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COLORATION DE GRAM &
   OBSERVATION AU
     MICROSCOPE
      Boughammoura Aïda
COLORATION DE GRAM 



  1. REALISATION D'UN FROTTIS
  2. COLORATION DE GRAM
  3. OBSERVATION AU MICROSCOPE
REALISATION D'UN FROTTIS

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bactérienne
- réaliser le frottis à partir du centre de la lame en
décrivant un mouvement circulaire
- sécher le frottis en passant la lame à la flamme du bec
bunsen (2 à 3 fois)
- fixer la préparation en flambant la lame avec l'éthanol /
acétone
- sécher la lame à la flamme
COLORATION DE GRAM
- Coloration développée en 1884 par un médecin danois
Christian Gram
- méthode de coloration la plus largement utilisée en
bactériologie
- mise en évidence de différences de nature de la paroi
bactérienne (bactéries à Gram négatif ont un peptidoglycane
plus fin que celles à Gram positif)
- se déroule en 3 temps :
1. coloration au violet de gentiane et fixation de la coloration
par le lugol
2. traitement à l'éthanol (dissolvant le violet de gentiane
décolorant les bactéries à Gram négatif)
3. contre-coloration à la fushine ou safranine (colorant en rose
les bactéries précédemment décolorées)
COMPOSITION DE LA PAROI BACTERIENNE
      Gram +                            Gram-




Peptidoglycane épais             Peptidoglycane fin
90% de la paroi                  10% de la paroi

L'éthanol traverse uniquement la paroi des bactéries à Gram
négatif (dissolution des lipides de la membrane externe) et
décolore le cytoplasme !
COLORATION DE GRAM :
PROTOCOLE
- verser quelques gouttes de violet de gentiane sur le
frottis
- attendre 1 minute
- éliminer l'excès de violet de gentiane puis avec un peu
d'eau sans insister
- plonger la lame 1 minute dans le lugol
- rincer abondamment à l'eau
- rincer à l'éthanol / acétone des 2 côtés de la lame
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- les bactéries à Gram positif apparaissent violettes

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- les vieilles cultures bactériennes peuvent donner des
résultats de Gram variables en raison de la dégradation de
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  • 1. COLORATION DE GRAM & OBSERVATION AU MICROSCOPE Boughammoura Aïda
  • 2. COLORATION DE GRAM  1. REALISATION D'UN FROTTIS 2. COLORATION DE GRAM 3. OBSERVATION AU MICROSCOPE
  • 3. REALISATION D'UN FROTTIS - nettoyer une lame de verre à l'éthanol / acétone - déposer sur une lame propre une goutte de suspension bactérienne - réaliser le frottis à partir du centre de la lame en décrivant un mouvement circulaire - sécher le frottis en passant la lame à la flamme du bec bunsen (2 à 3 fois) - fixer la préparation en flambant la lame avec l'éthanol / acétone - sécher la lame à la flamme
  • 4. COLORATION DE GRAM - Coloration développée en 1884 par un médecin danois Christian Gram - méthode de coloration la plus largement utilisée en bactériologie - mise en évidence de différences de nature de la paroi bactérienne (bactéries à Gram négatif ont un peptidoglycane plus fin que celles à Gram positif) - se déroule en 3 temps : 1. coloration au violet de gentiane et fixation de la coloration par le lugol 2. traitement à l'éthanol (dissolvant le violet de gentiane décolorant les bactéries à Gram négatif) 3. contre-coloration à la fushine ou safranine (colorant en rose les bactéries précédemment décolorées)
  • 5. COMPOSITION DE LA PAROI BACTERIENNE Gram + Gram- Peptidoglycane épais Peptidoglycane fin 90% de la paroi 10% de la paroi L'éthanol traverse uniquement la paroi des bactéries à Gram négatif (dissolution des lipides de la membrane externe) et décolore le cytoplasme !
  • 6. COLORATION DE GRAM : PROTOCOLE - verser quelques gouttes de violet de gentiane sur le frottis - attendre 1 minute - éliminer l'excès de violet de gentiane puis avec un peu d'eau sans insister - plonger la lame 1 minute dans le lugol - rincer abondamment à l'eau - rincer à l'éthanol / acétone des 2 côtés de la lame - rincer abondamment à l'eau - plonger la lame 1 minute dans la fushnine ou safranine - rincer abondamment à l'eau - sécher la lame à la flamme
  • 7. COLORATION DE GRAM : RESULTATS - les bactéries à Gram positif apparaissent violettes - les bactéries à Gram négatif apparaissent roses - les vieilles cultures bactériennes peuvent donner des résultats de Gram variables en raison de la dégradation de la paroi cellulaire
  • 8. OBSERVATION AU MICROSCOPE - grossissement x100 à immersion dans l'huile de paraffine - ouverture maximale du diaphragme