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Procesamiento de
muestras para estudio
inmunohistoquímico
cromogénico
Santiago Sepúlveda
Jorge Gatica
Objetivos
 Conservar la inmunorreactividad de células y
tejidos
 Conservar la localización antigénica.
 No provocar interferencia con los
procedimientos inmunohistoquímica (IHQ)
 Preservar la morfología del tejido
Tipos de muestras para estudio
IHQ
 CÉLULAS DE CULTIVO
 CÉLULAS EN SUSPENSIÓN
 FROTIS CITOLÓGICOS
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 CORTES EN CRIÓSTATO
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Procesamiento de muestras
incluidas en parafina para IHQ
cromogénica
ETAPAS A CONSIDERAR:
 FIJACIÓN
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 CORTE Y MONTAJE
 RECUPERACION DE INMUNOREACTIVIDAD
 BLOQUEO DE PEROXIDASA ENDOGENA Y
REACTIVIDAD INESPECIFICA
 INCUBACION CON ANTICUERPOS Y SISTEMA
DE DETECCIÓN
Fijación
 Detener los procesos de autólisis.
Especialmente la acción de proteasas y
nucleasas
 Conservar la cito-histoarquitectura de la
muestra similar a su estado “in vivo”.
 Preparar al tejido para los procedimientos
posteriores
 Anti-microbiano
Fijación con formaldehido
 Fijador más utilizado  Formalina neutra
10% pH 7,0
 La fijación involucra una interacción con
proteínas, específicamente con aminoácidos
básicos, con formación de puentes
metilénicos.
 Provoca enmascaramiento de antígenos
(Ag.), perjudicando la inmunotinción.
 Requiere de recuperación antigénica.
Aclaramiento e impregnación en
parafina
 Agente “aclarante” en buen estado
 Temperatura de las parafinas de
impregnación entre 56 -62°C.
 Tiempo de impregnación entre 30 –45
minutos en cada parafina.
Corte y montaje.
 Grosor recomendado:4 –5 µm.
 Montaje en portaobjetos previamente
silanizados.
 Evitar cortes con melladuras, irregularidades,
gruesos o desgarrados.
Recuperación de
inmunoreactividad
 El formaldehido y otros reactivos forman
enlaces cruzados intra e inter-proteicos que
enmascaran a los epítopos originando falsos
negativos.
 Los métodos de recuperación están
designados para romper lo enlaces cruzados,
desenmascarando los epítopos y
aumentando la intensidad de las
inmunotinciones.
Recuperación antigénica
mediante calor (HIER)
 El más utilizado
 Incubación de placas en buffer (citrato pH 6,0
o EDTA pH 8,0)
 Llevar a temperatura de 90°C aprox. con
fuente de calor (sea vaporera, olla a presión o
microondas) por un tiempo aprox. de 25 min.
Bloqueo de peroxidasa endógena
y de reactividad inespecífica
 Necesarios para resultados óptimos en IHQ
cromogénica. Evitan falsos positivos.
 Bloqueo de peroxidasa endógena 3% H₂O₂
NECESARIA SI SE USA HRP COMO ENZIMA
EN LA REACCIÓN CROMOGÉNICA.
 Bloqueo de reactividad inespecífica 
PBS/BSA al 2,5%.
Incubación con Ac. primario
 Anticuerpo (Ac.) especifico para el antígeno a
estudiar.
 Debe ser compatible con el sistema de
detección a utilizar posteriormente.
 En ocasiones, puede tener conjugado el
sistema de detección.
Demostración de reacción Ag-Ac
mediante uso de enzimas
 La enzima está activa
 Va conjugada al componente del penúltimo
paso de la inmunotinción
 La actividad de la enzima se revela mediante
un sustrato y un cromógeno.
Incubación con anticuerpo
secundario
 Reconoce al anticuerpo primario
 Suele estar conjugado con biotina, con el
sistema de detección o utilizarse como
puente.
Sistema de amplificación
 Amplifica la señal de la reacción ag.-ac.
Algunos ejemplos…
Pleural based thymoma - Cytokeratin AE1/AE3 immunostain - Case 282,
by Yale Rosen bajo la licencia CC BY-SA. Parámetros de contraste y brillo
modificados del original.
Lymphangioleiomyomatosis (LAM) - HMB45 immunostain - Case 261,
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Procedimientos muestras IHQ

  • 1. Procesamiento de muestras para estudio inmunohistoquímico cromogénico Santiago Sepúlveda Jorge Gatica
  • 2. Objetivos  Conservar la inmunorreactividad de células y tejidos  Conservar la localización antigénica.  No provocar interferencia con los procedimientos inmunohistoquímica (IHQ)  Preservar la morfología del tejido
  • 3. Tipos de muestras para estudio IHQ  CÉLULAS DE CULTIVO  CÉLULAS EN SUSPENSIÓN  FROTIS CITOLÓGICOS  FROTIS SANGUÍNEOS  CORTES EN CRIÓSTATO  CORTES EN PARAFINA  CORTES ULTRAMICRÓTOMO
  • 4. Procesamiento de muestras incluidas en parafina para IHQ cromogénica ETAPAS A CONSIDERAR:  FIJACIÓN  IMPREGNACIÓN / INCLUSIÓN  CORTE Y MONTAJE  RECUPERACION DE INMUNOREACTIVIDAD  BLOQUEO DE PEROXIDASA ENDOGENA Y REACTIVIDAD INESPECIFICA  INCUBACION CON ANTICUERPOS Y SISTEMA DE DETECCIÓN
  • 5. Fijación  Detener los procesos de autólisis. Especialmente la acción de proteasas y nucleasas  Conservar la cito-histoarquitectura de la muestra similar a su estado “in vivo”.  Preparar al tejido para los procedimientos posteriores  Anti-microbiano
  • 6. Fijación con formaldehido  Fijador más utilizado  Formalina neutra 10% pH 7,0  La fijación involucra una interacción con proteínas, específicamente con aminoácidos básicos, con formación de puentes metilénicos.  Provoca enmascaramiento de antígenos (Ag.), perjudicando la inmunotinción.  Requiere de recuperación antigénica.
  • 7. Aclaramiento e impregnación en parafina  Agente “aclarante” en buen estado  Temperatura de las parafinas de impregnación entre 56 -62°C.  Tiempo de impregnación entre 30 –45 minutos en cada parafina.
  • 8. Corte y montaje.  Grosor recomendado:4 –5 µm.  Montaje en portaobjetos previamente silanizados.  Evitar cortes con melladuras, irregularidades, gruesos o desgarrados.
  • 9. Recuperación de inmunoreactividad  El formaldehido y otros reactivos forman enlaces cruzados intra e inter-proteicos que enmascaran a los epítopos originando falsos negativos.  Los métodos de recuperación están designados para romper lo enlaces cruzados, desenmascarando los epítopos y aumentando la intensidad de las inmunotinciones.
  • 10. Recuperación antigénica mediante calor (HIER)  El más utilizado  Incubación de placas en buffer (citrato pH 6,0 o EDTA pH 8,0)  Llevar a temperatura de 90°C aprox. con fuente de calor (sea vaporera, olla a presión o microondas) por un tiempo aprox. de 25 min.
  • 11. Bloqueo de peroxidasa endógena y de reactividad inespecífica  Necesarios para resultados óptimos en IHQ cromogénica. Evitan falsos positivos.  Bloqueo de peroxidasa endógena 3% H₂O₂ NECESARIA SI SE USA HRP COMO ENZIMA EN LA REACCIÓN CROMOGÉNICA.  Bloqueo de reactividad inespecífica  PBS/BSA al 2,5%.
  • 12. Incubación con Ac. primario  Anticuerpo (Ac.) especifico para el antígeno a estudiar.  Debe ser compatible con el sistema de detección a utilizar posteriormente.  En ocasiones, puede tener conjugado el sistema de detección.
  • 13. Demostración de reacción Ag-Ac mediante uso de enzimas  La enzima está activa  Va conjugada al componente del penúltimo paso de la inmunotinción  La actividad de la enzima se revela mediante un sustrato y un cromógeno.
  • 14. Incubación con anticuerpo secundario  Reconoce al anticuerpo primario  Suele estar conjugado con biotina, con el sistema de detección o utilizarse como puente.
  • 15. Sistema de amplificación  Amplifica la señal de la reacción ag.-ac.
  • 17. Pleural based thymoma - Cytokeratin AE1/AE3 immunostain - Case 282, by Yale Rosen bajo la licencia CC BY-SA. Parámetros de contraste y brillo modificados del original.
  • 18. Lymphangioleiomyomatosis (LAM) - HMB45 immunostain - Case 261, by Yael Rosen, bajo la licencia CC BY-SA 4.0. Parámetros de brillo, contraste y saturación modificados del original.