On utilise Temporal Temperature Gradient Gel électrophorèses (TTGE) pour identifier les différentes espèces de bactéries présentes dans de nombreux produits laitiers, y compris les membres des genres Lactobacillus, Lactococcus, Leuconostoc, Enterococcus, Pediococcus, Streptococcus et Staphylococcus.
phage for detection of viable Salmonella typhimuriumLiliane Majed
Development of an engineered bioluminescent reporter phage for the sensitive detection of viable Salmonella typhimurium
Because foodborne illnesses continuously threaten public health, rapid
and sensitive detection of pathogens in food has become an important issue. As an
alternative to time-consuming and laborious conventional detection methods, a
technique using recombinant reporter phages has been developed. Here, we developed
an advanced bioluminescent reporter phage SPC32H-CDABE by inserting a bacterial
luxCDABE operon into the Salmonella temperate phage SPC32H genome. Whole
SPC32H genome sequencing enabled the selection of nonessential genes, which can
be replaced with approximately 6-kb luxCDABE operon, which provides both
luciferase (LuxAB) and its substrate, fatty aldehyde, as generated by fatty acid
reductase (LuxCDE). Thus, the SPC32H-CDABE detection assay is simpler and more
efficient compared to the luxAB-based assay because the substrate addition step is
excluded. At least 20 CFU/mL of pure S. Typhimurium culture was detectable using
SPC32H-CDABE within 2 h, and the signals increased proportionally to the number
of cells contaminated in lettuce, sliced pork, and milk. These results thereby demonstrate that this phage successfully detects live
Salmonella without appreciable interference from food components. Furthermore, the presented data suggest that SPC32HCDABE
represents a promising easy-to-use diagnostic tool for the detection of Salmonella contamination in food.
Seongmi Kim,# Minsik Kim,# and Sangryeol Ryu*
Department of Food and Animal Biotechnology, Department of Agricultural Biotechnology, Research Institute for Agriculture and
Life Sciences, and Center for Food and Bioconvergence, Seoul National University, Seoul 151-921, South Korea
pubmed link :
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24806327
french traduction and power point presentation by Liliane M. Lebanese university - Section 1 - Hadath
Biology department
Identification rapide de pathogènes sans marquage par diffusion élastique opt...Pierre R. Marcoux
E. Schultz, P. R. Marcoux, J. Meteau, V. Genuer
Univ. Grenoble-Alpes, F-38000 Grenoble, France
CEA, LETI, Minatec Campus, 17 avenue des Martyrs, 38054 Grenoble Cedex 9, France
Poster présenté à la journée thématique "Systèmes optiques d'observation non-conventionnels pour la santé" du pôle ORA (Optique Rhône-Alpes), le lundi 29 septembre 2014.
phage for detection of viable Salmonella typhimuriumLiliane Majed
Development of an engineered bioluminescent reporter phage for the sensitive detection of viable Salmonella typhimurium
Because foodborne illnesses continuously threaten public health, rapid
and sensitive detection of pathogens in food has become an important issue. As an
alternative to time-consuming and laborious conventional detection methods, a
technique using recombinant reporter phages has been developed. Here, we developed
an advanced bioluminescent reporter phage SPC32H-CDABE by inserting a bacterial
luxCDABE operon into the Salmonella temperate phage SPC32H genome. Whole
SPC32H genome sequencing enabled the selection of nonessential genes, which can
be replaced with approximately 6-kb luxCDABE operon, which provides both
luciferase (LuxAB) and its substrate, fatty aldehyde, as generated by fatty acid
reductase (LuxCDE). Thus, the SPC32H-CDABE detection assay is simpler and more
efficient compared to the luxAB-based assay because the substrate addition step is
excluded. At least 20 CFU/mL of pure S. Typhimurium culture was detectable using
SPC32H-CDABE within 2 h, and the signals increased proportionally to the number
of cells contaminated in lettuce, sliced pork, and milk. These results thereby demonstrate that this phage successfully detects live
Salmonella without appreciable interference from food components. Furthermore, the presented data suggest that SPC32HCDABE
represents a promising easy-to-use diagnostic tool for the detection of Salmonella contamination in food.
Seongmi Kim,# Minsik Kim,# and Sangryeol Ryu*
Department of Food and Animal Biotechnology, Department of Agricultural Biotechnology, Research Institute for Agriculture and
Life Sciences, and Center for Food and Bioconvergence, Seoul National University, Seoul 151-921, South Korea
pubmed link :
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24806327
french traduction and power point presentation by Liliane M. Lebanese university - Section 1 - Hadath
Biology department
Identification rapide de pathogènes sans marquage par diffusion élastique opt...Pierre R. Marcoux
E. Schultz, P. R. Marcoux, J. Meteau, V. Genuer
Univ. Grenoble-Alpes, F-38000 Grenoble, France
CEA, LETI, Minatec Campus, 17 avenue des Martyrs, 38054 Grenoble Cedex 9, France
Poster présenté à la journée thématique "Systèmes optiques d'observation non-conventionnels pour la santé" du pôle ORA (Optique Rhône-Alpes), le lundi 29 septembre 2014.
2. Résumé :Résumé :
On utilise temporal température
gradient gel électrophorèses (TTGE)
pour identifier les différentes espèces
de bactéries présentes dans de
nombreux produits laitiers, y compris
les membres des genres LactobacillusLactobacillus,,
LactococcusLactococcus,, Leuconostoc,Leuconostoc,
Enterococcus, Pediococcus,Enterococcus, Pediococcus,
Streptococcus et Staphylococcus.Streptococcus et Staphylococcus.
Il a été optimisé pour indiquer desIl a été optimisé pour indiquer des
différences dansdifférences dans La région variable V3
de l’ADNr 16S des bactéries avec desdes bactéries avec des
génomes de bas-G+C-content.génomes de bas-G+C-content.
3. INTRDUCTION :
IL y a 2 méthode d’ identifier les souches :
1. TTGE
2. DGGE
Avant TTGE milieux sélectifs .
Cette méthode est basée sur l'analyse directe de l'ADN dans
l'environnement et n'exigent pas la culture de cellules.
N’ est pas
efficace
4. Les étapes pour savoir les
souches :
1. Pour distinguer des espèces par TTGE, nous avons choisi le secteur
V3 du rDNA sur 16S bacterie.
2. Amplification par PCR.
(10 mM Tris-HCl, 1.5 mM MgCl2, 50 mM KCl), 96°C pendant 4 min .
5. 3. Analyse par TTGE :
Le système « Dcode Universal Mutation Detection
System » (Biorad, Marnes-la- Coquette, France) est
utilisé pour la séparation des produits
d’amplification.
Cinq μLdu produit d’amplification ajoutés à 10 μL
du tampon de charge (EDTA 100 mmol·L–1, bleu de
Bromophénol 1.5 mg·mL–1, saccharose 40 %) sont
déposés sur un gel de polyacrylamide 8 %
(acrylamide et bisacrylamide à 40 % (p/v), Biorad)
ayant une concentration en urée de 6 mmol·L–1.
Un marqueur de standardisation contenant 4
espèces de référence est déposé dans trois puits
situés aux extrémités et au centre du gel.
des gels ont été souillés pendant 15 minutes avec
du bromure d'éthidium (0.5 µg/ml d'amortisseur de
1x TAE), rincés pendant 20 minutes dans
l'amortisseur de 1x TAE, et photographiés sur une
table UV de transillumination.
6.
7. 4. Analyse des gels d’électrophorèse :
Le logiciel Gel Compar (Applied Maths) permet de normaliser les
différences de migration entre gels, par alignement des marqueurs de
standardisation avec un gel standard .
les gels photographiés ont été convertis en image de dossier
8.
9. 5. Base de données :
La communauté bactérienne est représentée par un
profil où chaque bande électrophorétique correspond à
une espèce.
Les espèces sont identifiées par assignation à un
référentiel d'espèces (env. 150 espèces) préalablement
établi à partir des fragments d'ADNr 16S (région V3) de
souches bactériennes pures.