The document discusses the API (analytical profile index) system for bacterial identification. The API system uses biochemical tests contained in strips to generate identification profiles for bacteria. Different API strips exist for identifying gram-negative bacteria (API 20E), gram-positive bacteria (API 20 Strep, API 20 Staph), and anaerobes (API 20A). The API 20E strip contains 20 microtubes with dehydrated substrates that are inoculated to identify Enterobacteriaceae and other gram-negatives through color change reactions over 18-24 hours.
Analytical Profile Index (API) & Automated MachinesZari Esa M. Saleh
The document discusses several methods for identifying bacteria, including the Analytical Profile Index (API) and automated systems like VITEK 2 and Phoenix. API uses miniaturized biochemical tests on strips to identify bacteria based on their enzymatic reactions within 18-24 hours. VITEK 2 and Phoenix are fully automated systems that use colorimetric testing on microplates to identify bacteria and determine antibiotic susceptibility within only a few hours. Both focus on clinical isolates and provide increased automation over traditional API methods.
This document discusses bacterial identification using API kits. It provides an overview of API, which contains identification databases for over 967 bacterial and yeast species. It then describes various API identification systems for gram negative bacteria, gram positive bacteria, anaerobes, and yeasts. The document focuses on using the API 20E kit, outlining the materials needed, inoculation procedure, incubation, result interpretation, and limitations. It emphasizes that API kits allow for rapid identification of known bacterial species contained within their databases.
The document discusses various biochemical tests used to identify bacteria, including sugar fermentation, catalase, coagulase, and oxidase tests. Sugar fermentation tests for gas production using Andrade's indicator in sugar media. The catalase test detects the production of oxygen bubbles from hydrogen peroxide, indicating a positive result. The coagulase test shows clot formation in plasma due to coagulase enzyme activity. The oxidase test turns purple within 1-2 minutes due to cytochrome oxidase activity. Biochemical reactions require pure bacterial cultures.
This document provides information on various microbiology tests used to identify bacterial species, including examples of positive and negative results. It describes tests such as the catalase test to distinguish Staphylococci from Streptococci, the coagulase test for identifying Staph aureus, and the DNase test to differentiate Staph aureus from Staph epidermidis. It also summarizes culture-based tests on different media types to isolate and identify bacteria such as Salmonella, E. coli, and Streptococcus species.
Support de présentation de cours d'adduction en eau potable, à application pour l'ingénieur hydraulicien. Aborde la conception et le dimensionnement des ouvrages constitutifs des réseaux d'AEP
Les problèmes recontrés avec la MEA et les solvants amines en général se résument à des corrosions provoquées par la présence d’O2 et d’autres impuretés, ainsi à la dégradation du solvant.
Ces facteurs ont fait l’objet de plusieurs études car ils jouent un rôle important dans l’optimisation du fonctionnement des procédés d’extraction.
Nous nous sommes intéressés pour notre part à examiner ces différents problèmes en suggérant un procédé complémentaire et performant qui consiste en la filtration de la solution de MEA (mono-éthanolamine) sur charbon actif .
The document discusses the API (analytical profile index) system for bacterial identification. The API system uses biochemical tests contained in strips to generate identification profiles for bacteria. Different API strips exist for identifying gram-negative bacteria (API 20E), gram-positive bacteria (API 20 Strep, API 20 Staph), and anaerobes (API 20A). The API 20E strip contains 20 microtubes with dehydrated substrates that are inoculated to identify Enterobacteriaceae and other gram-negatives through color change reactions over 18-24 hours.
Analytical Profile Index (API) & Automated MachinesZari Esa M. Saleh
The document discusses several methods for identifying bacteria, including the Analytical Profile Index (API) and automated systems like VITEK 2 and Phoenix. API uses miniaturized biochemical tests on strips to identify bacteria based on their enzymatic reactions within 18-24 hours. VITEK 2 and Phoenix are fully automated systems that use colorimetric testing on microplates to identify bacteria and determine antibiotic susceptibility within only a few hours. Both focus on clinical isolates and provide increased automation over traditional API methods.
This document discusses bacterial identification using API kits. It provides an overview of API, which contains identification databases for over 967 bacterial and yeast species. It then describes various API identification systems for gram negative bacteria, gram positive bacteria, anaerobes, and yeasts. The document focuses on using the API 20E kit, outlining the materials needed, inoculation procedure, incubation, result interpretation, and limitations. It emphasizes that API kits allow for rapid identification of known bacterial species contained within their databases.
The document discusses various biochemical tests used to identify bacteria, including sugar fermentation, catalase, coagulase, and oxidase tests. Sugar fermentation tests for gas production using Andrade's indicator in sugar media. The catalase test detects the production of oxygen bubbles from hydrogen peroxide, indicating a positive result. The coagulase test shows clot formation in plasma due to coagulase enzyme activity. The oxidase test turns purple within 1-2 minutes due to cytochrome oxidase activity. Biochemical reactions require pure bacterial cultures.
This document provides information on various microbiology tests used to identify bacterial species, including examples of positive and negative results. It describes tests such as the catalase test to distinguish Staphylococci from Streptococci, the coagulase test for identifying Staph aureus, and the DNase test to differentiate Staph aureus from Staph epidermidis. It also summarizes culture-based tests on different media types to isolate and identify bacteria such as Salmonella, E. coli, and Streptococcus species.
Support de présentation de cours d'adduction en eau potable, à application pour l'ingénieur hydraulicien. Aborde la conception et le dimensionnement des ouvrages constitutifs des réseaux d'AEP
Les problèmes recontrés avec la MEA et les solvants amines en général se résument à des corrosions provoquées par la présence d’O2 et d’autres impuretés, ainsi à la dégradation du solvant.
Ces facteurs ont fait l’objet de plusieurs études car ils jouent un rôle important dans l’optimisation du fonctionnement des procédés d’extraction.
Nous nous sommes intéressés pour notre part à examiner ces différents problèmes en suggérant un procédé complémentaire et performant qui consiste en la filtration de la solution de MEA (mono-éthanolamine) sur charbon actif .
1. MrMrMrMr BoutouilBoutouilBoutouilBoutouil SalimSalimSalimSalim
CoursCoursCoursCours dededede BactBactBactBactéééériologieriologieriologieriologie MMMMéééédicaledicaledicaledicale
TechniquesTechniquesTechniquesTechniques dededede colorationcolorationcolorationcoloration dededede GramGramGramGram
PrPrPrPrééééparationparationparationparation dudududu FFFFrottisrottisrottisrottis
Le frottis pour la coloration de Gram est préparé soit directement à partir du
prélèvement du patient exemple un pus ou par application des micro-organismes à
partir d’une culture d’un milieu liquide ou solide. La préparation du frottis comprend
l'application d'une certaine partie des germes sur une lame de verre propre. Il faut
émulsionné dans une goutte d'eau stérile ou une solution saline sur la lame. Un
applicateur en bois bâton stérile peut être utilisé ou un l’anse de platine pour bien
étaler les bactéries sur la lame pour qu’ils peuvent être facilement observer au
microscope. On sèche le frottis et le fixer par la chaleur soit directement par le bec
bezen ou en le plaçant sur une plaque plus chaud (60 °C) pendant au moins 10
minutes en évitant de faire brûler le frottis, ou en l'inondant de méthanol 95 %
pendant 1 minute. Pour examiner les organismes cultivés en milieu liquide, un
échantillon aspiré du bouillon de culture est appliqué sur une lame puis le mettre sur
une plaque chaud pour séchée et fixée avant la coloration. La préparation des frottis
varie en fonction du type d'échantillon en cours de traitement et sur les méthodes de
coloration utilisé.
Un frottis à partird'un écouvillon de pus Un frottis à partird'un milieu liquide
2. MrMrMrMr BoutouilBoutouilBoutouilBoutouil SalimSalimSalimSalim
CoursCoursCoursCours dededede BactBactBactBactéééériologieriologieriologieriologie MMMMéééédicaledicaledicaledicale
LaLaLaLa colorationcolorationcolorationcoloration
1. Couvrir la lame avec du cristal violet (violet) et laisser agir pendant 10
à 30 secondes. Rincer la lame avec de l'eau du robinet, secouer tout excès.
2 Recouvrir la lame avec de l'iode pour augmenter l'affinité de cristal
violet et lui permettre de rester sur la surface sans séchage deux fois tant
que le cristal violet ( 20 secondes d' iode pour 10 secondes de cristal
violet , par exemple). Rincer à l'eau du robinet , secouer tout excès.
3 Recouvrir la lame avec décolorant pendant 10 secondes et rincez
immédiatement à l'eau du robinet. Répétez cette procédure jusqu'à ce que
la décoloration du colorant. Un Frottis plus épaisses nécessite une
décoloration plus prolongée . Rincer avec de l'eau du robinet et secouer
l’excédent.
4 Recouvrir la lame avec contre colorant la fushine de zhiel et laisser
sans séchage pendant 30 secondes. Rincer doucement avec de l'eau de
robinet, sécher avec des serviettes en papier ou du papier absorbant ou de
l'air sec. Pour frottis délicats, comme certains liquides organiques, séchage
à l'air est le meilleur procédé. Examiner au microscope sous un objectif à
immersion à 100 x .