11. L’extraction et la purification des AN sont les premières étapes dans la
plupart des études de biologie moléculaire.
L'AN ainsi extrait peut ensuite être utilisé pour
• le séquençage,
• la PCR ou
• le clonage..
Extraction et la purification des AN
12. CHOIX DE LA METHODE D'EXTRACTION
Le choix de la technique la plus adéquate repose généralement sur:
L’acide nucléique cible.
L’organisme source .
Le matériel de départ .
L’application en aval (PCR, clonage..)
13. Techniques d’extraction et de purification
Il existe différents protocoles expérimentaux pour extraire les acides
nucléiques, qui suivent approximativement le même schéma de
principe :
• -préparation de cellules
• - Lyse des cellules
• - Elimination des protéines et des lipides
• - Elimination des autres acide nucléique
• -précipitation des AN
• -conservation
15. - Lyse des cellules
Lyse chimique
Lyse mécanique
Procaryote: La paroi est un
obstacle majeur
eucaryote
Détergents :
SDS
Triton X100
Sarcosyl
Choc thermique
Choc osmotique
16. 2) Elimination des protéines
Hydrolyse enzymatique
Précipitation par un agent chaotropique
Endoprotéase non spécifique : la protéinase K (65°c) + SDS
Précipitation dénaturants
NaCl et (NH4)2SO4
NaClO4
LiCl
TCG
NaI
17. 3) L’inactivation des nucléases cellulaires :
telle l’EDTA ou le citrate > magnésium
(cofacteur des DNases et RNases).
4) Elimination des autres acides nucléiques :
NaOH : l’ARN est hydrolysé.
« RNase
4.1.2 Par élimination des ARN
4.1.1 par extraction phénol-chloroforme
18.
19. Différentes variantes employées:
• l'ADN génomique (issu du ou des chromosomes des cellules
analysées)
• Ou
• l'ADN plasmidique (provenant de plasmides portés le plus souvent
par des cellules bactériennes ).
20. Différentes variantes employées:
Il existe aujourd'hui des kits commerciaux permettant de réaliser
rapidement
• l’extraction et la
• purification à l'aide de réactifs prêts à l'emploi.
22. Les principaux procédés d'extraction de l ’ADN diffèrent
et peuvent se classer en trois principales types:
1- Les méthodes utilisant des solvants organiques.
2- Les méthodes utilisant des solvants non organiques.
Précipitation par un agent chaotropique
31. 3. Précipitation par un agent chaotropique
• Ces méthodes d'extraction et de purification des acides
nucléiques sont les dernières récemment apparues.
• Elles sont basées sur la propriété qu'ont les particules de
silice d'adsorber sélectivement les acides nucléiques.
32.
33.
34. Conservation des AN :
1) d’ADN :
Un tampon (10mM de pH=8), à 4°c.
Additionné d'EDTA 1mM qu’ils évitent aussi la croissance de microorganismes.
Il peut être conservée également au réfrigérateur/2 sem. ou au congélateur à -20
°c/des périodes plus longues.
2) d’ARN :
Du fait de l’ARN plus instable que l’ADN à cause des RNases, les échantillons sont
stockés à -80°C après addition d'éthanol.
37. Electrophorèse :
La technique la plus utilisée pour la séparation
des acides nucléiques
Principe général:
la séparation des particules se fait en fonction de leur charge
électrique ET en fonction de leur taille.
38. Le gel est constitué d'une matrice de polymère baignant dans
un tampon conducteur.
40. L’agar-agar
Agar-agar est un mot d'origine Malaise qui désigne en extrême-orient la gelée obtenue à partir de
diverses algues rouges
gélidium
gracilaria
Au XVIIème siècle par un cuisinier Japonais. Une industrie dont le Japon conserva
seul la maîtrise jusqu'à la 2ème guerre mondiale.
Une découverte accidentelle
le gel d'agarose
41.
42. Agarose Buffer Solution
Combine the agarose powder and buffer solution. Use a flask that is several times larger
than the volume of buffer.
43. Agarose is insoluble at room temperature (left).
The agarose solution is boiled until clear (right).
Gently swirl the solution periodically when heating to allow all the grains of agarose to dissolve.
***Be careful when boiling - the agarose solution may become superheated and may boil violently if it has been
heated too long in a microwave oven.
Melting the Agarose
46. buffer
Add enough electrophoresis buffer to cover the gel to a depth of at least 1 mm. Make
sure each well is filled with buffer.
Cathode
(negative)
Anode
(positive)
wells
DNA
47. Loading the Gel
Carefully place the pipette tip over a well and gently expel the sample. The sample should sink
into the well. Be careful not to puncture the gel with the pipette tip.
51. 100
200
150
1,650
1,000
500
850
650
400
12,000 bp
5,000
1500 pb
DNA Ladder Standard
Inclusion of a DNA ladder (DNAs of know sizes) on the gel makes it easy to determine the sizes of unknown
DNAs.
-
+
DNA
migration
bromophenol blue
Note: bromophenol blue
migrates at approximately the
same rate as a 300 bp DNA
molecule
54. Cas du gel de polyacrylamide
Utilisé pour la séparation des fragments d’ADN de moins de 1000 pb à la base près.
Le gel est coulé entre deux plaques de verre à l'abri de l'oxygène.
La migration est verticale.
Ses utilisations majeures :
Purifier des oligonucléotides de synthèse et éliminer des nucléotides libres
Déterminer des séquences d'ADN.
Séparer des petits fragments d'ADN
55. TD1.TECHNIQUES DE SEPARATION ET
D’ANALYSE DES ACIDES NUCLÉIQUES
55
Efficace pour les petits fragments d’ADN entre 20 & 2000 paires de
bases. (cartographie)
GEL D’ACRYLAMIDE NATIF (L’ADN est double brin)
56. TD1.TECHNIQUES DE SEPARATION ET
D’ANALYSE DES ACIDES NUCLÉIQUES
56
Bande à moindre mobilité
forme relâchée
Bande à + forte mobilité
forme superenroulée
Electrophorèse de l’ADN plasmidique
Le principe:
lyse des cellules au moyen d'un détergent (dodécyl sulfate de sodium) en présence de soude, à pH 13
Dénaturation de l'ADN
Neutralisation rapide
Renaturation brutale
Réappariement des brins du duplex d'ADN
L'ADN chromosomique, très long (~10⁶ paires de base) enchevètrements insolubles (haute force ionique) + protéines précipitées+ détergent
L'ADN plasmidique, court (~10³ paires de base) Réappariement en solution
Séparation des espèces par centrifugation
Concentration de l'ADN plasmidique par précipitation à l'alcool
Elimination des ARN ribonucléases (hydrolyse sélective des ARN/ ADN intact)
Principe de la lyse alcaline
Le milieu de culture est d'abord éliminé par centrifugation. Le culot de bactéries est ensuite resuspendu dans la solution 1, qui contient du Tris (tamponne le pH) et de l'EDTA. L'EDTA chélate les cations métalliques divalents (majoritairement le calcium et le magnésium), ce qui déstabilise la membrane bactérienne, et inactive les DNases.
Les bactéries sont ensuite lysées dans la solution 2. Cette solution contient de la soude (NaOH 0.2 M) ainsi que du SDS, qui est un détergent. Les parois
bactériennes sont fragilisées à pH basique. De plus, à pH basique, les deux brins de l'ADN se séparent. Le chromosome bactérien, très fragile, se linéarise en grands fragments, mais les deux brins des plasmides, beaucoup plus petits, restent circulaires et donc demeurent associés (contrainte topologique).
La solution 3, constituée d'acétate de potassium 3M à pH 5,5, permet aux brins d'ADN de se réapparier de façon complémentaire. L'ADN plasmidique se renature très vite car les brins n'avaient pas pu se séparer l'un de l'autre. La renaturation de l'ADN génomique nécessite plus de temps, et finalement ne peut avoir lieu car ces fragments d'ADN simple brin précipitent sous l'effet de la forte concentration en sels. L'ADN double brin reste en solution. Le SDS est lui aussi éliminé par précipitation.
L'ADN plasmidique est finalement précipité par addition d'isopropanol ou
d'éthanol. Ces alcools mobilisent l'eau du milieu, ce qui diminue la solubilité de
l'ADN. Les charges négatives portées par les phosphates de l'ADN sont neutralisées par les ions potassium ajoutés lors de l'extraction.