Se estudian las palpitaciones gulares utilizadas por algunas aves como un mecanismo alternativo de termorregulación respecto al enfriamiento evaporativo utilizadas por muchas especies de pájaros.

1. Universidad de Sonora
Departamento de ingeniería química y metalurgia
Ingeniería química
Operaciones Unitarias ll
Enfriamiento evaporativo en el chotacabra y el podargo australiano
Expositor
Selene Sombra Álvarez
Hermosillo, Sonora a 28 de enero de 2016

2. Enfriamiento evaporativo en el
chotacabra y el podargo australiano
Lasiewski, R. C., and Bartholomew, G. A. (1966). Evaporative cooling in the
Poor-will and the Tawny Frogmouth. Condor 68, 253-262.
Departamento de zoología, Universidad de California, Los Angeles.
George A. Bartholomew, ;Missouri.
Robert C. Lasiewski, California.

3. Índice
Introducción…………………………………………………….4
Chotacabras y podargos………………………..……..6
Métodos……………………………………………………..……7
Instrumentos utilizados en el método………….8
Puntos mas importantes del método……………9
Resultados……………………………………………………..12
Conclusión……………………………………....................19

4. Introducción

5. Introducción
Cuando la temperatura ambiente(TA) excede a la corporal (TC) de las aves, suelen jadear.
La mayoría de estas aves son incapaces de mantener su TC.
Algunas aves complementan el jadeo manteniendo la boca abierta o con un movimiento gular.
El movimiento gular es una forma efectiva de descargar calor.

6. Chotacabras y podargos
Chotacabras
Son una familia de aves caprimulgiformes.
 Nocturnas.
 Mediano tamaño.
 Alas largas y puntiagudas.
 Patas cortas.
 Pico muy corto pero amplio.
Podargos
Es una especie de ave caprimulgiforme de
Australia y Tasmania.
 Robustas y cabezonas.
 Se confunden con búhos.

7. Métodos

8. Instrumentos utilizados en el método
Jaula de malla hecha de alambre plano
pintada de negro, 10 x 15 x 20 cm.
Estroboscopio electrónico.
Incubadora Aminco.
Termopares de cobre-constantan.
Potenciómetros de grabación multicanal.
Escala milimétrica.
Lente 3X.
Electrocardiógrafo Cambridge Versascribe.
Cuarto oscuro.
Jaula de fibra de vidrio 60x60x60
Soplador de aire caliente.
Lámpara infrarroja 250 vatios.
Termistor de funda de vinilo.
Cronometro.
Indicador de temperatura YSI.
Sanborn 320 Oscilográfico .
Estimulador Grass SDS.

9. Puntos importantes del método
Una de las aves fue tomada en Malibú, California, y el otro fue capturado cerca de Stockton,
California.
Las temperaturas experimentales se mantuvieron dentro de 0,2°C mediante una incubadora
Aminco.
Se hicieron mediciones repetidas de la velocidad de palpitación a cada temperatura con un
estroboscopio electrónico .
La velocidad de palpitación gular se determinó por la variación de la velocidad del flash del
estroboscopio hasta que el movimiento de la zona gular pareció detenerse.
Se midió la amplitud de la palpitación en relación con la temperatura del aire mediante la
colocación de una escala milimétrica

10. Puntos importantes del método
Se le inserto al pájaro un termopar en el intestino.
Se permitió al pájaro equilibrarse a la temperatura de ensayo deseada durante 30 min en la
incubadora.
Iluminado por una bombilla incandescente de 25 vatios, fue observado de forma continua
durante un período de 30 minutos
Cada una de las tres actividades (de tiempo pasado con la boca cerrada, la boca abierta pero
sin la palpitación gular y la palpitación )registraron en un Sanborn 320 Oscilográfico con tres
salidas diferentes a partir de un estimulador Grass SDS.
La frecuencia cardiaca se midio con un electrocardiografo.

11. Puntos importantes del método
Las tasas de respiración (o resuello) se determinaron visualmente y temporizadas con un
cronometro.
Se aplicó calor a la jaula y al ave con una lámpara infrarroja de 250 vatios y por un soplador de
aire caliente.
Se le coloco al ave un termistor dentro de la garganta, para medir su temperatura durante el
calentamiento.

12. Resultados

13. Figura 1. La relación entre la
temperatura ambiente y la
cantidad de tiempo pasado con la
boca cerrada, la boca abierta pero
sin la palpitación gular, y con
palpitación gular en el
chotacabras.

14. Figura 2. La frecuencia de palpitación
gular del chotocabra en relación a la
temperatura ambiente.
Los valores del ave capturada en
Malibu, California son representados
por círculos sombreados, mientras
que los obtenidos por el chotocabra
tomado cerca de Stockton, California
son indicados por círculos sin
sombrear.

15. Figura 3. Amplitud horizontal en
milímetros, medida al extender
la palpitación gular en el
chotacabras en relación a la
temperatura ambiental.

16. Figura 4. Temperatura gular,
temperatura cloacal (del
cuerpo), e intervalo de
palpitación gular en el
chotacabras en relación a la
temperatura ambiental.

17. Figura 5. Frecuencia cardiaca en
el chotacabras durante los
periodos de palpitación gular
(columnas sombreadas) y
periodos sin palpitación.

18. Figura 6. Frecuencia respiratoria
en el podargo australiano en
relación con la temperatura
corporal.

19. Conclusión

20. El chotacabras es capaz de mantener su temperatura corporal normal en un ambiente de
temperatura de 38°C sin palpitación gular y con la boca cerrada.
Cuando la temperatura ambiente supera los 39°, comienza la palpitación gular
El ritmo cardiaco aumenta durante los periodos de palpitación.
La zona gular se puede mantener 3 °C por debajo de la temperatura corporal, y 9 °C por debajo
de la temperatura del aire
La tasa de respiración de un podargo australiano aumento linealmente con el aumento de la
temperatura corporal que, cuando este fue sometido al calor.

21. Gracias por su atención