1. Marcadores celulares: radioisótopos, cromóforos, fluoróforos y otros Métodos y Técnicas de Estudio en Biología Celular

3. Propiedades de los radioisótopos 3 H 14 C 35 S 32 P 125 I T 1/2 12.3a* 5730a* 87.4d* 14.3d* 60d* Radiación  Penetración (aire) 6 mm 24 cm 30 cm 7,2 m > 10 m Escudo No 1 cm 1 cm 1 cm plomo 0.25 mm (13 mm para 131 I) Actividad (Bq) 3·10 10 9·10 8 4·10 9 1·10 8 1·10 7 Limite anual (MBq) 3000 90 80 10 1 * a=años, d=días

4. Cromóforos: la absorción

5. Ley de Beer-Lambert I = I 0 · 10 -  c l Log I 0 /I = A =  · c · l T = 100 · (I/I 0 ) La densidad óptica (D.O.) es la absorción en us sistema en el que l = 1

6. Cromóforos

7. Cromóforos: el espectrofotómetro

8. Cromóforos intrínsecos Determinados grupos prostéticos de proteínas actúan como cromóforos intrínsecos. Su espectro característico sirve para identificar proteínas.

9. Cromóforos intrínsecos

10. Fluoróforos: excitación y emisión La molécula A es fluorescente, mientras B carece de fluorescencia. G denota el estado basal; S el primer estado excitado.

11. Esquema del fluorímetro (Formato en L) Prisma o filtro

12. Fluoróforos: ejemplos

13. Fluoróforos: Ejemplos

14. Ejemplo en microscopia de fluorescenci a Medición con Fura-2 de la concentración de Ca2+ en célula de Purkinje.

15. Fluoróforos: Marcaje Marcaje de proteínas con anticuerpos fluorescentes. Ejemplo de marcaje con anticuerpos primarios y secundarios

16. Citometría de flujo La citometría de flujo es una técnica ampliamente utilizada para separar, clasificar, analizar e investigar las células

17. Fluorescencia en la fluidez de membrana Fluidez y difusión mediante FRAP (Fluorescence Recovery After Fotobleaching)

18. Fluorescencia e Interacción entre moléculas (FRET) FRET (Fluorescence Resonance Energy Transfer)

19. Fluorescencia en la fluidez de membrana Estudio de la fluidez en híbridos ratón-humano Patching y capping en membranas de leucocitos