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CRÍOPRESERVACIÓN DE OOCITOS
          Una alternativa de fertilidad para la mujer joven
               con riesgo inminente de falla ovárica

Dr. Natalia Posada Villa, M.D.
inSer, Instituto de Reproducción Humana
Medellín, Colombia


Los centros de reproducción asistida han sido un estímulo mayor en el desarrollo de la crío
tecnología. Una década después de lograrse la críopreservación de embriones en animales de
laboratorio, se obtuvieron nacidos vivos después de la transferencia de embriones humanos crío
preservados (Trounson y Mohr, 1983). Durante el proceso de congelación, independientemente
del método utilizado (congelación lenta o ultra rápida), se busca inducir la formación de un estado
sólido en el tejido evitando la formación de cristales de hielo dentro de las células ya que estos
actúan como verdaderas agujas que destruyen las células. Se han desarrollado mecanismos para
proteger los tejidos durante el proceso de crío preservación y descongelación como son la
permeabilización del tejido con un agente crío protector y la deshidratación controlada de las
células. Los agentes crío protectores comúnmente utilizados son el dimetil sulfóxido (DMSO),
etilen glycol, propanediol y glycerol. Tradicionalmente se ha utilizado la críopreservación lenta y la
descongelación rápida con el fin de obviar los problemas de toxicidad derivados del uso de altas
concentraciones de crío protectores y la dificultad en la implementación de protocolos ultra
rápidos de congelación. La congelación lenta requiere, sin embargo, de costosos equipos que
permiten bajar la temperatura de la muestra muy lentamente (por ejemplo, 0.3˚C por minuto)
antes de poder almacenar las muestras a -196˚C.

La crío tecnología ha permitido mejorar sustancialmente la eficacia de los tratamientos de
fertilización in vitro (FIV) porque permite la realización de dos o tres transferencias por ciclo
captado en el lapso de unos meses cuando la transferencia de embriones en fresco no resulta en
embarazo o inclusive años después como sería el caso de parejas que desean buscar un segundo
embarazo. Recientemente, se ha revivido el interés en la crío tecnología como alternativa de
preservación de la fertilidad, especialmente para mujeres jóvenes con cáncer. El desarrollo de la
quimioterapia combinada y la radioterapia ha mejorado la sobre vida a largo plazo de pacientes
con cáncer. Hoy en día son curables muchos tumores sólidos, linfomas y leucemias de pacientes
infantes y adolescentes (Boring y cols, 1991). Sin embargo la quimioterapia citotóxica utilizada
para tratar enfermedades malignas y no malignas comúnmente produce irregularidades
menstruales, seguidas de falla ovárica y consecuentemente infertilidad. A medida que mejora la
sobre vida de los pacientes con cáncer, cobra relevancia la amenaza de una infertilidad iatrogénica
subsiguiente.
Aunque la congelación de embriones es una práctica estándar en la mayoría de los centros de
fertilidad, está lejos de ser la opción ideal para mujeres con cáncer. La congelación de embriones
plantea el dilema de la orfandad de los embriones en el caso que la madre muera. En ocasiones
puede no disponerse del tiempo suficiente para la realización de un ciclo de fertilización in vitro
antes del inicio de la quimioterapia o la inducción de la ovulación puede ser riesgosa en caso de
algunos tumores hormono-dependientes. Finalmente, no es una opción para niñas
preadolescentes y puede no ser aceptable para mujeres sin esposo o un compañero estable.
Algunos de estos problemas pudieran evitarse con la crío preservación de oocitos, al menos en el
caso de mujeres púberes.



CRÍOPRESERVACIÓN DE OOCITOS
A pesar de la expectativa que produjo la noticia de los primeros bebés nacidos producto de la FIV
de oocitos críopreservados (Chen 1996), la combinación de los reportes publicados hasta 1994,
indicaba tan solo el nacimiento de cuatro bebes como resultado de la descongelación de 383
oocitos, es decir, un porcentaje de nacidos vivos del 1% por cada oocito descongelado. Las razones
para tan pobres resultados eran, entre otras, la baja sobre vida oocitaria después del proceso de
crío preservación (25-40%), los bajos porcentajes de fertilización después de la inseminación
clásica con la FIV, y la baja capacidad de desarrollo de los embriones resultantes. La mala calidad
de los oocitos crío preservados pudo haber sido un factor en este bajo éxito, ya que usualmente se
transferían en fresco los oocitos de mejor calidad. Sin embargo, había temor por los efectos que el
proceso de congelación y descongelación pudiera tener sobre la integridad de la membrana,
organelas y huso meiótico de los oocitos.

Estos temores se disiparon en gran parte porque estudios genéticos posteriores encontraron que
la gran mayoría de los oocitos que sobrevivían el proceso de congelación tenían un huso meiótico
normal sin anormalidades en el número de los cromosomas. En segunda instancia, la introducción
de la inyección intra-citoplasmática de espermatozoides (ICSI) obvió los problemas derivados del
endurecimiento de la zona pelúcida oocitaria inducido por el proceso de congelación, logrando
porcentajes de fecundación similares a los obtenidos con oocitos frescos.

Así, en 1997 Porcu y cols reportaron el primer nacimiento producto de la crío preservación de
oocitos maduros e ICSI, con un porcentaje de sobre vida oocitaria cercano al 60%, y un porcentaje
de fertilización y clivaje similar al de los oocitos frescos (56% y 91.2%, respectivamente, Porcu y
cols, 1999). Se logró evitar tener embriones supernumerarios mediante la inseminación de un
número limitado de oocitos y la crío preservación de los oocitos maduros restantes, con un
porcentaje de embarazo acumulado similar a la inseminación de todos los oocitos maduros y la
crío preservación de los embriones sobrantes (Yang y cols 1999, Porcu y cols 2002).
La introducción, hace un par de décadas, de nuevas soluciones crío protectoras, menos tóxicas
para los tejidos y-o que no penetran la membrana celular, y envases adecuados para la crío
preservación rápida de las células, revivió el concepto de la vitrificación o crío preservación
ultrarrápida disminuyendo no solo el tiempo, sino las condiciones adversas a las que se someten
las células durante el proceso de crío preservación. En un estudio comparativo, la vitrificación de
complejos de oocitos maduros y células de la granulosa con etilen glicol y sucrosa a 37°C demostró
ser más eficaz que el proceso de congelación lento (Hong y cols. 1999). Yoon y cols. en el 2000
reportaron los dos primeros nacimientos producto de la vitrificación y descongelación de oocitos
maduros, con un porcentaje de implantación del 9.4%.

El Instituto de Fertilidad Humana, inSer, inició el programa de crío preservación oocitaria en enero
de 2005 con porcentajes de crío sobre vida del 80%, fertilización in vitro y clivaje del 70% y 90%,
respectivamente. Esta es una técnica que requiere de al menos un mes para su realización,
tiempo en el cual se hace la asesoría y evaluación reproductiva de la mujer, la estimulación ovárica
controlada y la captación oocitaria. El porcentaje de implantación por embrión transferido al
útero es del 10 al 20% y el porcentaje de nacidos vivos es aproximadamente un 5% por oocito crío
preservado. Estas cifras se deben tener en mente, teniendo en cuenta que el promedio de oocitos
captados puede oscilar entre 6 a 16 de acuerdo al protocolo de estimulación utilizado y a la edad
de la mujer. La crío preservación de oocitos puede ser la única opción de preservación de la
fertilidad para algunas mujeres jóvenes con riesgo inminente de falla ovárica (por ejemplo,
ooforectomía bilateral, quimio o radio terapia), pero no es una alternativa costo efectiva para
mujeres mayores de 35 años sanas que simplemente no han definido su maternidad y ven en la
congelación de los oocitos un alivio al inminente envejecimiento de los folículos ováricos. En lo
posible, estas mujeres deberían de exponerse al embarazo en forma espontánea teniendo en
cuenta que la opción de embarazo disminuye drásticamente, aún con técnicas de reproducción
asistida, después de los 37 años.

Además de la crío preservación oocitaria, el banco de gametos incluye el almacenamiento a muy
bajas temperaturas de espermatozoides, y tejido ovárico. Esta última alternativa es de especial
importancia para niñas prepúberes en riesgo de falla ovárica iatrogénica. Es importante instruir a
nuestros pacientes sobre la existencia todas estas alternativas de preservación de la fertilidad con
el fin de garantizarles una mejor calidad de vida a futuro, que contemple la posibilidad de ser
padres.



BIBLIOGRAFÍA
1.   Trounson A, Mohr L. Human pregnancy following cryopreservation, thawing and transfer of
     an eight cell embryo. Nature 1983; 305:707-9.

2.   Boring CC, Squires TS, Tong T. Cancer Statistics 1991. CA Cancer J Clin 1991; 41:19-36.
3.   Chen C. Pregnancy after human ovocyte cryopreservation. Lancet 1986; 1:884-6.

4.   Porcu E, Fabbri R, Seracchioli R, Ciotti PM, Magrini O, Flamigni C. Birth of a healthy female
     after intracytoplasmic sperm injection of cryopreserved human oocytes. Fertil Steril 1997;
     68:724-6.

5.   Porcu E, Fabbri R, Ciotti PM, Marsella T, Balicchia B, Damiano G, et al. Cycles of Human oocyte
     cryopreservation and intracytoplasmic sperm injection: Results of 112 cycles [abstract no.O-
     004]. In: 1999 Annual Meeting Program Supplement. Toronto, Ontario, Canada: American
     Society for Reproductive Medicine and Canadian Fertility and Andrology Society. Fertil Steril
     1999:S2.

6.   Yang DS, Blohm PL, Cramer K, Nguyen K, Zhao YL, Winslow KL. A successful human oocyte
     cryopreservation regime: survival, implantation and pregnancy rates are comparable to that
     of cryoprseved embryos generated from sibling oocytes [abstract no.O-224]. In: 1999 Annual
     Meeting Program Supplement. Toronto, Ontario, Canada: American Society for Reproductive
     Medicine and Canadian Fertility and Andrology Society. Fertil Steril 1999:S86.

7.   Porcu E, Fabbri R, Ciotti PM, Frau F, De Cesare R, Venturoli S. Oocytes or embryo storage
     [abstract O-38] ? In: 2002 Annual Meeting Program Supplement. Seattle: American Society
     for Reproductive Medicine. Fertil Steril 2002; 76:S15.

8.   Hong SW, Chung HM, Lim JM, Ko JJ, Yoon TK, Yee B, et al. Improved human oocyte
     development after vitrification: a comparison of thawing methods. Fertil Steril 1999; 72:142-
     6.

9.   Yoon TK, Hyung MC, Jeong ML, Se YH, Jung JK, Kwang YC. Pregnancy and delivery of healthy
     infants developed from vitrified oocytes in a stimulated in vitro fertilization embryo transfer
     program. Fertil Steril 2000:74; 180 –1.

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La criopreservación oovocitos

  • 1. CRÍOPRESERVACIÓN DE OOCITOS Una alternativa de fertilidad para la mujer joven con riesgo inminente de falla ovárica Dr. Natalia Posada Villa, M.D. inSer, Instituto de Reproducción Humana Medellín, Colombia Los centros de reproducción asistida han sido un estímulo mayor en el desarrollo de la crío tecnología. Una década después de lograrse la críopreservación de embriones en animales de laboratorio, se obtuvieron nacidos vivos después de la transferencia de embriones humanos crío preservados (Trounson y Mohr, 1983). Durante el proceso de congelación, independientemente del método utilizado (congelación lenta o ultra rápida), se busca inducir la formación de un estado sólido en el tejido evitando la formación de cristales de hielo dentro de las células ya que estos actúan como verdaderas agujas que destruyen las células. Se han desarrollado mecanismos para proteger los tejidos durante el proceso de crío preservación y descongelación como son la permeabilización del tejido con un agente crío protector y la deshidratación controlada de las células. Los agentes crío protectores comúnmente utilizados son el dimetil sulfóxido (DMSO), etilen glycol, propanediol y glycerol. Tradicionalmente se ha utilizado la críopreservación lenta y la descongelación rápida con el fin de obviar los problemas de toxicidad derivados del uso de altas concentraciones de crío protectores y la dificultad en la implementación de protocolos ultra rápidos de congelación. La congelación lenta requiere, sin embargo, de costosos equipos que permiten bajar la temperatura de la muestra muy lentamente (por ejemplo, 0.3˚C por minuto) antes de poder almacenar las muestras a -196˚C. La crío tecnología ha permitido mejorar sustancialmente la eficacia de los tratamientos de fertilización in vitro (FIV) porque permite la realización de dos o tres transferencias por ciclo captado en el lapso de unos meses cuando la transferencia de embriones en fresco no resulta en embarazo o inclusive años después como sería el caso de parejas que desean buscar un segundo embarazo. Recientemente, se ha revivido el interés en la crío tecnología como alternativa de preservación de la fertilidad, especialmente para mujeres jóvenes con cáncer. El desarrollo de la quimioterapia combinada y la radioterapia ha mejorado la sobre vida a largo plazo de pacientes con cáncer. Hoy en día son curables muchos tumores sólidos, linfomas y leucemias de pacientes infantes y adolescentes (Boring y cols, 1991). Sin embargo la quimioterapia citotóxica utilizada para tratar enfermedades malignas y no malignas comúnmente produce irregularidades menstruales, seguidas de falla ovárica y consecuentemente infertilidad. A medida que mejora la sobre vida de los pacientes con cáncer, cobra relevancia la amenaza de una infertilidad iatrogénica subsiguiente.
  • 2. Aunque la congelación de embriones es una práctica estándar en la mayoría de los centros de fertilidad, está lejos de ser la opción ideal para mujeres con cáncer. La congelación de embriones plantea el dilema de la orfandad de los embriones en el caso que la madre muera. En ocasiones puede no disponerse del tiempo suficiente para la realización de un ciclo de fertilización in vitro antes del inicio de la quimioterapia o la inducción de la ovulación puede ser riesgosa en caso de algunos tumores hormono-dependientes. Finalmente, no es una opción para niñas preadolescentes y puede no ser aceptable para mujeres sin esposo o un compañero estable. Algunos de estos problemas pudieran evitarse con la crío preservación de oocitos, al menos en el caso de mujeres púberes. CRÍOPRESERVACIÓN DE OOCITOS A pesar de la expectativa que produjo la noticia de los primeros bebés nacidos producto de la FIV de oocitos críopreservados (Chen 1996), la combinación de los reportes publicados hasta 1994, indicaba tan solo el nacimiento de cuatro bebes como resultado de la descongelación de 383 oocitos, es decir, un porcentaje de nacidos vivos del 1% por cada oocito descongelado. Las razones para tan pobres resultados eran, entre otras, la baja sobre vida oocitaria después del proceso de crío preservación (25-40%), los bajos porcentajes de fertilización después de la inseminación clásica con la FIV, y la baja capacidad de desarrollo de los embriones resultantes. La mala calidad de los oocitos crío preservados pudo haber sido un factor en este bajo éxito, ya que usualmente se transferían en fresco los oocitos de mejor calidad. Sin embargo, había temor por los efectos que el proceso de congelación y descongelación pudiera tener sobre la integridad de la membrana, organelas y huso meiótico de los oocitos. Estos temores se disiparon en gran parte porque estudios genéticos posteriores encontraron que la gran mayoría de los oocitos que sobrevivían el proceso de congelación tenían un huso meiótico normal sin anormalidades en el número de los cromosomas. En segunda instancia, la introducción de la inyección intra-citoplasmática de espermatozoides (ICSI) obvió los problemas derivados del endurecimiento de la zona pelúcida oocitaria inducido por el proceso de congelación, logrando porcentajes de fecundación similares a los obtenidos con oocitos frescos. Así, en 1997 Porcu y cols reportaron el primer nacimiento producto de la crío preservación de oocitos maduros e ICSI, con un porcentaje de sobre vida oocitaria cercano al 60%, y un porcentaje de fertilización y clivaje similar al de los oocitos frescos (56% y 91.2%, respectivamente, Porcu y cols, 1999). Se logró evitar tener embriones supernumerarios mediante la inseminación de un número limitado de oocitos y la crío preservación de los oocitos maduros restantes, con un porcentaje de embarazo acumulado similar a la inseminación de todos los oocitos maduros y la crío preservación de los embriones sobrantes (Yang y cols 1999, Porcu y cols 2002).
  • 3. La introducción, hace un par de décadas, de nuevas soluciones crío protectoras, menos tóxicas para los tejidos y-o que no penetran la membrana celular, y envases adecuados para la crío preservación rápida de las células, revivió el concepto de la vitrificación o crío preservación ultrarrápida disminuyendo no solo el tiempo, sino las condiciones adversas a las que se someten las células durante el proceso de crío preservación. En un estudio comparativo, la vitrificación de complejos de oocitos maduros y células de la granulosa con etilen glicol y sucrosa a 37°C demostró ser más eficaz que el proceso de congelación lento (Hong y cols. 1999). Yoon y cols. en el 2000 reportaron los dos primeros nacimientos producto de la vitrificación y descongelación de oocitos maduros, con un porcentaje de implantación del 9.4%. El Instituto de Fertilidad Humana, inSer, inició el programa de crío preservación oocitaria en enero de 2005 con porcentajes de crío sobre vida del 80%, fertilización in vitro y clivaje del 70% y 90%, respectivamente. Esta es una técnica que requiere de al menos un mes para su realización, tiempo en el cual se hace la asesoría y evaluación reproductiva de la mujer, la estimulación ovárica controlada y la captación oocitaria. El porcentaje de implantación por embrión transferido al útero es del 10 al 20% y el porcentaje de nacidos vivos es aproximadamente un 5% por oocito crío preservado. Estas cifras se deben tener en mente, teniendo en cuenta que el promedio de oocitos captados puede oscilar entre 6 a 16 de acuerdo al protocolo de estimulación utilizado y a la edad de la mujer. La crío preservación de oocitos puede ser la única opción de preservación de la fertilidad para algunas mujeres jóvenes con riesgo inminente de falla ovárica (por ejemplo, ooforectomía bilateral, quimio o radio terapia), pero no es una alternativa costo efectiva para mujeres mayores de 35 años sanas que simplemente no han definido su maternidad y ven en la congelación de los oocitos un alivio al inminente envejecimiento de los folículos ováricos. En lo posible, estas mujeres deberían de exponerse al embarazo en forma espontánea teniendo en cuenta que la opción de embarazo disminuye drásticamente, aún con técnicas de reproducción asistida, después de los 37 años. Además de la crío preservación oocitaria, el banco de gametos incluye el almacenamiento a muy bajas temperaturas de espermatozoides, y tejido ovárico. Esta última alternativa es de especial importancia para niñas prepúberes en riesgo de falla ovárica iatrogénica. Es importante instruir a nuestros pacientes sobre la existencia todas estas alternativas de preservación de la fertilidad con el fin de garantizarles una mejor calidad de vida a futuro, que contemple la posibilidad de ser padres. BIBLIOGRAFÍA 1. Trounson A, Mohr L. Human pregnancy following cryopreservation, thawing and transfer of an eight cell embryo. Nature 1983; 305:707-9. 2. Boring CC, Squires TS, Tong T. Cancer Statistics 1991. CA Cancer J Clin 1991; 41:19-36.
  • 4. 3. Chen C. Pregnancy after human ovocyte cryopreservation. Lancet 1986; 1:884-6. 4. Porcu E, Fabbri R, Seracchioli R, Ciotti PM, Magrini O, Flamigni C. Birth of a healthy female after intracytoplasmic sperm injection of cryopreserved human oocytes. Fertil Steril 1997; 68:724-6. 5. Porcu E, Fabbri R, Ciotti PM, Marsella T, Balicchia B, Damiano G, et al. Cycles of Human oocyte cryopreservation and intracytoplasmic sperm injection: Results of 112 cycles [abstract no.O- 004]. In: 1999 Annual Meeting Program Supplement. Toronto, Ontario, Canada: American Society for Reproductive Medicine and Canadian Fertility and Andrology Society. Fertil Steril 1999:S2. 6. Yang DS, Blohm PL, Cramer K, Nguyen K, Zhao YL, Winslow KL. A successful human oocyte cryopreservation regime: survival, implantation and pregnancy rates are comparable to that of cryoprseved embryos generated from sibling oocytes [abstract no.O-224]. In: 1999 Annual Meeting Program Supplement. Toronto, Ontario, Canada: American Society for Reproductive Medicine and Canadian Fertility and Andrology Society. Fertil Steril 1999:S86. 7. Porcu E, Fabbri R, Ciotti PM, Frau F, De Cesare R, Venturoli S. Oocytes or embryo storage [abstract O-38] ? In: 2002 Annual Meeting Program Supplement. Seattle: American Society for Reproductive Medicine. Fertil Steril 2002; 76:S15. 8. Hong SW, Chung HM, Lim JM, Ko JJ, Yoon TK, Yee B, et al. Improved human oocyte development after vitrification: a comparison of thawing methods. Fertil Steril 1999; 72:142- 6. 9. Yoon TK, Hyung MC, Jeong ML, Se YH, Jung JK, Kwang YC. Pregnancy and delivery of healthy infants developed from vitrified oocytes in a stimulated in vitro fertilization embryo transfer program. Fertil Steril 2000:74; 180 –1.