Techniques de concentration en parasitologieS/Abdessemed
les nombreux et parfois volumineux débris alimentaires, la masse des cadavres bactériens, tout cela encombra la dilution et gène l'observation microscopique. En éliminant ces éléments inutiles, en éclaircit les préparation et simultanément on augmente la concentration des parasites..
Ainsi, privés des particules sans intérêt parasitaire, les œufs et larves de vers, de même que les kystes de protozoaires éventuellement contenus dans une masse fécale volumineuse se concentrent dans un faible volume et sont immédiatement décelables
ce document s'adresse aux étudiants graduant en médecine ou en pharmacie. il explique en résumé les différents aspects épidémiologiques, cliniques et thérapeutiques relatifs aux nématodes a transmission orale
Techniques de concentration en parasitologieS/Abdessemed
les nombreux et parfois volumineux débris alimentaires, la masse des cadavres bactériens, tout cela encombra la dilution et gène l'observation microscopique. En éliminant ces éléments inutiles, en éclaircit les préparation et simultanément on augmente la concentration des parasites..
Ainsi, privés des particules sans intérêt parasitaire, les œufs et larves de vers, de même que les kystes de protozoaires éventuellement contenus dans une masse fécale volumineuse se concentrent dans un faible volume et sont immédiatement décelables
ce document s'adresse aux étudiants graduant en médecine ou en pharmacie. il explique en résumé les différents aspects épidémiologiques, cliniques et thérapeutiques relatifs aux nématodes a transmission orale
La parasitologie médicale comporte des approches différentes mais complémentaires : - les parasites et champignons microscopiques en tant qu’agents pathogènes avec leurs morphologies et leurs biologies propres.
- le parasitisme forme particulière et dépendante entre deux organismes vivant en relation étroite.
- la maladie parasitaire ou mycosique et son environnement, résultats pathologiques du contact précédent entre le parasite ou champignon et son hôte. Cette relation entre l’hôte et son parasite se situe dans un environnement influant intervenant dans l’épidémiologie et la lutte contre les grandes endémies parasitaires exotiques.
L’ examen du sédiment urinaire, particulièrement important pour mettre en évidence la présence de cristaux et d’éléments cellulaires (hématies, leucocytes, L’ examen du sédiment urinaire, particulièrement important pour mettre en évidence la présence de cristaux et d’éléments cellulaires (hématies, leucocytes, cellules épithéliales, cylindres, bactéries, levures,..) devrait être réalisé sur chaque analyse d’urine, même si aucune anomalie n’est détectée à la bandelette urinaire.
En effet, un certain nombre de prélèvements d’urine sans anomalie à la bandelette peuvent avoir un culot anormal (pyurie, bactériurie, etc).
cylindres, bactéries, levures,..) devrait être réalisé sur chaque analyse d’urine, même si aucune anomalie n’est détectée à la bandelette urinaire.
En effet, un certain nombre de prélèvements d’urine sans anomalie à la bandelette peuvent avoir un culot anormal (pyurie, bactériurie, etc).
Le diagnostic biologique du paludisme par microscopie - Conférence du 6e édition du Cours international « Atelier Paludisme » - MENARD Didier - Madagascar - dmenard@pasteur.mg
cette conférence de travaux pratique s'adresse aux étudiants graduant en sciences médicales , il aborde les aspects élémentaires de la pratique au laboratoire de microbiologie ainsi que des aspects relatifs au diagnostic microbiologique.
Le Kyste hydatique résulte du développement tissulaire de la larve ou hydatide d’un tænia échinocoque parasite à l’état adulte de l’intestin grêle des canidés. C’est une anthropozoonose cosmopolite, sévissant en zone d’élevage (ovins, bovins, caprins, porcins, camélidés, équidés, ...). L’échinococcose cystique est présente sur chaque continent sauf en Antarctique.
Echinococcus granulosus est un petit taenia du chien (4 à 6 mm) ne comportant que 3 à 5 anneaux dont le dernier occupé par un utérus ramifié rempli d’œufs.
Les milieux de culture en BactériologieS/Abdessemed
Parmi les milieux de culture, on distingue : Les milieux d'isolement qui sont le plus souvent solides et de composition simples pour permettre le développement de plusieurs espèces bactériennes. Les milieux sélectifs qui favorisent artificiellement la croissance d'une espèce au détriment des autres.
Contre les strongles gastro intestinaux chez les brebis et les agneaux :
Quand faut-il traiter ?
Avec quels produits ?
Comment éviter les résistances ?
Les solutions alternatives
La parasitologie médicale comporte des approches différentes mais complémentaires : - les parasites et champignons microscopiques en tant qu’agents pathogènes avec leurs morphologies et leurs biologies propres.
- le parasitisme forme particulière et dépendante entre deux organismes vivant en relation étroite.
- la maladie parasitaire ou mycosique et son environnement, résultats pathologiques du contact précédent entre le parasite ou champignon et son hôte. Cette relation entre l’hôte et son parasite se situe dans un environnement influant intervenant dans l’épidémiologie et la lutte contre les grandes endémies parasitaires exotiques.
L’ examen du sédiment urinaire, particulièrement important pour mettre en évidence la présence de cristaux et d’éléments cellulaires (hématies, leucocytes, L’ examen du sédiment urinaire, particulièrement important pour mettre en évidence la présence de cristaux et d’éléments cellulaires (hématies, leucocytes, cellules épithéliales, cylindres, bactéries, levures,..) devrait être réalisé sur chaque analyse d’urine, même si aucune anomalie n’est détectée à la bandelette urinaire.
En effet, un certain nombre de prélèvements d’urine sans anomalie à la bandelette peuvent avoir un culot anormal (pyurie, bactériurie, etc).
cylindres, bactéries, levures,..) devrait être réalisé sur chaque analyse d’urine, même si aucune anomalie n’est détectée à la bandelette urinaire.
En effet, un certain nombre de prélèvements d’urine sans anomalie à la bandelette peuvent avoir un culot anormal (pyurie, bactériurie, etc).
Le diagnostic biologique du paludisme par microscopie - Conférence du 6e édition du Cours international « Atelier Paludisme » - MENARD Didier - Madagascar - dmenard@pasteur.mg
cette conférence de travaux pratique s'adresse aux étudiants graduant en sciences médicales , il aborde les aspects élémentaires de la pratique au laboratoire de microbiologie ainsi que des aspects relatifs au diagnostic microbiologique.
Le Kyste hydatique résulte du développement tissulaire de la larve ou hydatide d’un tænia échinocoque parasite à l’état adulte de l’intestin grêle des canidés. C’est une anthropozoonose cosmopolite, sévissant en zone d’élevage (ovins, bovins, caprins, porcins, camélidés, équidés, ...). L’échinococcose cystique est présente sur chaque continent sauf en Antarctique.
Echinococcus granulosus est un petit taenia du chien (4 à 6 mm) ne comportant que 3 à 5 anneaux dont le dernier occupé par un utérus ramifié rempli d’œufs.
Les milieux de culture en BactériologieS/Abdessemed
Parmi les milieux de culture, on distingue : Les milieux d'isolement qui sont le plus souvent solides et de composition simples pour permettre le développement de plusieurs espèces bactériennes. Les milieux sélectifs qui favorisent artificiellement la croissance d'une espèce au détriment des autres.
Contre les strongles gastro intestinaux chez les brebis et les agneaux :
Quand faut-il traiter ?
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Comment éviter les résistances ?
Les solutions alternatives
Les causes de l’entérotoxémie, une maladie très courante en élevage ovin, sont décryptées dans ce webinaire. Une large part des discussions est consacrée aux moyens de prévention
Conszrvation des parasites et Diagnostique mycologique (PARASITOLOGIE).pptxMeryam Nom de famille
plan
Introduction.
Les différentes techniques de conservation:
-Conservation provisoire par froid.
-Méthode a l’eau formolée.
-Fixation au MIF.
-Mélange fixateur a l’alcool polyvinylique APV.
- Conservation des vers.
Examen mycologique.
-Méthode direct:
- prélèvement
- examen direct « Candida et Aspergillus »
- culture
- identification
Conclusion.
La technique de conservation en parasitologie s'intéresse à la protection et à la préservation des espèces menacées, y compris les parasites.
Une grande partie des espèces de parasites sont menacées d'extinction, en partie en raison des efforts visant à éliminer les parasites qui infectent les humains ou les animaux domestiques, ou nuisent à l'économie humaine, et aussi en raison de détérioration ou fragmentation Extinction des communautés hôtes et des espèces hôtes.
L'ECBU est un examen cytobactériologique des urines, qui permet de détecter la présence de bactéries et de cellules anormales dans les urines. C'est un examen de base couramment utilisé pour diagnostiquer les infections urinaires, qui sont des affections fréquentes touchant des millions de personnes chaque année. Les infections urinaires sont plus fréquentes chez les femmes que chez les hommes et peuvent entraîner des symptômes tels que des douleurs, des brûlures et des envies fréquentes d'uriner. Si elles ne sont pas traitées, elles peuvent causer des complications graves telles que des infections rénales et des lésions rénales irréversibles.
Dans cet exposé, nous allons explorer les aspects cliniques, diagnostiques et thérapeutiques de l'ECBU pour la détection des infections urinaires.
Aspects cliniques
Les infections urinaires sont classées en deux types : les infections urinaires basses et les infections urinaires hautes. Les infections urinaires basses, également appelées cystites, affectent la vessie et l'urètre et peuvent être accompagnées de douleurs, de brûlures et d'une envie fréquente d'uriner. Les infections urinaires hautes, également appelées pyélonéphrites, affectent les reins et peuvent causer de la fièvre, des frissons et des douleurs dorsales.
Les infections urinaires peuvent être causées par différents types de bactéries, mais la bactérie Escherichia coli est le plus souvent impliquée dans les infections urinaires basses. Les infections urinaires hautes peuvent être causées par des bactéries telles que Proteus, Klebsiella et Pseudomonas.
Les facteurs de risque pour les infections urinaires comprennent le sexe féminin, les antécédents d'infections urinaires, la grossesse, le diabète, l'utilisation de cathéters urinaires, une obstruction urinaire et une faible immunité.
Diagnostic
L'ECBU est l'examen de choix pour diagnostiquer les infections urinaires. Il est important de prélever un échantillon d'urine avant le traitement antibiotique pour éviter les faux négatifs. Pour effectuer un ECBU, le patient doit fournir un échantillon d'urine propre et stérile dans un récipient spécifique fourni par le laboratoire. L'échantillon doit être prélevé en milieu de jet pour éviter les contaminants de la flore vaginale ou péri-anale.
Le laboratoire analyse l'échantillon d'urine en examinant le nombre de bactéries présentes et en les identifiant par culture bactérienne. Le laboratoire examine également la présence de cellules anormales telles que des globules rouges et des globules blancs.
En plus de l'ECBU, des examens complémentaires tels que l'échographie rénale, la tomodensitométrie et la cystoscopie peuvent être nécessaires pour diagnostiquer les infections urinaires hautes et les complications associées.
Traitement
Le traitement des infections urinaires dépend du type d'infection et de la gravité des symptômes. Les infections urinaires basses peuvent être traitées avec des antibiot
HELMINTHES / NEMATODES (VERS RONDS )
A) ASCARIDIOSE :
-L'infestation par ASCARIS LYMBRICOIDES est très fréquente cosmopolite,
atteignant 1/4 de la population du globe.
-C'est un ver rond (10 à 30cm) blanc rosé, aux extrémités effilées
* Contamination: est orale. Les larves traversent la muqueuse gastro-duodénale, gagnent le foie, puis le poumon puis traversent la paroi alvéolaire; remontent l'arbre aérien, arrivent à l'épiglotte où elles basculent dans le tube digestif. Deviennent adulte en 8 à 10 semaines dans la lumière intestinale.
Les oeufs peuvent survivre plusieurs années dans le milieu extérieur
B-OXYROSE :
Parasitose cosmopolite bénigne mais très fréquente et tenace due à ENTEROBIUS
VERMICULUS. C'est un petit ver blanc de quelques mm, très répandu surtout chez l'enfant.
La contamination est orale.
Les vers adultes vivent dans le cæcum.
Les femelles migrent la nuit pour aller pondre dans la région péri-anale. Les œufs provoquent une irritation et un prurit responsable de grattage et de la contamination des doigts de l'enfant qui les transmet à la bouche soit directement soit indirectement via les aliments ou les boissons.
ANGUILLULOSE: est due à la présence dans la paroi duodénale d'un ver:
Strongyloides stercoralis
Ver rond 2 à 3 mm.
Contamination:
L'infection résulte de la pénétration trans cutanée de larves qui, par voie sanguine, sont transportées jusqu'aux poumons puis l'arbre aérien et enfin le tube digestif. Les femelles vivent dans les cryptes du duodénum. Les oeufs éclosent dans l'intestin et donnent naissance à des larves qui sont éliminées dans les selles.
ANKYLOSTOMIASE:
Les Ankylostomes sont des vers ronds de 5 à 20 mm long.
2 espèces : Necator americanus.
Ankylostoma duodenale
parasitent l'intestin humain
Le caractère particulier de ces vers est leur hématophagie responsable d’anémie parfois grave.
Contamination:
La voie d'infestation est transcutanée pour N. Americanus, transcut. et orale pour
A. duodenale. Les vers se fixent sur la muqueuse duodénale et se nourrissent de sang.
CESTODES:
VËRS.PLATS
Les C. sont des V. plats, rubannés, segmentés, sans tube digestif, hermaphrodites.
Toenia Saginata :
L'infection est provoquée par l'ingestion de viande de boeuf crue ou peu cuite, contenant des larves. La larve est libérée dans l'estomac et la tête ou scolex se fixe sur des ventouses à la muqueuse du grêle sup. Lorsqu'il parvient à maturité il mesure 4 à 5m et compte 1000 à 2000 anneaux. Le ver se nourrit aux dépens du contenu intestinal.
des informations sur l'ensemble des analyses: physique, chimique (par les bandlettes urinaires), microscopiques.
des informations sur le but d'analyser les urines, le prélévement des urines, des précautions et interprétation des résultats d'analyse surtout chimique
Newsletter SPW Agriculture en province du Luxembourg du 03-06-24BenotGeorges3
Les informations et évènements agricoles en province du Luxembourg et en Wallonie susceptibles de vous intéresser et diffusés par le SPW Agriculture, Direction de la Recherche et du Développement, Service extérieur de Libramont.
https://agriculture.wallonie.be/home/recherche-developpement/acteurs-du-developpement-et-de-la-vulgarisation/les-services-exterieurs-de-la-direction-de-la-recherche-et-du-developpement/newsletters-des-services-exterieurs-de-la-vulgarisation/newsletters-du-se-de-libramont.html
Bonne lecture et bienvenue aux activités proposées.
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M2i Webinar - « Participation Financière Obligatoire » et CPF : une opportuni...M2i Formation
Suite à l'entrée en vigueur de la « Participation Financière Obligatoire » le 2 mai dernier, les règles du jeu ont changé !
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Au cours de ce webinar de 20 minutes, co-animé avec la Caisse des Dépôts et Consignations, découvrez tous les détails actualisés sur les dotations et les exonérations, les meilleures pratiques, et comment maximiser les avantages pour les entreprises et leurs salariés.
Au programme :
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- Quelles incidences pour les titulaires ?
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Méthodologie de recherche et de rédaction de mémoire.pptx
conduite a tenir devant un prélèvement de selles en parasitologie
1. Conduite à tenir devant
un prélèvement de
selles en parasitologie
BENAISSA Youssef
Université Djilali Liabes
Faculté de médecine
Département de pharmacie
4éme année (2017/2018)
2. I. introduction
• Divers prélèvements sont achemines chaque jour au laboratoire de
parasitologie soit au mieux réalisés au seins même au laboratoire.
• Pour orienter le biologiste dans sa recherche, chaque prélèvement
doit être accompagne dune fiche de renseignement portant sur:
L'identité du malade
Nature du prélèvement
Signes cliniques
Orientations biologiques
Signes radiologiques
3. L'identité du malade
• Nom
• Prénom
• Age
• Sexe
• Adresse (habitat)
• Profession (actuel et ancienne)
4. Nature du prélèvement
• Selles
• Urines
• Sang
• LCR
• LBA
• Crachat (prélèvement moins sensible)
• Cutané
6. Orientations biologiques
• Hémogramme: c'est le plus important ; il permet de déceler une
anémie et/ou une hyperéosinophilie donc d'évoquer certaines
parasitoses.
• Vitesse de sédimentation.
• Bilans biochimiques divers.
7. Signes radiologiques
• La vision de vers dans le duodénum par examen radiologique (transit
oeso-gastroduodénal)est classique.
• L'échographie, la scintigraphie apportent également des
informations précieuses pour les atteintes hépatiques.
• Pour le côlon, la radiographie et la coloscopie peuvent objectiver des
lésions amibiennes (amoebome) ou permettre de repérer certains
vers (trichocéphale).
8.
9. II. Conduit a tenir devant un prélèvement de
selles
• Moment de prélèvement
• conditions de prélèvement
• La conservation du prélèvement
• La macroscopie du prélèvement
• L'examen microscopique du prélèvement
• Le résultat
• Recommandations
10. conditions de prélèvement
• Eviter les aliments qui laissent beaucoup de résidus (crudités
notamment peau de tomates, pommes de terre, petits pois, peau de
pêche, poires, figues), ou des graisses ( noix, olives, cacahuètes,
avocats).
• prescrire au patient un régime alimentaire à faible résidu pendant les
3 jours qui précèdent le prélèvement,(ex: pâtes, riz, poisson).
• Eviter les salade cuite, épinards parce qu'ils augmentent le volume
fécal.
• En cas de diarrhée, préférer l’émission des selles au laboratoire pour
un examen dans l’heure qui suit.
11. • Médicaments à interrompre si cela est thérapeutiquement possible:
• tous les antiseptiques intestinaux qui, même s'ils ne sont pas totalement
amoebicides sont souvent amoebostatiques et induisent des résultats
faussement négatifs
• les antibiotiques et les sulfamides qui, en agissant sur la flore intestinale,
nuisent aux protozoaires et dont certains réduisent peut-être la fréquence de
ponte des vers (aucune étude effectuée sur le sujet)
• les laxatifs ou adsorbants intestinaux divers (charbon, mucilages). On fera
cesser l'absorption des huiles de régime qui sont en réalité de l'huile de
paraffine.
• les produits opaques utilisés en radiologie, en particulier les composés
barytes.
• S’abstenir de prendre des médicaments à base de charbon, de sels de
baryum, de magnésie, d’huiles purgatives, suppositoires, plusieurs jours
avant d’envisager l’examen.
12. • Pour le récipient:
• Pour pouvoir observer la totalité de la selle, une boîte en matériau
transparent est recommandée. Elle devra se fermer facilement après
usage.
• Sa contenance minimale doit être de 500 ml et son ouverture
suffisante (10 à 15 cm de diamètre au minimum).
• Un récipient trop grand laisserait la possibilité de souillure par les
urines, en particulier pour les femmes, même en ayant recommandé
à celles-ci d'uriner avant la défécation.
• et bien sure doit être stérile.
• A couvercle hermétique
13. • Le prélèvement doit être réalisé au laboratoire de préférence
• Si réalisé a domicile : délai d'acheminement doit pas dépasser 1h
• Si examen différé, utiliser un fixateur ou milieu de transport, ex:
• P.A.F:phenol, alcool, formol
• P.V.A:alcool polyvinylique
• M.I.F:merthiolate,iode,formol
CONSEQUENCES D’UN RETARD A EFFECTUER
L’EXAMEN
• une baisse de la température du prélèvement qui risque de lyser les
protozoaires sous forme végétative.
• Dans les pays chauds :il y a le risque de la dessiccation des selles et les
germes et les mycètes se multiplient intensément, ce qui fausse
l'examen direct.
14. La conservation du prélèvement
• Conservez votre échantillon de selles à 15-25°C si possible.
• PAS DE CONGELATION, NI DE CONSERVATION AU FRAIS.
• On peu utiliser le formol avec différentes concentrations selon
la consistance des selles
• On peu utiliser aussi :
lAlcool polyvinylique
30% 10% 5%
Liquide semi liquide dure
15. La macroscopie du prélèvement
• La consistance de la selle
• La couleur de le selle
• Présence d'éléments non parasitaires
• Présence d'éléments parasitaires
16. La consistance de la selle
• Selle liquidienne (rarement parasitaire)
• Semi-liquide, hétérogène
• Dure, spongieuse
• Grumeleuse ( excès de féculents non digérés)
• Aspect de pate a modeler (abondance de lipides) on recherchera
particulièrement les oeufs d'helminthes et les kystes de protozoaires
17. La couleur de le selle
• Normal: brune due a la présence se stercobiline
• Noire: présence de sang, médication colorant les selles (bismuth,
charbon)
• Verte, ocre
• décolorée
18. Présence d'éléments non parasitaires
• On doit noter la présence d’éléments non parasitaires :
• Mucus: mélangé a la selles ou l'enrobant
• sang: enrobe totalement ou partiellement la selle, on s'attachera à
rechercher avant tout les formes végétatives des protozoaires.
• résidus alimentaires: dus à la diarrhée, à une insuffisance de
digestion
• desquamation de la muqueuse intestinale.
19. Présence d'éléments parasitaires
• Il faut observer la présence éventuelle de certains parasites :
• Nématodes : Oxyures et Ascaris adultes.
• Cestodes : anneaux de Tænia (parfois animés de mouvements),
scolex recherchés après thérapeutique.
• Trématodes : ce n’est qu’à la suite d’une thérapeutique que les
Douves adultes peuvent être expulsées.
20. Les Nématodes seront lavés en eau physiologique, puis fixés au
Demke, Le fixateur doit être versé bouillant sur les vers, dans un
récipient que l’on ferme ; il doit agir au moins 2 heures.
Les Cestodes doivent être lavés en eau physiologique puis éclaircis au
Chloral-lactophénol :L’éclaircissement s’effectue entre lame et
lamelle au dessus de la veilleuse du bec de gaz en renouvelant le
réactif au fur et à mesure de son évaporation
Les Trématodes, d’abord lavés en eau physiologique devront subir
ensuite un relâchement une nuit à 4°C dans de l’eau ordinaire, et
seront enfin fixés par le réactif de Demke.
22. Examen direct
la nature et la consistance du prélèvement
Glaires muqueuses ou
muco-sanguinolentes
Selles liquides
ou en bouse
Selles moulées
23. 1 – Glaires muqueuses ou muco-sanguinolentes
• Recherche de formes végétatives d’amibes, d’oeufs de Schistosomes.
• Utiliser de préférence, une platine chauffante à 37° C.
• A l’aide d’un ensemenceur, prélever un fragment de glaire que l’on examinera
entre lame et lamelle. Repérer les formes végétatives grâce à leur mouvement,
noter l’hématophagie.
• L’identification des formes végétatives peut être facilitée par une coloration au VF
ou au Lugol.
La chromatine ressort
par contraste sur le
cytoplasme beige clair.
les structures nucléaires
apparaissent foncées, le
cytoplasme rose.
24. 2 – Selles liquides ou en bouse
• Recherche de formes végétatives et de kystes de Protozoaires,
Coccidies, Microsporidies, oeufs et larves d’Helminthes.
• Mêmes précautions que précédemment concernant les formes
végétatives.
25. 3 – Selles moulées
• Recherche de kystes de Protozoaires, d’oeufs et larves d’Helminthes.
• L’examen direct sera effectué parallèlement à la dilution avec le
réactif de concentration Acéto-Acétique.
• Cas particulier d’une suspicion de Bilharziose : effectuer un examen
direct d’une dilution du produit de raclage de la surface des selles.
26. Techniques de concentration
On appelle concentrations les techniques par lesquelles on essaie, à partir de la grande
quantité de matières fécales recueillies, d'obtenir dans un faible volume les oeufs, larves,
kystes voire formes végétatives fixées de parasites par élimination des résidus de la digestion.
Méthodes physico-chimiques Méthodes par éclaircissement
Techniques de sédimentation Techniques de flottation Techniques diphasiques
Méthodes biologiques
• Méthode de Willis
• Technique de Faust simplifiée
• Méthode de Janeckso urbanyi
• Méthode de TELEMAN RIVAS
• Méthode de BAILENGER
• Méthode de RITCHIE modifiée
Technique de kato Technique de
baermann
27. méthodes Intérêt Inconvénients Déroulement
sédimentation recommandée pour les
larves d'anguillule et les
oeufs d'ascaris non
fécondés
• De nombreuses cellules
végétales (féculents en
particulier) sédimentent
aussi vite que les
parasites recherchés
• l'examen
microscopique n'est pas
toujours facile.
Dix à vingt grammes de selles sont dilués dans 250 à 500 ml d'eau du robinet et le filtrat laissé dans un
verre à pied.
Après une heure, le surnageant est rejeté et le sédiment remis en suspension dans une même quantité
d'eau.
La même manipulation est renouvelée plusieurs fois jusqu'à obtention d'un liquide surnageant clair,
Le culot est alors examiné.
flottation
Willis simplicité d'exécution, de
la rapidité et d'un faible
prix de revient (eau
chlorurée
sodique).
Elle concentre bien les
oeufs d'ancylostomidés et
d'hyménolépidés.
La solution de chlorure de
sodium pénètre assez
facilement dans les oeufs
et il ne faut pas dépasser le
temps prescrit dans le
déroulement de la
technique.
Les selles sont diluées au dixième environ dans une solution aqueuse de chlorure de sodium à
saturation (25 grammes dans 100 ml environ; densité 1 200), puis filtrées rapidement.
La suspension obtenue est versée dans un tube jusqu'à la limite supérieure (léger bombement du
liquide au dessus du bord). On place alors délicatement une lamelle qui doit recouvrir tout le tube sans
bulle d'air.
Un quart d'heure plus tard on retire la lamelle qui est déposée sur une lame et la lecture de la
concentration est effectuée avant évaporation de l'eau et cristallisation du sel ce qui, en pays chaud,
peut se produire rapidement.
Faust
simplifiée
Alors que la méthode
originale exige plusieurs
sédimentations dans l'eau
par
centrifugation, avant la
flottation, dans la méthode
simplifiée on se contente
d'une seule centrifugation.
Cette méthode ne permet
guère de trouver plus
d'oeufs que la méthode de
Willis.
Elle exige l'utilisation d'une
centrifugeuse.
Les selles sont diluées au dixième environ dans une solution saturée de sulfate de bzinc (sulfate de zinc
331 g, eau qsp 1000 ml), tamisées et centrifugées environ une minute à 2300 tours/minute. Dès l'arrêt
de la centrifugation, on prélève à l'anse métallique la couche superficielle qui contient les oeufs et on la
dépose sur une lame pour examen.
Janeckso
urbanyi
concentre bien les oeufs
de grande douve, de
schistosornes et
d'ancylostomidés ainsi que
les larves d'anguillule
Elle concentre assez bien
les embryophores de ténia
et les oeufs de
trichocéphale.
La solution iodo-
mercurique est toxique
inefficace pour trouver les
kystes sauf ceux de giardia.
Trois à cinq grammes de selles sont triturés dans 20 ml de la solution iodomercurique (bi iodure de
mercure 150 g, iodure de potassium 110 g et eau 400 ml).
Pour préparer la solution : dissoudre l'iodure dans un peu d'eau, ajouter le bi iodure en remuant, puis
après dissolution complète, ajouter le reste de l'eau. La densité obtenue est de 1 440.
Après tamisage, le filtrat est centrifugé à 2 500 tours/mn pendant 3 à 4 minutes.
La couche superficielle recueillie à l'aide d'une anse ou d'une baguette de verre aplatie en spatule est
examinée au microscope dans le quart d'heure qui suit.
28.
29. méthodes Intérêt Inconvénients DéroulementDiphasiques
TELEMAN
RIVAS
Facile à pratiquer, rapide, cette
technique concentre bien les parasites
les plus courants (Giardia, Entamoeba
et oeufs de trichocéphale).
La coque des kystes d'Entamoeba
histolytica se dédouble lors de la
centrifugation ce qui est un argument
diagnostique intéressant
Les oeufs de bilharzies,
d'ascaris ou de grande douve
restent dans la couche
lipophile: c'est donc une
méthode à déconseiller dans
les pays où sévissent ces
parasitoses.
Le principe de ces techniques est de
mélanger les selles avec une solution
déterminée puis d'agiter le tout avec de
l'éther avant de centrifuger pour recueillir
oeufs et kystes.
BAILENGER Elle est beaucoup plus fiable dans la
recherche des kystes et des oeufs se
concentrant bien dans un pH aux
environs de 5 (giardia, amibes,
trichocéphale, ankylostome)..
Pour rechercher les oeufs de
schistosome une autre
technique est nécessaire.
Les manipulations sont identiques à celles
de la méthode de Telemann et Rivas.
RITCHIE
modifiée
Elle concentre bien les oeufs d'ascaris
et de schistosome.
Le culot souvent volumineux
est de lecture difficile.
Mis à part le liquide de dilution, la
technique est la même que pour la
concentration de Teleman-Rivas.
30.
31. Technique de kato
• Principe : C’est une technique de décoloration des selles qui permet de
distinguer les oeufs de parasites dans une préparation des selles rendue
translucide.
• Réactif et matériel : Solution de glycérine-vert malachite
• Glycérine …………………………………………………………………..100 ml
• Eau distillée ……………………………………………………………….100 ml
• Solution de vert malachite à 3 %...................................... 1 ml
• Bandes de cellophane adhésive de 20 x 30 mm immergées dans la solution
de glycérine pendant 24 heures.
• Technique:
• Sur une lame porte-objet, déposer 50 mg de selles, recouvrir par une des bandes de
cellophane imprégnée, presser à l’aide d’un bouchon de caoutchouc pour répartir
régulièrement la selle;
• laisser éclaircir une heure à température ambiante.
• Examiner rapidement car un sur-éclaircissement risquerait de faire passer inaperçu
certains œufs (Ankylostomes, Schistosomes).
• Les résultats sont rendus en nombre d’oeufs par gramme de selles.
32. Méthode de Baermann
• Principe:
• Les larves rahbditoïdes d'anguillule ont un hydrothermotropisme positif. En mettant en contact
des selles contenant des larves avec de l'eau chaude celles-ci seront attirées vers l'eau où elles
seront facilement repérées.
• Appareillage:
• Le plus simple est d'utiliser un entonnoir à robinet, à défaut pourra être employé un entonnoir
ordinaire se terminant par un tuyau de caoutchouc fermé d'une pince de Mohr.
• Dans cet entonnoir sera disposée une passoire métallique tapissée d'une voire deux couches de
papier fin (papier Kleenex dédoublé).
• Technique
• De l'eau chauffée à 45° est versée dans l'entonnoir jusqu'à mi-hauteur. La passoire métallique est
remplie de selles, pâteuses de préférence. Lorsque la passoire est placée dans l'entonnoir les selles
doivent affleurer le niveau de l'eau chaude.
• Deux à trois heures plus tard, l'eau est soutirée soit dans une boîte de Pétri que l'on examine à un
fort grossissement de loupe binoculaire soit dans un tube à centrifuger. Après 5 minutes de
centrifugation à 1500 à 2000 tours/minute, on regarde le culot.
• Résultat
• Si les selles sont assez récemment émises, si leur consistance permet la circulation des larves, les
chances de déceler ces dernières sont considérablement augmentées par rapport aux méthodes de
concentration habituelles.
33. Techniques de coloration
l’examen parasitologique après coloration a des indications, en effet il est d’un grand secours dans l’identification et le
diagnostic différentiel entre espèce amibe essentiellement sous forme végétative, il est indispensable aussi pour le
diagnostic de certains protozoaire tel que cryptosporidies et Microsporidies
Entre lame et lamelle Sur lame En tube histologique
• Lugol
• MIF
zIEHL-NEELSEN
modifiée
MIF
• hématoxyline ferrique
• Trichrome (Webber)
• AVP trichrome
• KOHN noir chlorazol
39. Le résultat
• Le compte-rendu devra donc exprimer dans l'ordre :
• les modalités du prélèvement (par exemple : selle émise au laboratoire ou
selles apportées) ;
• l'aspect macroscopique de la selle éventuellement son pH ;
• l'aspect microscopique sans et après coloration en précisant quelles
techniques de coloration ont été effectuées ;
• les techniques de concentration et les techniques spécifiques utilisées ;
• le nom et le nombre de parasites observés.
40. Recommandations• Amoebose
• Un examen parasitologique des selles doit être systématiquement prescrit 3 à 4 semaines après traitement afin de vérifier
l'absence de portage chronique de kystes d'amibes.
• Giardiose
• Un contrôle des selles 1 mois après la fin du traitement est conseillé. La persistance des parasites doit faire évoquer une
nouvelle contamination par défaut de respect des règles d'hygiène, une réinfection familiale ou un échec du traitement.
• Oxyurose
• En raison du cycle parasitaire, un nouveau traitement doit être administré 2 à 3 semaines après pour éviter l'auto-infestation et
la réinfestation Devant l'importante contagiosité,
• il est nécessaire de traiter simultanément tous les membres de la cellule familiale ou si possible de la collectivité.
• Anguillulose
• Tout sujet ayant vécu en zone d'endémie doit recevoir un traitement préventif avant toute corticothérapie au long cours, surtout
s'il présente une hyperéosinophilie sanguine, même modérée.
• Schistosomoses, ou bilharzioses
• Le traitement anti bilharzien ne doit pas être commencé en phase d'invasion car il peut aggraver la symptomatologie.
• Taeniasis
• il faut prescrire un contrôle parasitologique 3 mois après traitement .
• cysticercose
• Le traitement médicale nécessite une surveillance neurologique et, souvent, une corticothérapie associée pour éviter le
développement d'une hypertension intracrânienne qui pourrait résulter d'une lyse parasitaire intense