(1) El líquido cefalorraquídeo es una solución producida por las células de los plexos coroideos que revisten los ventrículos cerebrales y tiene funciones como amortiguar impactos, regular el volumen intracraneal y servir de medio nutritivo y de excreción para el sistema nervioso central. (2) Está compuesto principalmente por agua y pequeñas cantidades de proteínas, y su apariencia normal es incolora y transparente. (3) La punción lumbar se realiza para diagnosticar enfer

1. Líquido cefalorraquídeo

2. ¿Qué es…?
• El líquido cefalorraquídeo (LCR) es una solución compleja producida
por las células que revisten los plexos coroideos y por las células
ependimales que revisten las superficies ventriculares.
• En el adulto, el volumen total oscila entre 90 y 150 mL, la mitad
intracraneal y la otra mitad intraespinal.
• En el recién nacido estas cifras oscilan entre 10 y 60 mL

4. • En el adulto cada día se producen aproximadamente unos 500 mL de
líquido cefalorraquídeo (20 mL/h), con un recambio aproximado de unas
tres veces por día.
En condiciones normales, el líquido cefalorraquídeo está bajo una
presión de 7 a 15 mm Hg. O 100 y 200ml de H2O.
• Causas de elevación de presión de LCR:
• Meningitis, hemorragia subaranoidea, tumores cerebrales, encefalitis y
edemas cerebrales.

5. • Causas que bajan la presión:
• Sindrome de froin, deshidratación shot, algunas infecciones crónicas
degenerativas nerviosas y traumatismos craneales con perdida de
LCR.
• El LCR se compone en 99% de agua y su apariencia normal es
incolora. La coloración amarillenta del LCR se denomina xantocromía
y su causa más frecuente es la presencia de bilirrubina por
metabolismo de la hemoglobina.

6. Sus funciones principales:
• (1) es un amortiguador mecánico que impide traumas
• (2) regula el volumen de los contenidos intracraneales
• (3) es un medio nutriente del sistema nervioso central
• (4) es un canal excretor para productos metabólicos del sistema
nervioso central.
El líquido cefalorraquídeo, se diferencia de los fluídos serosos y
sinoviales, en la permeabilidad selectiva de las membranas y tejidos
adyacentes

7. Barrera
Hematoencefálica
.

8. • La barrera sangre-cerebro término indica la barrera que separa el tejido
cerebral de la circulación de la sangre .
• La base estructural consta de 3 partes:
• 1) capa de células endoteliales interconectados a través
de estrechas uniones y sin adición de fenestraciones (normalmente presente
en el endotelio de otros tejidos).
• 2) membrana basal que consiste en la lámina basal de los astrocitos y la
lámina basal de las células endoteliales.
• 3) Los salientes de astrocitos - llamados pedículos , que hibridan en la
membrana basal

10. • Existe por tanto, un transporte activo entre la sangre, líquido
cefalorraquídeo y cerebro, en ambas direcciones, lo que da lugar a que
existan concentraciones diferentes de sustancias en cada lugar.
• Generalmente, hidrofílicos sustancias no pasan la acreditación hasta que las
células endoteliales y astrocitos expresan canales de transporte
adecuadas. La naturaleza hidrofóbica de la acreditación por otro lado
permite la penetración de lipófilossustancias.
• impide el paso de anticuerpos y los antibióticos libremente , por
una difusión pasiva.

11. Pueden transpasar
• a) Las pequeñas moléculas : H 2 O, O 2 , CO 2 , NH 3 , etanol
• b) las sustancias lipofílicas : hormonas esteroides
• 2) los transportistas selectivos (difusión facilitada o transporte
activo) son típicos para:
• a) Glucosa: GLUT-1
• b) Los aminoácidos
• 3) Algunas de las macromoléculas utilizan pinocitosis a pasar a través de
la acreditación

13. Barrera sangre-CSF
• Barrera sangre-CSF separa el líquido cefalorraquídeo y sangre . Similar a la
barrera hematoencefálica, que consta de tres partes estructuralmente
distintos:
• 1) las células epiteliales coroideas interconectados por uniones
estrechas (que son más permeables que las uniones entre las células
endoteliales de los capilares cerebrales) y secretar el líquido
cefalorraquídeo. El lado orientado hacia el licor tiene su superficie ampliada
por la presencia de proyecciones llamadas microvellosidades .
• 2) membrana basal
• 3) El endotelio de los capilares piamadre contienen fenestraciones

15. OBTENCIÓN DEL LÍQUIDO
CEFALORRAQUÍDEO
• Frecuentemente el líquido cefalorraquídeo se obtiene por punción
lumbar (PL). El procedimiento, que ha de realizar un médico, implica un
daño potencial para el paciente.
• Existe riesgo de infección por la realización del procedimiento , por
esa razón la PL debe realizarse con las más estrictas precauciones de
asepsia y desinfección prolongada de la piel con tintura de iodo, pues
sería muy grave producir una meningitis yatrógena por contaminación.

16. Para qué se realiza una PL?
• detectar una enfermedad del
SNC.
• introducir medicamentos o
contrastes radiológicos.
• disminuir la presión intracraneal.
• valorar ciertos trastornos
electrolíticos que la sangre no
puede reflejar
• extraer sangre o exudado del
espacio subaracnoideo

17. Indicaciones clínicas
con finalidad diagnostica• Infecciones meníngeas o encefalitis
•Meningitis aséptica
• Absceso e infecciones parameníngeas
• Hemorragia subaracnoidea
• Enfermedades desmielinizantes
• Polineuropatías inflamatorias
• Metástasis leptomeningeas
• Síndromes paraneoplásicos
• Tumores cerebrales para buscar marcadores específicos (α-feto proteína)
• Pseudo tumor cerebral (hipertensión endocraneal benigna)
• Hidrocefalia oculta normotensa
• Lupus eritematoso sistémico
• Encefalopatías metabólicas

18. Con un fin terapéutico:
• Infecciones que requieren de la administración de fármacos intratécales
(meningitis bacterianas, micosis refractarias).
• Enfermedades neoplásicas (meningitis leucémica, linfoma lepto-
meníngeo, carcinomatosis meníngea).
• Espasticidad (infusión intratecal de baclofen).
• Pseudo tumor cerebral.

19. Recursos necesarios:
• Médico residente o especialista en neurología, medicina interna,
anestesia.
• Enfermera
• Guantes quirúrgicos estériles
• Apósitos y solución antiséptica
• 2 Agujas 20 y 26
• 2 jeringuillas
• Pinza porta gasa
• 1 ampolla de lidocaina 2 %
• Trocar de PL (calibre 20 y 21)
• Llave de 3 pasos.
• Manómetro (tubo capilar de 40 cm de longitud y 1 mL aproximado de
capacidad interior).

20. Técnica de la PL

21. • Explicar al paciente en que consiste
el proceder al que va ser sometido con
el objetivo de recaudar su
cooperación.
• Colocar al enfermo en decúbito
lateral con la cabeza y las rodillas
flexionadas hacia el abdomen, con lo
que se obtiene una mayor separación
de las apófisis espinosas vertebrales.

22. • Se traza una línea entre ambas crestas
ilíacas que pasa, generalmente, entre la
tercera y cuarta apófisis espinosa. Se elige
el espacio más favorable palpando las
apófisis espinosas ya sea por encima o por
debajo de la línea trazada.
• Se desinfecta la piel de la región
lumbosacra con una solución antiséptica
(yodo o alcohol).
• Inyectar 1-2 mL anestésico local (lidocaina
2 %) en el espacio seleccionado.

23. •La aguja se introduce entre ambas apófisis espinosas atravesando el
ligamento ínterespinoso perpendicularmente a la piel de la línea media.
El bisel del trocar se debe disponer en el sentido de las fibras musculares.
• En ese momento se le imprime a la aguja una ligera desviación hacia la
cabeza y se introduce hasta 5- 6 cm alcanzándose el espacio
subaracnoideo. Se nota una ligera resistencia cuando se perforan los
ligamentos y el saco dural. Se retira el mandril fluyendo espontáneamente
el LCR.
• Cuando el ligamento ínterespinoso está fibrosado o es muy resistente es
necesario practicar la punción a 1 cm de la línea media imprimiendo a la
aguja una dirección ligeramente en sentido cefálico y hacia la línea media.

25. • Si se obtiene líquido hemático es necesario dejar fluir 2 o 3 ml
hasta que salga claro, lo que indica que se trata de una punción
traumática. En una hemorragia subaracnoidea es conveniente
recoger LCR en tres tubos, en los que debe persistir la coloración
roja.
• Una vez recogida las muestras de LCR se retira el trocar y se
coloca un aposito en el sitio de la punción.
• Se le indica al paciente que debe permanecer en decúbito prono
durante al menos 6 a 8horas después del examen.

27. Las muestras se recogen en tres tubos estériles que
se marcan como 1, 2 y 3 en el orden en que se
extraen.
• Tubo 1: se usa para las pruebas químicas y serológicas porque estas
pruebas son menos afectadas por la sangre o las bacterias que se
introducen como resultado del procedimiento de punción.
• Tubo 2: normalmente se destina para el laboratorio de microbiología.
• Tubo 3: se usa para el recuento celular, porque probablemente es el
que contiene menos células introducidas por el procedimiento de la
punción.

28. Recolección de LCR para pruebas frecuentes.
Bioquímica general
• (volumen: 0,5 a 1,0 mL)
• Glucosa
• Proteínas
• Albúmina
Inmunoquímica
• (volumen: > 2 mL)
• Cuantificación de
inmunoglobulinas totales
• Perfil electroforético de
proteínas
• Bandas oligoclonales
• Inmunofijación

29. Microbiología
• (volumen > 2 mL)
• Tinción rápida: Gram, tinta china, bacilos ácidorresistentes
• Aglutinación látex: análisis de bacterias corrientes
• Cultivo: bacterias (anaeróbico, aeróbico), virus, micobacterias,
hongos
• Reacción en cadena de la polimersa (PCR): algunos organismos
virales (virus del herpes simple), tuberculosis
• VDRL: neurosífilis

30. Recolección de LCR para pruebas frecuentes.
Hematología
• (volumen: 0,5-1,0 mL)
• Recuentos celulares
• Evaluación leucemia / linfoma
Citopatología
• (volumen: 2 a 4 mL)
• Evaluación de células malignas

31. EXAMEN:
EVALUACIÓN DE LOS
COMPONENTES

32. CRITERIOS DE ACEPTACIÓN
Y RECHAZO
• Defectos en la identificación de la muestra
y/o volante de petición (etiquetado erróneo,
que no permite la identificación correcta
del paciente).
• Conservación inadecuada (temperatura o
medio de transporte inadecuado).
• Muestras derramadas.

34. APARIENCIA
TURBIDEZ
COAGULOS
COLOR
XANTOCROMIA

35. Apariencia:
• La terminología importante utilizado para describir la apariencia CSF
incluye cristal claro, turbio o turbio , lechoso ,xantocrómico y
hemolizada / con sangre. Un nublado ,espécimen turbias , o lechoso
pueden ser el resultado de un mayor proteína o concentración de
lípidos , pero también puede ser indicativo de infección, con la
nubosidad siendo causado por la presencia de Glóbulos blancos .
Todas las muestras deben tratarse con sumo cuidado.

37. • El líquido cefalorraquídeo es claro e incoloro como el cristal. Se
asemeja al agua destilada. El color y la claridad del tubo de la muestra
debe compararse al lado de un tubo con agua frente a una hoja de
papel limpia y blanca.

38. Turbidez.
• La turbidez, es el resultado de la presencia de leucocitos en
cantidades elevadas (recuento de leucocitos superior a 200 /μL), o
bien de la existencia de bacterias, o de un incremento en las
proteínas o en los lípidos

39. Coágulos.
• Los coágulos pueden ser el resultado de un aumento del fibrinógeno
por una punción traumática. Raramente, los coágulos pueden
deberse a un bloqueo subaracnoideo o a una meningitis.

40. Color.
• Un líquido sanguinolento puede deberse a una punción traumática o
a una hemorragia subaracnoidea. Si la sangre del espécimen se debe
a una punción traumática, los sucesivos tubos de recogida son cada
vez menos hemorrágicos y los últimos casi claros. Si la sangre del
espécimen se debe a una hemorragia subaracnoidea, el color del
líquido será igual en todos los tubos y presentará xantocromía.

41. Xantocromía.
• Consiste en la presencia de un color pálido (naranja o amarillo) en el
sobrenadante. Entre 1 y hemorragia subaracnoidea empieza a tener
lugar la liberación de hemoglobina desde los eritrocitos hemolizados.
Una xantocromía rosa pálido o naranja pálido se debe a la liberación
de oxihemoglobina y alcanza el máximo entre 24 y 36 horas,
desapareciendo de forma gradual en 4-8 días. 4 horas después de la

42.  Glucorraquea
 Proteinorraquea.
 Lactato

43. Glucorraquea
• La concentración de glucosa en el líquido cefalorraquídeo es un
reflejo de la concentración en suero, ya que deriva del mismo por
transporte a través de los plexos coroideos y también depende de la
utilización intracraneal. De forma general, la concentración de glucosa
es aproximadamente un 50-75 % de la concentración en suero

44. • Aunque no es un indicador sensible, una glucorraquia reducida puede
verse en una meningitis infecciosa (bacteriana, tuberculosa o
fúngica), una meningitis neoplásica y una hemorragia subaracnoidea
(Tabla 2). En general, se considera que la reducción se debe a la
mayor utilización por las células inflamatorias y por el parénquima
cerebral adyacente, más que por los organismos microbianos.

45. Proteínorraquea
• Al igual que en el suero, existe en el líquido cefalorraquídeo una
variedad de proteínas en diversas concentraciones: prealbúmina,
albúmina, α2-macroglobulina, fibrinógeno, transferrina,
ceruloplasmina e inmunoglobulinas. La mayoría de estas proteínas,
derivan de la sangre y se transportan al líquido cefalorraquídeo.

46. • Aunque algo inespecífico, la elevación de la proteinorraquia puede
indicar o bien una ruptura de la barrera hematoencefálica o bien una
síntesis intratecal elevada de inmunoglobulinas.
• Puede ser por diagnóstico de una enfermedad infecciosa o
inflamatoria que implica al sistema nervioso central y diferenciarlo de
una participación sistémica

47. • En adultos, las proteínas totales en el líquido cefalorraquídeo oscilan
entre 15 a 45 mg/dl, pueden llegar hasta 150mg/dl en recién nacidos
y hasta 4 mg/dl en niños prematuros.
• La electroforesis de proteínas permite la evaluación de las proteínas
que se encuentran en concentraciones elevadas. El líquido
cefalorraquídeo se distingue del suero en la presencia de una banda
de prealbúmina prominente y dos bandas de transferrina (una de las
cuales es la forma desializada, conocida cómo proteína tau y se debe
a la presencia de neuraminidasa)

48. • Esta técnica, también puede identificar la presencia de “bandas
oligoclonales” de inmunoglobulinas. Para descartar la posibilidad de
que las proteínas reflejen una producción sistémica, debe hacerse en
paralelo una electroforesis en suero

49. • Si se quiere caracterizar de forma más sensible una población de
proteínas, debe realizarse una inmunofijación con identificación de
proteínas específicas: transferrina e inmunoglobulinas. Los geles
pueden explorarse por densitometría y calcular la concentración de
proteínas en las bandas. Alternativamente, puede determinarse la
concentración de estas proteínas individuales

50. Evaluación de la barrera
hematoencefálica.
• Puede utilizarse clínicamente la concentración diferencial de
proteínas en el líquido cefalorraquídeo y en el suero. La integridad de
la barrera hematoencefálica puede valorarse calculando el índice de
la albúmina en líquido cefalorraquídeo y suero.
albúmina LCR x 1000
Índice albúmina = −−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−
albúmina suero

51. Interpretación.
• Un índice albúmina de 9 es consistente con una barrera
hematoencefálica intacta, si oscila entre 9 y 14 indica un ligero
compromiso de la barrera hematoencefálica, de 14 a 30 un
compromiso moderado y de 30 a 100 un compromiso severo.
• * En niños, el índice está elevado hasta aproximadamente los 6 meses
de edad.

52. Síntesis intratecal de inmunoglobulinas.
• Para las inmunoglobulinas en general, o bien para IgG o IgM
específicas frente a un antígeno (por ejemplo, el virus herpes
simplex), pueden realizarse los siguientes cálculos:
IgG líquido cefalorraquídeo
Índice IgG = −−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−−
IgG suero

53. • Un índice IgG mayor de 0,003 es consistente con una síntesis
intratecal elevada de inmuno-globulinas. Sin embargo, este cociente
no tiene en cuenta la filtración de la barrera hemato-encefálica.
• Para evitar esto, se calcula el índice IgG/albúmina.
IgG LCR /IgG suero
IgG/albúmina= ---------------------------------------------
Albúmina LCR /albúmina suero

54. Interpretacion
• Con este cálculo, al incorporar la concentración de albúmina, se corrige
la pérdida de proteínas por la barrera hematoencefálica. El intervalo de
referencia habitual es de 0,3 a 0,7. Se considera que un índice IgG mayor
de 0,7 es consistente con una síntesis intratecal aumentada de
inmunoglobulinas.

55. Lactato
• La determinación de los niveles de lactato en LCR puede ser una
valiosa ayuda en el diagnóstico y tratamiento de los casos de
meningitis. En bacteriana, meningitis tuberculosa y micótica, la
elevación de la CSF lactato a niveles mayores que 25 mg / dL se
produce mucho más consistente que hace la depresión de la
glucosa y proporciona más información fiable cuando el diagnóstico
inicial es difícil.
• Los niveles superiores a 35 mg / dL se ven con frecuencia con
meningitis bacteriana, mientras que en la meningitis viral, los
niveles de lactato siendo inferior a 25 mg / dL. Niveles de lactato en
LCR permanecen elevados durante el tratamiento inicial, pero cae
rápidamente cuando el tratamiento tiene éxito, ofreciendo así un
método sensible para evaluar la eficacia de la terapia antibiótica.

56. Gluamina
La glutamina se produce a partir de amoníaco y cetoglutarato por
las células del cerebro. Este proceso sirve para eliminar la metabólico
tóxico
los residuos del producto amoníaco del SNC. La concentración normal
de la glutamina en el LCR es de 8 a 18 mg / dL.20
Los niveles elevados se encuentran en asociación con trastornos
hepáticos
ese resultado en un aumento de la sangre y LCR amoníaco. Aumentado
síntesis de la glutamina es causada por el exceso de amoníaco que está
presente en el SNC; Por lo tanto, la determinación de CSF
glutamina proporciona una prueba indirecta de la presencia de un exceso
de
amoniaco en el LCR. Varios métodos de glutamina ensayar
están disponibles y se basan en la medición de amoniaco
liberado de la glutamina. Esto es preferible a la directa
medición de amoniaco CSF ​​porque la concentración de
glutamina permanece más estable que la concentración de
amoniaco volátil en la muestra recogida. La glutamina CSF
nivel también se correlaciona con los síntomas clínicos mucho mejores
que lo hace el ammonia.20 sangre
A medida que la concentración de amoníaco en el LCR aumenta,
el suministro de cetoglutarato se agota?; glutamina
ya no puede ser producido para eliminar el amoníaco tóxico, y
coma sobreviene. Algunos trastornos de la conciencia es casi
siempre observan cuando los niveles de glutamina son más de 35 mg /
dL.13
Por lo tanto, la prueba de glutamina CSF es una solicitada con frecuencia
procedimiento para pacientes con coma de origen desconocido.
Aproximadamente el 75% de los niños con síndrome de Reye tienen
niveles de glutamina CSF elevadas

57.  TINCIÓN GRAM
 SIEMBRA EN CALDOS Y
AGARES

58. Examen Microbiológico
• Una evaluación rápida puede
realizarse utilizando pruebas de
aglutinación en látex, para
causas bacterianas corrientes de
meningitis y para infecciones por
Cryptococcus. También pueden
realizarse cultivos bacterianos
(aeróbicos y anaeróbicos),
fúngicos y víricos.

59. El papel del laboratorio de microbiología en el análisis del LCR radica en
la identificación del agente causante en la meningitis. Para la
identificación positiva, el microorganismo debe ser recuperada desde el
fluido por la creciente en el cultivo apropiado medio. Esto puede tomar
de 24 horas en casos de la meningitis bacteriana a 6 semanas para la
meningitis tuberculosa.
En consecuencia, en muchos casos, el cultivo de LCR es en realidad una
confirmación en lugar de un procedimiento de diagnóstico. Sin
embargo, el laboratorio de microbiología tiene varios métodos
disponibles proporcionar información para un diagnóstico preliminar.
Estos los métodos incluyen la tinción de Gram, ácido-alcohol
resistentes a las manchas, tinta china preparación y pruebas de
aglutinación de látex.

60. PROCESAMIENTO
MICROBIOLÓGICO DE
MUESTRAS DE LCR

61. Transporte y conservación de la
muestra

62. Es necesario transportar la muestra al laboratorio de
modo inmediato, ya que se trata de una situación
clínica urgente, que requiere el informe rápido de la
tinción de Gram y la siembra inmediata de la
muestra.
Si la muestra no se procesa inmediatamente, se debe
conservar en la estufa a 35ºC ± 2ºC o a temperatura
ambiente. Nunca se debe refrigerar la muestra.

63. La tinción de Gram se realiza rutinariamente en el LCR de todo casos de meningitis se sospecha, aunque su
valor radica en la detección de microorganismos bacterianos y fúngicos. Todos los frotis y culturas deben
realizarse en muestras concentradas porque a menudo sólo unos pocos organismos están presentes en el
inicio de la enfermedad. La CSF debería centrifuga a 1500 g durante 15 minutos, y las diapositivas y las
culturas deben prepararse a partir de la sediment.23 El uso de la citocentrífuga proporciona un altamente
espécimen concentrado para tinción de Gram. Incluso cuando se concentra
se utilizan muestras, al menos existe una probabilidad del 10% que las tinciones de Gram y culturas serán
negativos. Así, la sangre culturas se deben tomar, porque el microorganismo causal es menudo presente
tanto en el LCR y el blood.9 Un CSF Gram mancha es uno de los toboganes más difíciles de interpretar
porque el número de organismos presentes es generalmente pequeño, y puede ser fácilmente pasado por
alto, lo que resulta en un informe falso negativo. Además, los informes falsos positivos pueden ocurrir si la
mancha precipitado o escombros se confunde con microorganismos. Por lo tanto, considerable se debe
tener cuidado en la interpretación de una tinción de Gram. Organismos encontradas con mayor frecuencia
incluyen Streptococcus pneumoniae (cocos grampositivos), Haemophilus influenza e (bacilos gramnegativos
pleomórficas), Escherichia coli (gramnegativos varillas) y Neisseria meningitidis (gramnegativos cocos). El
cocos grampositivos, Streptococcus agalactiae y los bacilos gram-positivas Listeria monocytogenes pueden
encontrarse
en los recién nacidos.

64. MEDIOS DE CULTIVO
• Agar sangre
• Agar chocolate
• Caldo de enriquecimiento para anaerobios (caldo
tioglicolato o similar) para muestras de LCR de
derivaciones externas o internas.

65. CONDICIONES DE
INCUBACIÓN
• Agar sangre, Agar chocolate (5-7% CO2): 5 días.
• Caldo tioglicolato (aerobiosis 35ºC): 14 días.

67. El examen Citológico consta de:
• Aquí desglosa las pruebas….

68. El examen Serológico consta de:
• Aquí desglosa las pruebas….

69. ASPECTO CAUSA SIGNIFICADO PRINCIPAL
Transparente cristalino Normal
Brumoso, Turbio, nublado, lechoso,
humeado.
Leucocitos
Eritrocitos
Microorganismos
proteínas
Meningitis
Hemorragia
Punción traumática
Meningitis
Trastornos que afectan la barrera
hematoencefalica
Producción de IgG en SNC
Aceitoso Material de contraste radiográfico
Sanguinolento Eritrocitos Hemorragia
Xantocromico Hemoglobina
Bilirrubina
Mertiolato
Caroteno
Proteínas
Hemorragia antigua
Células lisadas por punción traumática
Doblamiento de eritrocitos
Bilirrubina sérica elevada
Contaminación
Concentraciones séricas elevadas
Ver antes
Coagulado Proteínas
Factores de coagulación
Ver antes
Introducidos por la punción traumática
Formación de pelicula Proteínas
Factores de coagulación
Meningitis tuberculosa

70. Recuentos de eritrocitos y leucocitos
• De forma general, para los líquidos corporales no se utilizan los
recuentos electrónicos, ya que estos instrumentos no están
estandarizados para recuentos tan bajos como los que se ven en el
líquido cefalorraquídeo. Además existen problemas derivados de la
viscosidad (especialmente los líquidos articulares), de la variación en
el tamaño celular (especialmente cuando están presentes células
tumorales) y de residuos (que generalmente son más elevados que
las células).

71. • Si el líquido cefalorraquídeo es de apariencia clara, el recuento de
células debe de hacerse sin utilizar líquido de dilución. El recuento ha
de hacerse lo más rápido posible, ya que las células se lisan si se
prolonga el tiempo de procesamiento. Lo adecuado, es realizar los
recuentos en los 30 primeros minutos después de la obtención del
espécimen

72. • Normalmente no existen eritrocitos en el líquido cefalorraquídeo. El
valor de referencia de leucocitos en líquido cefalorraquídeo es de 0 a
5/μL. Más de 10/μL se considera patológico. Si el predominio de las
células es polinuclear, indica generalmente una infección bacteriana,
mientras que la presencia de células mononucleares indica una
infección viral.

73. Examen morfológico
• Cuando el recuento celular es superior a 30 leucocitos/μL, debe
hacerse un recuento diferencial de células. El mejor método es utilizar
una preparación citocentrifugada. Con éste método, la fracción
celular del líquido se concentra y posteriormente se tiñe con
colorante de Wright o con otros colorantes para estudios citológicos.

74. • Independientemente del método de concentración, se cuentan 100
células y se da el porcentaje de cada tipo celular. En algunos casos, las
células se identifican sólo cómo polinucleares o mononucleares. Con
la citocentrifugación la identificación es más específica. Cualquiera de
las células de la sangre pueden identificarse en el líquido
cefalorraquídeo. También pueden verse células originales del sistema
nervioso central, tales cómo células coroidales, ependimales y otras
células mesoteliales.

75. TIPOS DE CÉLULAS
EN LCR

76. LINFOCITOS
• Los linfocitos corresponden a la mayor parte de la
población celular encontrándose en una tasa entre
un 80 y un 90%, se corresponde mayoritariamente
con células T.

77. RETICULOMONOCITOS
• El otro grupo de células
se corresponde con
reticulomonocitos,
célula que ha recibido
distintos nombres
(monocitos, histiocitos,
células mesoteliales,
células endoteliales
etc.), se encuentra en
una tasa porcentual
entre el 10 y el 20%. Elementos
mononucleados con
moderado citoplasma y
núcleo excéntrico

78. Células Ependimarias
• Su presencia es ocasional,
se presentan aisladas o en
grupos, son más
frecuentes en niños y en
muestras obtenidas de los
ventrículos o de la cisterna
magna. Su hallazgo carece
de
significación patológica,
son células con
citoplasmas densos y
homogéneos y el núcleo
en posición central,
redondeado.
Grupo bidimensional de
elementos con citoplasmas
densos y núcleos en posición
central.

79. Células de los Plexos Coroideos
Grupo celular con límites
citoplasmáticos mal definidos
• Son morfológicamente muy próximas a las células
ependimarias, presentando unos límites citoplasmáticos
menos precisos, y a veces como núcleos desnudos.
Células Ependimarias. Aspectos
citológicos

80. Células Cartilaginosas y Cartílago
Cartílago. Fragmento de
material denso acelular.
• Pueden estar presentes como consecuencia de ser
arrastradas durante la punción lumbar.
Célula Cartilaginosa. Morfología
globulosa con núcleo central.

81. Megacariocitos
Célula grande multinucleada con
amplio citoplasma denso
• Son células grandes multinucleadas que es preciso
reconocer para no malinterpretar.

82. Células Leptomeningeas
Grupo de elementos con
morfología elongada
• Las células leptomeningeas muestran una morfología
elongada, se presentan aisladas o en grupos de
reducido número de células.

83. Sustancia Blanca
Material fibrilar englobando
células gliales.
• Material con textura fibrilar conteniendo células
gliales normales, arrastradas en la punción ventricular.