enfermedades
2017 2018
Total de
muestras
Positivos
Total de
muestras
Positivos
WSSV 130 5 281 20
IHHNV 130 35 281 57
NHP 130 10 281 37
IMNV 120 0 281 0
TSV 120 3 281 0
YHV 130 0 281 0
AHPND 10 1 * 281 82**
0.4%
3.1%
0.8%
0.3%
1.0%
0.7%
2.2%
1.4%
3.4%
0.0%
0.5%
1.0%
1.5%
2.0%
2.5%
3.0%
3.5%
4.0%
WSSV IHHNV NHP TSV AHPND
PREVALENCIA ENFERMEDADES
2017 VS 2018
Prevalencia 2017 Prevalencia 2018
• 2017: IHHNV, NHP, WSSV, TSV
• 2018: IHHNV, NHP, WSSV, AHPND
(*)Resultado confirmados como negativos en el Laboratorio de Patología Acuática de la
Universidad de Arizona (Estados Unidos).
(**) Resultados en proceso de confirmación
13. Productor de piensos
(Proveedor)
Reporte de comercialización Piensos medicados
Productor
(Comprador)
Factores
determinantes
Reporte
Análisis de data
Reporte
Estrategia de
Supervisión
Objetivo
Resolución de Dirección Ejecutiva N°
115-2016-SANIPES-DE, Lineamientos
para el uso adecuado y trazabilidad de
piensos, piensos medicados y productos
veterinarios de uso en acuicultura
• Oportunidad
• Cantidad
Comunicación
Oficio Correo
SANIPES
Conocer las tendencias en la
administración de agentes
antimicrobianos a los animales
acuáticos y su posible incidencia
en la aparición de resistencias en
las bacterias de los animales
acuáticos, incluyendo bacterias
con potencial zoonótico.
Seguimiento de las
cantidades de agentes
antimicrobianos
utilizados en animales
acuáticos
14. Reporte de comercialización Piensos medicados
100.0
32.0
76.5 80.8 85.3
249.8
136.9
82.0 82.0
140.9
176.0
120.0
0.0
50.0
100.0
150.0
200.0
250.0
300.0
Enero Febrero Marzo Abril Mayo Junio Julio Agosto Setiembre Octubre Noviembre Diciembre
Venta Empresa A 100.0 32.0 76.5 80.8 85.3 249.8 130.0 82.0 72.0 120.0 176 120 1324.4
Venta Empresa B 0 0 0 0 0 0 6.9 0 10 20.9 0 0 37.8
TOTAL 100 32 76.5 80.825 85.25 249.75 136.9 82 82 140.9 176 120 1362.13
ATM Vendido 0.30 0.10 0.23 0.24 0.26 0.75 0.40 0.25 0.24 0.40 0.53 0.36 4.06
Figura. Reporte de venta total de piensos medicados destinados al cultivo de langostino. Año 2018 (Toneladas)
TOTAL
15. 0
50
100
150
200
250
300
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
Enero Febrero Marzo Abril Mayo Junio Julio Agosto Setiembre Octubre Noviembre Diciembre
Prevalencia
Prevalencia NHP Venta
Cantidaddepienso
Figura. Cantidad reportada de piensos medicados vendidos para cultivo de langostinos (Toneladas) y prevalencia de NHP mensual. 2018.
16. Colecta de datos de los agentes antimicrobianos destinados a ser
utilizados en los animales acuáticos (crustáceos)
2016 SEMESTRE I SEMESTRE II
TOTAL
(TON) Kilogramos Magnitud UNIDAD
cantidad de antibio
g/kg
cantidad de antibio
kg/kg
cantidad total de
antibio (kg)
324.78 324.78 324,780.00 3200 mg/kg 3.20 0.0032 1,039.30
90 155.01 245.01 245,010.00 3000 mg/kg 3.00 0.0030 735.03
258.85 28.35 287.2 287,200.00 3000 mg/kg 3.00 0.0030 861.60
2,635.93 total
2017 SEMESTRE I SEMESTRE II TOTAL
395.22 107.58 502.8 502,800.00 3000 mg/kg 3.00 0.0030 1,508.40
9.5 2.5 12 12,000.00 3000 mg/kg 3.00 0.0030 36.00
1,544.40 total
2018 SEMESTRE I SEMESTRE II
TOTAL
(TON) Kilogramos Magnitud UNIDAD
cantidad de antibio
g/kg
cantidad de antibio
kg/kg
cantidad total de
antibio (kg)
607.325 271 878.325 878,325.00 3000 mg/kg 3.00 0.0030 2,634.98
21 60 81 81,000.00 3000 mg/kg 3.00 0.0030 243.00
2,877.98 total
CONCENTRACIÓN del antibioCantidad de alimentos
Venta
P-VIT009N15NCMD-SANIPES
P-VIT008N15NCMD-SANIPES
P-VIT008N15NCMD-SANIPES
P-ALI69N11NCCM-SANIPES
P-VIT009N15NCMD-SANIPES
P-VIT008N15NCMD-SANIPES
Venta
Cantidad de alimentos CONCENTRACIÓN del antibio
P-VIT009N15NCMD-SANIPES
18. Objetivo general: Determinar la prevalencia y los patrones de
susceptibilidad antimicrobiana de cepas bacteriana con potencial
patogénico aisladas de camarones blancos (P. vannamei) provenientes
de la acuicultura del departamento de Tumbes, Perú, durante el último
bimestre del año 2018.
Investigación: Determinación de la prevalencia y susceptibilidad antimicrobiana de microorganismos bacterianos con potencial
patogénico, aislados en camarón blanco (P. vannamei) de cultivo del departamento de Tumbes, Perú. (AI-002-SDIP/SDSNA-2018)
Finalidad: Contribuir, con evidencia científica y conocimiento, al fortalecimiento de
los mecanismos aplicables para garantizar la inocuidad de los productos
hidrobiológicos derivados de langostinos de cultivo y destinados al consumo
humano, minimizando con ello los riesgos de resistencia antibacteriana y casos de
enfermedades transmitidas por alimentos (ETAs) relacionados al consumo de
estos alimentos
Coordinación
con laboratorio
SANIPES
19. Div.
Cantidad
de centros
Hectáreas de cultivo Producción anual
estimada 2018 (TM) %Total por Div. % Promedio
Sur 1 y 2 15 1,087.83 20% 72.52 (±58.14) 11,417.6 35%
Centro 11 1,048.17 19% 95.29 (±62.56) 3,801.3 12%
Norte 37 3,363.09 61% 90.89 (±76.43) 16,969.2 53%
TOTAL 63 5,502.9 100% 29,903.80 100%
Div. Norte
Div. Centro
Div. Sur II
Div. Sur I
20. N° Dominio Familia Genero Especie
1 Bacteria Enterobacteriaceae Escherichia Escherichia coli
2 Bacteria Enterobacteriaceae Salmonella sp.
3 Bacteria Vibrionaceae Vibrio Vibrio cholerae
4 Bacteria Vibrionaceae Vibrio Vibrio parahaemolyticus
Tabla. Relación de patógenos objetivo
- Adecuada estratificación
- Distribución del fenómeno
- LOD de método
Characterizing populations of
individuals using pooled
samples, Caudill, Samuel (2010)
22. Div. Centro Acuícola n
Norte Borsalino 6
Boton de Oro 6
Campo Cerro Negro 6
Elanza, Amazonas,
Hualta
6
Industrial 12
La Fragata 18
Lan Karina 14
Paracas 6
San Miguel I y II 6
Santa Isabel 12
Silma 6
11 98
Centro ATISA 12
Ccoral 12
EXAPAL 6
La Bocana 12
Macori 8
Tumbes 24
6 74
Sur Domingo Rodas 24
Feguza 6
Huacura 13
Los ceibos 8
Mar Norte-Campana 6
Palo Santo 3
San Francisco-Santa
Elena
8
7 68
TOTAL 24 240
06/12/2018 17/01/201932 días
23. N° Ensayo Tipo Método LOD # ensayos
1
Análisis microbiológico y bioquímico
para la detección de Vibrio cholerae
Cualitativa
BAM ONLINE, FDA-CFSAN, CAP. 9 A-B 1-5 c, excepto el uso del antisuero O139, 8th Edition,
Revisión A, 1998. Reescrito y revisado mayo 2004
Presencia/25g 240
2
Análisis microbiológico y bioquímico
para la detección de
Vibrio parahaemolyticus
Cualitativa ICMSF 2da. Ed. Vol.1, Parte II, pág.211-216, excepto la prueba de hemólisis en el agar Wagatsuma Presencia/25g
240
Semi
cuantitativo
FDA/BAM Online (Th Ed. Rev. A./ 1998. Mayo 2004 – Cahpther 9, A-B1 a-c (Tabla 2)/ 2004/ Vibrio.
Other Vibrios. Vibrio Parahaemolyticus.
< 3.0 NMP/g
3
Análisis microbiológico de
E. coli
Semi
cuantitativo
ISO 16649-3. (Excepto 4.1; 9.1). 2015. Microbiology of the food chain - Horizontal method for the
enumeration of beta glucuronidase-positive Escherichia coli - Part 3: Detection and most probable
number technique using 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-B-D-glucuronide.(Excepto 4.1, 9.1, 10.1)
0 NMP/g 240
4
Análisis microbiológico de
Salmonella sp.
Cualitativa
ISO 6579-1:2017 (Excepto ítem 9.3.3; 9.4.3 y Anexo D). Microbiology of the food chain -- Horizontal
method for the detection, enumeration and serotyping of Salmonella -- Part 1: Detection of
Salmonella spp.
Presencia/25g 240
TOTAL 960
Evaluación de resistencia a
antimicrobianos SANIPES
Tabla. Relación de métodos de ensayo a aplicar
24. División n (Pool 10) n
V. parahaemolyticus V. cholerae
(+) % (+) P (Cl 0.95) (+) % (+) P (Cl 0.95)
Centro 74 740 46 62.16% 0.0926 (±0.01352) 9.26% 1 1.35% 0.00136 (±0.00135) 0.14%
Sur 68 680 15 22.06% 0.02461 (±0.00629) 2.46% 2 2.94% 0.00298 (±0.00211) 0.30%
Norte 98 980 16 16.33% 0.01766 (±0.00438) 1.77% 1 1.02% 0.00103 (±0.00102) 0.10%
TOTAL 240 2400 77 32.08% 0.038 (±0.00426) 3.80% 4 1.67% 0.00168 (±0.00084) 0.168%
25. División n (Pool 10) n
V. parahaemolyticus V. cholerae
(+) % (+) P (Cl 0.95) (+) % (+) P (Cl 0.95)
Centro 74 740 46 62.16% 0.0926 (±0.01352) 9.26% 1 1.35% 0.00136 (±0.00135) 0.14%
Sur 68 680 15 22.06% 0.02461 (±0.00629) 2.46% 2 2.94% 0.00298 (±0.00211) 0.30%
Norte 98 980 16 16.33% 0.01766 (±0.00438) 1.77% 1 1.02% 0.00103 (±0.00102) 0.10%
TOTAL 240 2400 77 32.08% 0.038 (±0.00426) 3.80% 4 1.67% 0.00168 (±0.00084) 0.168%
26. División n (Pool 10) n
E. coli Salmonella sp.
(+) % (+) P (Cl 0.95) (+) % (+) P (Cl 0.95)
Centro 74 740 11 14.86% 0.01596 (±0.00478) 1.60% 0 0.00% 0 0.00%
Sur 68 680 5 7.35% 0.00761 (±0.00339) 0.76% 0 0.00% 0 0.00%
Norte 98 980 14 14.29% 0.01529 (±0.00406) 1.53% 0 0.00% 0 0.00%
TOTAL 240 2400 30 12.50% 0.01326 (±0.00241) 1.33% 0 0.00% 0 0.00%
29. Antibiótico Grupo Abreviatura
Concentración
(ug)
(Vibrio spp.)
DD recom. ug S I men I max R Referencia
Fosfomicina Fosfonatos FOS 50 50 - - - - - -
Amoxicilina Betalactamicos AML 25 25 20/10 18 17 14 13 clsi Human
Cloranfenicol Fenicol C 30 30 30 18 17 13 12 clsi Human
Ácido oxolinico Quinolonas OA 2 2 2 11 - - 10
Eritromicina Macrolido E 15 15 - 21 20 17 16
Sulfametoxazol/Trimetropim Diaminopirimidinas SXT 25 25 1.25/23.75 16 15 10.9 10.1 clsi Human
Flumequina Fluoroquinolonas UB 30 30 - 20 19 17 16
Florfenicol Fenicol FFC 30 30 - 19 18 15 14
Ácido 3-aminofenilborónico (Composto) APB 300 300 - - - - - -
Oxitetraciclina Tetraciclinas OT 30 30 - 19 18 15 14
Tetraciclina Tetraciclinas TE 30 30 30 15 14 11.9 12.1 clsi Human
Resultados de la Evaluación de sensibilidad por disco difusión
(*) TSB (usualmente antes de la 18 horas) y superficie seca de las placas con agar Müeller - Hinton.
30.
31. Div. n (+) nR (%)
Antibióticos
FOS 50 AML 25 C 30 OA 2 E 15 SXT 25 UB 30 FFC 30 APB 300 OT 30 TE 30
R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R%
V. parahaemolyticus
Norte 74 16 13(81%) - - - 12 4 75% 0 0 0% 0 0 0% 14 1 88% 0 1 0% 0 2 0% 1 0 6% - - - 5 7 31% 5 7 31%
Centro 68 46 37(80%) - - - 35 11 76% 0 0 0% 0 0 0% 7 37 15% 0 0 0% 0 2 0% 0 0 0% - - - 1 29 2% 0 3 0%
Sur 98 15 11(73%) - - - 7 5 47% 0 0 0% 0 0 0% 1 12 7% 0 0 0% 0 0 0% 0 0 0% - - - 4 8 27% 1 3 7%
TOTAL 240 77 61(79%) - - - 54 20 70% 0 0 0% 0 0 0% 9 63 12% 0 1 0% 0 4 0% 0 0 0% - - - 10 44 13% 6 6 8%
32. Div. n (+) nR (%)
Antibioticos
FOS 50 AML 25 C 30 OA 2 E 15 SXT 25 UB 30 FFC 30 APB 300 OT 30 TE 30
R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R%
E.coli
Norte 74 14 1(50%) - - - 0 1 0% 2 0 14% 0 0 0% 14 0 100% 0 0 0% 0 1 0% 1 0 7% - - - 2 3 14% 2 0 14%
Centro 68 11 0(0%) - - - 2 0 18% 0 2 0% 0 0 0% 11 0 100% 1 1 9% 2 0 18% 2 0 18% - - - 5 5 45% 5 0 45%
Sur 98 5 1(100%) - - - 0 0 0% 0 0 0% 0 0 0% 4 1 80% 0 0 0% 0 0 0% 0 0 0% - - - 0 1 0% 0 0 0%
TOTAL 240 30 2(50%) - - - 2 0 7% 2 2 7% 0 0 0% 29 1 97% 1 1 3% 2 1 7% 3 0 10% - - - 6 9 20% 7 0 23%
33. Div. n (+) nR (%)
Antibióticos
FOS 50 AML 25 C 30 OA 2 E 15 SXT 25 UB 30 FFC 30 APB 300 OT 30 TE 30
R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R% R I R%
V. cholerae
Norte 74 2 1(50%) - - - 1 0 50% 0 0 0% 0 0 0% 0 0 0% 0 0 0% 0 0 0% 0 0 0% - - - 0 0 0% 0 0 0%
Centro 68 1 0(0%) - - - 0 0 0% 0 0 0% 0 0 0% 0 0 0% 0 0 0% 0 0 0% 0 0 0% - - - 0 0 0% 0 0 0%
Sur 98 1 1(100%) - - - 1 0 100% 0 0 0% 0 0 0% 1 0 100% 0 0 0% 0 0 0% 0 0 0% - - - 1 0
100
%
1 0 100%
TOTAL 240 4 2(50%) - - - 2 0 50% 0 0 0% 0 0 0% 1 0 25% 0 0 0% 0 0 0% 0 0 0% - - - 1 0 25% 1 0 25%
34. Conclusiones preliminares:
• Prevalencias de M.O.: Como era de esperarse los vibrios fueron los M.O. que mostraron mayor prevalencia y una distribución casi
uniforme en toda la población de estudio (V. parahaemolyticus = 0.038 ±0.00426, CL 0.95). Esto mantiene relación con las
condiciones favorables de crecimiento del medio en donde se desarrollan los langostinos.
• Los resultados deben servir para priorizar la selección de estos M.O. como Target para el desarrollo de estudios y controles
posteriores. Si bien desde una perspectiva integral estos M.O. no serían la primera opcion para iniciar una vigilancia integrada,
estos resultados señalan que en algunos casos se deberán hacer actividades específicas para algunos M.O.
• De los métodos aplicados: Los resultados obtenidos provienen de métodos de evaluación de sensibilidad sencillos y recientemente
implementados en los labs de microbiología de SANIPES, en coordinación con otros organismos con mayor experiencia en su
ejecución. Ciertas evidencias sostienen el adecuado performance de los métodos de SANIPES: (i) las evaluaciones de sensibilidad
ejecutadas en cepas de E.coli para Eritromicina (naturalmente resistentes) resultaron concordantes con lo esperado y (ii) el
desarrollo de pruebas en paralelo por parte de SANIPES y INS para las mismas cepas aisladas han demostrado resultados también
concordantes.
• De los patrones de sensibilidad encontrados: Los resultados muestran que de los 3 M.O. (V.p., V.c., E.coli) aislados de las muestras
de langostino, se encontraron porcentajes importantes de cepas resistentes (V.p. OT=13%; TE=8%) y con sensibilidad media (V.p.
OT=57.2%; TE=16.9%) las Tetraciclinas (OT, TE). Tomando como referencia al V.p. esta situación se observó con mayor intensidad la
división norte. Estos resultados mantienen una relación directa con los ATM suministrados en los centros de cultivo. Esto evidencia
que la actividad acuícola contribuye a que se genera RAM, por ahora en una magnitud mediana, pero que a la larga podría
comprometer completamente la eficacia de estos ATMs.
35. Proyecto de investigación: Persistencia de Oxitetraciclina en sedimentos de cultivo de langostino blanco
Litopenaeus vannamei y su efecto en bacterias sulfato reductoras (BSR)”
Objetivo General
Evaluar la persistencia de Oxitetraciclina en sedimentos de cultivo de langostino blanco Penaeus vannamei y su efecto en
bacterias sulfato-reductoras.
Objetivos Específicos
Determinar la concentración y persistencia de oxitetraciclina (OTC) en sedimentos de cultivo de langostino blanco.
Determinar el número de bacterias sulfato reductoras (BSR) en sedimentos de cultivo de langostino blanco.
Determinar los parámetros químicos: sulfuro de hidrógeno (H2S), oxígeno disuelto (OD) y amoniaco (NH3), en la columna de agua
e interfase agua-sedimento del cultivo de langostino blanco.
Determinar los parámetros químicos: sulfato (SO4), sulfuro de hidrógeno (H2S) en sedimento de cultivo de langostino blanco.
Establecer las relaciones entre las diferentes variables consideradas
36. Tabla 12. Contenido de oxitetraciclina y vida media (T 1/2) reportado por diferentes autores
Concentración
máxima
reportada
Característica de la muestra Periodo de
evaluación
Vida
media
(T½)
Referencia
7640 mg/Kg de
materia seca Sedimento de cultivos de trucha
arcoiris bajo condiciones de
laboratorio (Estudio piloto)
2 semanas
después de la
medicación
10 semanas Jacobsen y
Berglind,
1988
4.9 mg/Kg de
materia seca
Sedimento de cultivos de trucha
arcoiris (estudio de campo)
12 semanas
después de la
medicación
nr Jacobsen y
Berglind,
1988
nr Sedimento cultivo de salmón con
capa superficial de oxitetraciclina
cubierta inmediatamente con 4 cm
adicionales de sedimento
(Condiciones de laboratorio)
nr 64 días Samuelsen,
1989
nr Sedimento de cultivos de salmón
(estudio de campo)
nr 32 ± 3 días Samuelsen,
1989
(a) = 0.1 µg g-1
(b) = 2.0 µg g-1
Sedimento de cultivos de salmón
(estudio de campo)
nr (a) = 9 días
(b)= 419
días
Bjorklund et
al., 1990
3.98 µg g-1
Sedimento de cultivo de langostino
blanco
20 días luego
de recibir el
tratamiento
nr Montoya et
al.,2003
176 ng g-1
Sedimento de la Bahía de Hailing,
valor máximo encontrado en el
cuerpo receptor
nr nr Chen et al.,
2015
1516 ng g-1
Estanques de agua dulce 59 días
después de la
última
administración
de
oxitetraciclina
nr Nepejchalová
et al., 2008
1515 ng g-1
Zona sur del mar Báltico, valor
máximo encontrado en el cuerpo
receptor. Resultados
correspondientes a monitoreos entre
2011 y 2012
nr nr Siedlewicz et
al., 2017
7.34 mg/Kg Sedimentos de cultivo de langostino
blanco
36 días post-
tratamiento
115 días En este
trabajo
nr = No reportado.
La vida media (T½) de un
antibiótico es el tiempo
requerido para reducir a la mitad
la cantidad de droga presente en
un compartimento (Craig y
Stitzel, 1990)
Diseño para la toma de muestras
Toma de muestras
RESULTADOS
PRELIMINARES
37. Tabla 35. Correlación entre la población de BSR con parámetros ambientales y contenido de oxitetraciclina en sedimentos
Parámetros ambientales Oxitetraciclina
(mg/Kg)
Materia
orgánica
(%)
pH Sulfuro de
hidrógeno
(ppm)
Sulfato
(ppm)
BSR
(ufc/g)* –
Escenario 1
Correlación
de Pearson
-0.229 0.003 0.166 0.100 0.133
Sig.
(Bilateral)
0.179 0.988 0.332 0.563 0.439
N 36 36 36 36 36
BSR
(ufc/g)* –
Escenario 2
Correlación
de Pearson
-0.227 -0.110 -0.202 0.000 0.040
Sig.
(Bilateral)
0.478 0.734 0.530 1.00 0.902
N 12 12 12 12 12
*
Correlación Rho de Spearman
Tabla 41. Comparaciones entre los parámetros ambientales estudiadas para los 2 tipos de estanque establecidos.
Parámetro Estanque Tipo A Estanque tipo B
Oxitetraciclina (mg/Kg) 5.95 ± 0.46 -
BSR (ufc/g) 12.5 ± 27.29a
40.00 ± 63.56b
Materia orgánica (%) 3.02 ± 0.27a
2.86 ± 0.30b
p H 8.66 ± 0.34a
8.39 ± 0.36b
Sulfuro de hidrógeno (ppm) 0.071 ± 0.023a
0.080 ± 0.027a
Sulfato (ppm) 214.78 ± 10.90a
209.33 ± 9.59b
Sulfuro de hidrógeno (mg/l) –
Agua (Interfase agua sedimento)
0.062 ± 0.017a
0.088 ± 0.013b
Los datos se expresan en media ± desviación estándar. Superíndices distintos indican diferencia significativa. (p<0.05). – Ausencia.
38. Conclusiones preliminares
• Existe una fuerte correlación entre el contenido de oxitetraciclina y iones sulfato presentes en el sedimento, una vez que, por
efecto del pH alcalino, el antibiótico sufre una desprotonación cargándola negativamente y a través del intercambio iónico,
esta pueda inactivarse como un antibacteriano.
• Pese a encontrarse niveles considerables de oxitetraciclina en los sedimentos, también pudo cuantificarse poblaciones de BSR,
las cuales no tuvieron una distribución uniforme en los perfiles de sedimento evaluados, sin embargo, guardaron una baja
correlación no significativa con la oxitetraciclina. Esto puede deberse a la inactivación antibiótica antes señalada debido a la
presencia de iones sulfato y p H alcalino del medio.
39. Conclusiones Generales
• Primeras iniciativas de SANIPES que contribuyen a comprender inicialmente la situación de la RAM en los
recursos y productos hidrobiológicos.
• Se espera iniciar con el diseño e implementación de las estrategias adecuadas de control o con el
ordenamiento de los mecanismos que actualmente se encuentran implementados, bajo las
recomendaciones de organismos internacionales competentes.
• Es necesario coordinar y hacer sinergia en las estrategias integrales a nivel nacional que se vienen
desarrollando en el Marco del Plan Multisectorial para enfrentar la Resistencia a los antimicrobianos de
manera multisectorial.
• Si bien los resultados mostrados muestran evidencias sobre ciertos fenómenos relacionados con la RAM, los
ATM de uso en acuicultura y la prevalencia de patógenos de importancia para la inocuidad y la sanidad, es
necesario complementar esta información para obtener un panorama completo, incluyendo todos los
elementos de la triada epidemiológica (huésped, ambiente, patógenos).
• Se requiere mayor investigación provenientes de la academia o de otros organismos públicos y privados, de
manera coordinada y bajo los lineamientos aplicables a estos estudios, esperando que en conjunto, todos los
resultados puedan contribuir realmente a la lucha contra la RAM.