Este documento presenta información sobre el examen coproparasitológico, incluyendo la toma de muestras, características macroscópicas y microscópicas de las heces, y técnicas para el examen microscópico. Se describen los parásitos más comunes encontrados y sus ciclos de vida, así como instrucciones para cultivos bacteriológicos de heces. El documento fue preparado por la Dra. Rocío E. Beltrán Torres de la Facultad de Medicina de la Universidad Particular Antenor Orrego en

1. UNIVERSIDAD PARTICULAR ANTENOR ORREGO
FACULTAD DE MEDICINA
TEMA: COPROPARASITOLÓGICO
Docente: Dra. Rocío E. Beltrán Torres
TRUJILLO-PERÚ
2013

2. EXÁMEN COPROPARASITOLOGICO
 El exámen de heces tiene principal indicación en el
estudio de la diarrea crónica y aguda de origen, así
como su eficacia en el cribado de pacientes con
cáncer colorrectal.
 Comprende la observación directa, macroscópica, el
análisis químico y microscópico, y el bacteriológico y
parasitológicos de la deposición

3. TOMA DE MUESTRA: COPROPARASITOLOGICO
 TOMA DE MUESTRA: Heces líquidas ó sólidas
 Recipiente: tapa rosca
 No haber tomado purgantes, antiácidos , preparado de




bario y bismuto, anti diarreicos por lo menos 1 semana.
Número de muestras: 3 en días consecutivos.
No ablandadores de heces
Seguimiento varia con el diagnóstico : Helmintos: 1-2
semanas
Protozoarios : 3-4 semanas , Taeniasis: 5 a 6 semanas

4. TOMA DE MUESTRA

5. TIEMPO PARA PROCESAMIENTO DE MUESTRA
 La muestra liquida debe ser trabajada durante los 30
minutos de su evacuación.
 Los trofozoitos se degeneran . Los huevos de los
helmintos se reducen por el factor de dilución.
 Las muestras semilíquidas durante la hora de ser
evacuadas.
 La muestras sólidas durante las 24 horas de ser
evacuadas


6. I. CARACTERISTICAS MACROSCOPICAS: HECES
1.1 Cantidad:
 Depende de los residuos alimenticios procedentes de la dieta y su
contenido en verduras y frutas, es decir celulosa y de la existencia de
estreñimiento o diarrea en el enfermo.
 Normalmente se elimina entre 150 y 250g /día. Con régimen
vegetariano se llega a 350 g ó más, y con régimen proteico se
excretan solo 60 g diarios.
 En estado patológico , las deposiciones llegan a 1 kg diario y si se
trata de diarreas agudas graves pueden eliminarse varios litros
diarios.


7. I. CARACTERISTICAS MACROSCOPICAS: HECES

AUMENTO EN CANTIDAD:

Enfermedad de Hirschsprung o megacolon congénito. Se caracteriza por eliminación espaciada ( cada 10 ó 15
días) de una deposición abundante, que suele rebasar los 300 g de peso (ocurre predominantemente en niños).

En pacientes con esteatorreas de cualquier origen

En la aceleración del transito intestinal: fistulas gastrocólicas, hipercinesia, etc.


En defectos de absorción y en los síndromes de hipersecreción, todo lo cual es a la vez causa de diarrea.

DISMINUCIÓN:



Se presenta en el estreñimiento y en todos los procesos que conducen a él,
En los tumores de intestino grueso y recto que cursan con disminución del calibre de la luz intestinal,
Lo que tiene mayor valor clínico una disminución del número de deposiciones (estreñimiento propiamente
dicho).

8. EXÁMEN FISICO: HECES





1.2 CONSISTENCIA: Normalmente debe ser sólida y formada, es decir cilíndrica y consistente
En el estreñimiento , las deposiciones son pequeñas, duras y a menudo bolas o “caprinas”.
En las diarreas progresivamente blandas y no formadas, semi líquidas y liquidas

1.3 COLOR: Normalmente pardo mas o menos oscuro en el adulto, En lactantes color amarillo.
Una alimentación rica en verduras tiñe las heces de color verdoso y la ingesta de
moras, calamares, etc., las tiñe de color negrusco.

Alteraciones : Blanco grisáceas (hipocolia) en las ictericias obstructivas, amarillentas en la
esteatorrea, rojisas por hemorragia digestiva baja (hemorroides, tumor de colon distal, etc).
Negras por melena por hemorragia digestiva alta.

Presencia de sangre: sangrado inferior (hemorroides, tumores de colon distal, etc) , infecciones
bacterianas( E. coli, Shiguella, Yersinia, etc.)


9. PRESENCIA DE MOCO FECAL
 Suele ser reconocible macroscópicamente:
 . Si esta dividido en forma fina y mezclado con las
heces procede del intestino delgado, mientras que
si forma copos o tiras, tiene un origen colónico.
 Si se acompaña de sangre o pus indica un proceso
inflamatorio mas o menos intenso (enteritis y
colitis).

10. COPROFUNCIONAL
 FIBRAS MUSCULARES:
 Normal: pocas fibras musculares sueltas.
 Patológico: CREATORREA: Presencia de fibras estriadas de una
carne: Causa es insuficiencia pancreática.
 ALMIDÓN: La AMILORREA: Presencia de restos de almidón
sin digerir en las heces. Es indicador de un tránsito
acelerado a través del colon.
 GRASAS: Identificable por coloración de Sudan III que tiñe de
rojo los glóbulos de grasas.
 ESTEATORREA:La presencia de grasa
 Las causas pueden ser: deficiencia de enzimas pancreáticas
( pancreatitis crónica, fibrosis quística del páncreas) o
en aquellas enfermedades que afectan al intestino
delgado, enfermedad celiaca, enfermedad de
Whipple, etc.)

11. EXÁMEN QUIMICO: HECES
 Ph: aporta información sobre una posible mala absorción
de hidratos de carbono como causa de diarrea y
 pH básico diarreas por putrefacción debido a
insuficiencia gástrica.
 pH ácido (debajo de 6): Fermentación en el colon por la
flora bacteriana
 Presencia de lactosa: reacción de Benedict. Si sale
positivo presencia de azucares reductores
 Importante en estudio de diarreas en lactantes:
intolerancia a la lactosa, síndrome de mala absorción.

12. EXÁMEN QUIMICO: HECES
 REACCION DE THEVENON EN HECES:
 Se usa para investigación de sangre oculta ó microscópica

 Recomendación: Dieta tres días sin carne roja, alimentos ricos en
hierro, evitar fármacos irritantes gástricos.

Sugerencia: Repetir la prueba varias veces en diferentes días
 Métodos diversos: piramidón, tiras, casetts, etc.
 Importancia en estudio de anemias crónicas por sospecha de sangrado
oculto en vía digestiva: úlcera , cáncer de estómago, cáncer colorectal.


14. PRELIMINAR: PARASITOSIS

15. FACTORES CONDICIONANTES: PARASITOSIS

16. Factores condicionantes: Parasitosis

17. UBICACIÓN PARASITARIA

18. Formas Evolutivas Eliminadas PROTOZOARIOS
QUISTES/TROFOZOITOS:
Giardia lamblia
Entamoeba histolytica
Balantidium Coli
Endolimax nana
Iodomoeba
Schilomastix
Blasstocistys hominis

19. Formas Evolutivas Eliminadas
HELMINTOS
HUEVOS:
-Ascaris lumbricoides
-Trichuris Trichiura
LARVAS:
- Strongyloides
estercolaris
-Enterobius vermicularis
-Ancylostoma duodenale
-Necator americanus
-Taenia Solium
-Taenia saginata
-Hymenolopsis nana
-Schistosoma mansoni
VERMES ADULTOS:
-Ascaris lumbricoides
- Taenia sp (proglotes)
-Enterobius vermicularis

20. Formas Evolutivas Eliminadas
PROTOZOARIOS
COCCIDIOS: Ooquistes
 Cryptosporidium
 Cyclospora
 Isospora belli
MICROSPORIDIOS: Espora
 Enterocytozoon bieneusi
 Encephalitozoon

21. TECNICAS PARA EXÁMEN MICROSCOPICO
DE HECES
 II.- EXAMEN MICROSCOPICO:
 Solución salina ( Na Cl 0.85%):
 Se mezcla una pequeña porción de heces con una
gota de solución salina , se observa al microscopio.
Se buscan larvas de helmintos, trofozoítos de
protozoarios móviles
 Lugol: Se mezcla una pequeña porción de heces con
una gota de lugol, se observa al microscopio. Se
buscan: quistes de protozoarios y huevos de
helmintos.

22. TÉCNICAS PARA EXÁMEN MICROSCOPICO
DE HECES
 Concentrado: Los quistes, ooquistes, larvas y huevos pueden
concentrarse por diversos procedimientos. Detectan 40% 50% mas que el Método directo . Puede ser por Sedimentación
, flotación o combinación de ambos.
 Métodos mas usados: Faust, Faust y col 1938; ZnSO4 al 33%.
Densidad 1180: Quistes de protozoarios
Necator, tricocéfalos, Ascaris, H. nana.
 Willis ( NaCL) saturado, Willis 1921: Soluciòn saturada (
ClNa) Densidad 1120 . Alta sensibilidad para A. duodenale, N.
americanus, A. lumbricoides, H. nana.
 Observación de formas adultas (estéreoscopio) .

23. 2.1 ENTEROPARASITOS MAS FRECUENTES
 PROTOZOARIOS: Entamoeba coli (quistes) , Giardia
lamblia (trofozoitos y quistes), Entamoeba histolitica (
trofozoitos y quistes), Trichomona hominis (
Trofozoitos), Criptosporidium
(quistes), Ciclospora, Isospora.
 Helmintos: Himenolepis nana (huevos), Ascaris
lumbricoides (huevos), Diphilobotrium pacificum
(huevos operculados), Taenia saginata y T.
solium(huevos iguales), Trichuris trichura
(huevos), Strongyloides stercoralis
(larvas), Anchilostoma duodenale (huevos)

24. TÉCNICAS PARA EXÁMEN MICROSCOPICO
DE HECES
 2.2 TECNICAS DE TINCIÓN:

 Fijación: Schaudinn, formol, PVA
 Coloraciòn: Hematoxilina fèrrica, Tricròmica, Ziehl Neelsen modificada
 Ziehl Neelsen modificado ó tinta china: Para la identificación de ooquistes
de coccidios ( Cryptosporidium, Isospora y Cyclospora).

 2.3 TECNICA DE GRAHAM: Pba de Parche

 Procedimiento para toma de muestra antes de que el niño despierte y a
primera hora de la mañana, colocar un pedazo de cinta adhesiva
transparente en el borde perianal por 5 minutos. Sacar la cinta adherida en
una lamina portaobjeto. Evitar los dobleces. Llevar a laboratorio envuelta
 Exámen microscópico: investigación de huevos larvados de Enterobius
vermicularis a menor y a mayor aumento.

26. FACTOR DE RIESGO PARA LA FAMILIA

27. Enterobius vermicularis

28. Imágenes: Entamoeba histolytica

29. Imágenes: Giardia lamblia

30. Ascaris lumbricoides

31. Taenia solium y Taenia saginata

32. Hymenolepis nana

35. UNCINARIAS

36. Ciclo biológico de las Uncinarias: Ancylostoma
duodenale y Necator americanus

37. UNCINARIAS

38. Necator americanus

39. Ancylostoma duodenale

42. REACCION INFLAMATORIA EN HECES: MOCO FECAL


Muestra: Moco fecal

PROCEDIMIENTO:











Suspensión de heces en solución salina y colocar en lámina previa coloración con azúl de metileno

* Si POSITIVO: Infección por Salmonella, Shigella, Campylobacter, Yersinia, E. coli invasivo

* SI NEGATIVO: Toxinas, Estafilococos, V. cholerae, E. coli enterotoxigénico, Cl. Perfringes; Colitis asociada a
antibioticos, Diarrea por parásitos o virus, colitis ulcerosa

Indicación: Diagnóstico rápido de infección intestinal bacteriana
Observar al microscopio: Informar total de leucocitos y % de PMN
INTERPRETACIÓN:
NEGATIVO: 0 x campo,
POSITIVO: > 20 X Campo ( algunos > 10) predominio de PMN. Puede llegar a campo cubierto.
SIGNIFICADO CLINICO:

43. EXÁMEN BACTERIOLÓGICO DE HECES
 Examen directo: Gram: Investigación de Vibrio cholerae
 Tener presente que la mayoría de diarreas agudas tienen causa viral
(80%) y los protozoarios son causantes de menos del 1% de los episodios
de diarrea.
 Entonces en que pacientes solicitar coprocultivo?
 Diarrea en un paciente con factores de riesgo especiales: diarrea severa
que no cede a tratamiento sintomático, diarrea con sangre, diarrea
prolongada en inmunosuprimidos, en neonatos, si existen antecedentes
de viajes recientes.
 Estudio de brotes de gastroenteritis asociados al consumo de agua o
alimentos o enfermedades transmitidas por alimentos.
 Estudios epidemiológicos para actualizar la importancia relativa de los
agentes etiológicos o para programas de vigilancia.

45. COPROCULTIVO
 Sirve para la identificación de bacterias con comportamiento
patogénico y causal de enteritis, colitis, enterocolitis.
 Muestra: Evitar la mezcla con la orina y una vez obtenida debe
introducirse en frasco estéril y llevarlo al laboratorio antes de las 2
horas de obtenida.
 La Toma de muestra debe hacerse antes de iniciar el tratamiento
antimicrobiano o después de 3 a 4 días de haberse suspendido.
 La toma de muestra en un lactante consistirá en un hisopado rectal.
En el caso de que el tiempo entre la obtención de la muestra y la
llegada al laboratorio sea mayor de 2 horas emplear medio de
transporte de Cary Blair ( 1g de heces por 10 ml)


47. EXÁMEN BACTERIOLÓGICO:
PROCEDIMIENTO
•
•
•
Aislamiento primario en Medios Mac Conkey, S-S, XLD, Caldo selenito.
En Mac Conkey las colonias aisladas pueden ser lactosa positivo: E. coli
ó lactosa negativo: Salmonella , Shigella.

Diferenciación bioquímica: TSI, Urea, SIM ( indol, movilidad), LIA, Lectura e identificación
según tablas.

Tificación serológica: E. coli, Salmonella, Shigella


Antibiograma:
Si se sospecha Vibrio cholerae: TCBS y serología Inaba y Ogawa







Agentes más frecuentes:
* E. coli ( enteropatogénico, enteroinvasivo, enterotoxigénico, enterohemorrágico)
* Salmonella tiphy, paratiphy A y B.
* Shigella flexneri, sonnei, etc. ; Campilobacter, Vibrio cholerae (epidemia)
INVESTIGACION VIRAL:
* investigación de Rotavirus. Detección de antígeno en materia fecal por ELISA.

54. FIEBRE TIFOIDEA

55. MEDIDAS DE PREVENCIÓN!!!!

56. Bibliografia
 Huamán, S.J. Guía de práctica de Laboratorio
UPAO, Trujillo, 2007.
 Comité de Microbiología Clinica Sociedad Chilena de
Infectologia. Sindrome diarreico agudo:
Recomendaciones para el diagnóstico
microbiológico. Rev. Chilena Infectol.2002(2).
 Náquira C. 2000. Amebiasis. Diagnóstico. 39: 131-
134.