1. EVALUACIÓN DE LA OMNIVORÍA EN Chiton
granosus Y SUS IMPLICANCIAS SOBRE LA
ESTRUCTURA TRÓFICA DE LA COMUNIDAD
INTERMAREAL.
Por
YURI Y. CID DÍAZ
Profesor guía: Dr. Patricio A. Camus,
Coprofesores Guías: Dr. Cristian W. Cáceres & Dr. Pablo Sabat
Concepción, 2009
2. Introducción
Trama trófica: Relación depredador – presa.
Flujo de energía: Transporte de energía (William y Martínez 2004).
Invertebrados Funcionamiento Intermareal.
Vista dorsal de Chiton granosus (Frembly
1827).
Vista ventral y rádula de C. granosus.
Distribución y Abundancia
(Santelices et al. 1985, Otaíza 1986).
Clase Polyplacophora:
8 placas imbricadas
Rádula docoglosa (Steneck et al.
1982, Raffaelli 1985).
Cavidad bucal: órgano subradular.
3. Descripción : Herbívoro (Santelices 1986).
Consumo de invertebrados: Fenómeno descrito como casual (Santelices et al. 1985,
Wootton 1994).
4. Potencial de omnivoría para
Puede ser definida como:
Omnivoría trófica Omnivoría fisiológica
Omnivoría fisiológica
Forma de alimentación
Estudios Fisiológicos (Ejemplo: actividad enzimática
Asimilación de alimento
Chiton carnívoro y omnívoros (Latyshev et al. 2003).
Consumidor de presas de más de un
nivel trófico (Pimm y Lawton 1978).
Organismo que come plantas
y animales (Odum 2006).
Placiphorella borealijaponica Lepidozona albrechti Mopalia retifera
5. Evaluación de actividad enzimática en el digestivo de C.
granosus (Camus et al. 2009).
Flexibilidad digestiva Principal obtención de energía
(Sabat et al. 2005)
Modulación adaptativa Actividad enzimática y
transporte de nutrientes
(Sabat et al. 1998)
7. Omnívoro fisiológico
C. granosus
Alimento Animal
J. cirratus (Darwin 1954)
P. purpuratus (Lamarck 1819)
Alimento algal
G. lingulatum (Kützing 1868)
Evaluación
Actividad de Tripsina y
N-aminopeptidasa
Asimilación
8. Hipótesis
Hipótesis general
Chiton granosus (Frembly, 1827) es un omnívoro fisiológico.
Predicciones
1. C. granosus asimila alimento animal (J. cirratus y P. purpuratus).
2. C. granosus tiene actividad de Tripsina y N-aminopeptidasa al
consumir alimento animal.
3. C. granosus presentará mayor actividad de Tripsina y
N-aminopeptidasa con J. cirratus que P. purpuratus de acuerdo a
sus patrones naturales de consumo.
9. Objetivos
Evaluar omnivoría fisiológica en C. granosus a través de la
actividad de Tripsina, N-aminopeptidasa y mediante la eficiencia
de asimilación.
Evaluar implicancias de la omnivoría de C. granosus para la
estructura y organización de la trama trófica.
10. Recolección: Invierno – Primavera del
2008.
Identificación: Aldea y Valdovinos
(2005).
Área de muestreo
Métodos
Playa de Cocholgüe de la región del Bío Bío, área de muestreo para los
individuos de la especie C. granosus
11. Experimentos preliminares
Identificación de ítemes consumidos
en el tracto digestivo de C. granosus
Evaluación de cantidad de alimento
apropiada para experimento de
eficiencia de asimilación
Comparación con estudio anterior (Camus et al. 2008)
Selección de tipo de alimento
Rango donde mejor se detecta lo que es
ingerido con lo que es defecado
Promedio ± error estándar
12. Evaluación de durabilidad del alimento
Tiempo de evacuación del tracto
digestivo de C. granosus
Descartar pérdida de alimento por descomposición
Permite establecer tiempos de
alimentación.
(Franz 1990)
N=24, Promedio ± error estándar
14. 24 individuos
(8 por cada alimento)
Masa inicial y final
Concha:
Largo y longitud
1 individuo por
acuario
(18,5 x 12,5 cm)
4 días de aclimatación
- Temperatura ambiente
- Luz
- Aireación constante.
Agar agar
J. cirratus
P. purpuratus
G. limgulatum
3 g de cada alimento
por día
Eficiencia Asimilación
de alimento
Periodo de Evaluación: 6 días
Retiro de alimento: 12 h
Tasa de consumo de
alimento (g d-1)
Elaboración de alimento
15. Actividad enzimática
Consumo de alimento (g) = alimento ofrecido – alimento recuperado
Eficiencia de Asimilación (EA) = [(ingesta - egesta) / ingesta] x 100 (Arrontes 1989)
(García – Carreño et al. 2003)
16. 750 mL de 0,1 mM de BAPNA
+
50mM de TRIS-HCl a pH 7,5
y 20mM de buffer CaCl2
Unidad de actividad = [(Abs410 min-1) x mL de mezcla de la reacción] / 8800 x mg
Donde 8800: Coeficiente de extinción molar de para-nitroanilida del sustrato BAPNA.
Reacción
Mantenida por 10 min
a 30º C
Leída en
espectrofotómetro
a 410 nm
Tejido epitelial:
Involucrado en la
absorción de productos
de la digestión
Los valores obtenidos serán presentados en UI mg-1, donde UI: es la cantidad de enzima capaz
de convertir un 1µmol de sustrato en producto.
Análisis de la Tripsina
(García – Carreño et al. 2003)
17. Análisis de la N-aminopeptidasa
100 µL de homgenizado
de tejido
Solución NaCl
0,9%
2,04 mmol L-1 L-alanina-p-nitroanilide en 0,1
mol L-1 NaH2PO4 / Na2HPO4, pH 7
Reacción
Mantenida por 10 min
a 30º C
3 mL de ácido acético frío 2 N
Leída en
espectrofotómetro
a 410 nm
Los valores obtenidos serán presentados en UI mg-1 de tejido del intestino, donde UI: es la
cantidad de enzima capaz de convertir un 1µmol de sustrato en producto.
(Gacía – Carreño et al. 2003)
18. Análisis estadísticos
Las pruebas estadísticas fueron desarrolladas en el programa Statistica 7.0.
Eficiencia de asimilación
Para evaluar la eficiencia de asimilación de tres tipos de alimento (J. cirratus, G. lingulatum y
P. purpuratus) (factor fijo) en C. granosus se utilizó la prueba paramétrica ANDEVA de
medidas repetidas.
Verificación de pérdida de Biomasa
Para evaluar las diferencias de la masa inicial y final de C. granosus se empleó un ANDEVA de
dos vías para los factores tipo de alimento (factor fijo) y tiempo (factor aleatorio).
Evaluación de actividad de Tripsina
En todos los casos que existieron diferencias significativas se empleó la prueba a posteriori de
Tukey.
Para evaluar la actividad de la Tripsina como de la N-aminopeptidasa en tres alimentos se
emplearon ANDEVAS de una vía.
25. Discusión
La importancia de este trabajo es el uso del tejido epitelial del digestivo de C. granosus,
lo que difiere del estudio realizado por Camus et al. (2009)
Fue mayor la ingesta y asimilación de G. lingulatum, asemejándose a lo obtenido
en el estudio realizado por Camus et al. (2009).
(Gacía – Carreño et al. 2003)
26. Para C. granosus, J. cirratus es más palatable y mejor en términos nutricionales que P.
purpuratus.
J. cirratus presentó mayor porcentaje de asimilación y actividad enzimática que P.
purpuratus.
J. cirratus Requerimientos nutricionales para desarrollo de funciones
fisiológicas.
Semejante a resultado de otros
estudios
Tetrapygus niger (Navarrete et al. 2008).
(Aguilera 2005)
(Sanhueza et al. 2008)
27. Según Sabat et al. (2008) la influencia ambiental genera
tendencias en los organismos.
Flexibilidad digestiva
Asemejándose a las características dietarias presentes de otros organismos, por ejemplo
aves y roedores (Piersma et al. 1997, Ciminari et al. 2005, Sabat et al. 2008 ).
La existencia de actividad enzimática en el digestivo de C. granosus podría ser el
resultado de su flexibilidad adaptativa.
(Piersma et al. 1997)
28. C. granosus presenta estrategia trófica como omnívoro, formando cadenas tróficas
más largas aumentando el número de interacciones que ocurren en las comunidades
(Link 2002).
Abundancia (Otaíza et
al. 1985)
Flexibilidad digestiva
(Camus et al. 2009)
C. granosus
Presión de pastoreo en la estructura
comunitaria.
Asentamiento de otras especies
sésiles (mitílidos y cirripedios).
29. Conclusiones
C. granosus consume, digiere y asimila (EA) alimento animal y
algal.
Se obtuvo mayor actividad de Tripsina y asimilación de J. cirratus
que P. purpuratus.
Para C. granosus: J. cirratus es más palatable y mejor en términos
nutricionales que P. purpuratus.
Presencia de Flexibilidad digestiva.
C. granosus es omnívoro fisiológico.
C. granosus al ser omnívoro presenta un cambio de posición trófica generando
un aumento en el largo de las cadenas tróficas en cada comunidad donde esté
presente.
30. Agradecimientos
A todas aquellas personas que me ayudaron durante toda mi formación de
estudiante.
A todos aquellos que me dijeron que no lograría terminar la carrera ni lograr
llevar acabo mi tesis, ya que con ello generaron un reto y me motivaron a dar lo
mejor de mi.
Profesor Patricio A. Camus por darme la oportunidad de trabajar y aprender de
él, profesor Pablo Sabat por su apoyo y asesoría a la distancia, Profesor Cristian
W. Cáceres por poner a mi disposición su laboratorio.
A mi madre y mis hermanas por su constante apoyo, mi hermano Héctor ya que
sin él tomar las muestras hubiese sido muy difícil, a mi amiga Daniela Contreras
por darme siempre su apoyo y amistad.
Al profesor Carlos Herrera, Isabel Navarrete, Leonardo Vidal, Sergio Contreras,
Arturo Navarrete y Marcelo Lagos por compartir conocimientos conmigo y
guiarme no tan solo en esta investigación sino como profesional
