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Susceptibilité des larves de la chenille légionnaire
d’automne, Spodoptera frugiperda, aux souches de virus
de la polyédrose nucléaire (VPN)
Le présent travail vise à rechercher les conditions de
susceptibilité de S. frugiperda à 4 souches de virus de la
polyédrose nucléaire (VPN) (ARG, UNAL, FX, NIC) sur la
production de semence de maïs.
Plus spécifiquement, ce travail a pour objectifs :
(i) d’évaluer la pathogénicité de quatre souches du virus de la
polyédrose nucléaire sur S. frugiperda;
(ii) de déterminer la souche et la concentration du virus de la
polyédrose nucléaire la plus virulente au laboratoire.
•La virulence de quatre souches (Figure2) est testée sur les larves du 3ème
stade précédemment mises à jeun pendant 6 heures.
•Vingt larves de troisième stade de S. frugiperda ont été utilisées dans un
dispositif de bloc complètement aléatoire avec trois répétitions par
concentration, soit soixante larves par souche. Les larves ont été nourries
au maïs germé (Figure3).
•Au total, trois cent larves de S. frugiperda ont été utilisées avec chaque
concentration en plus des témoins.
•Aussi, ces souches ont été utilisées à différentes doses à savoir: 107 ,108 et
109 POB / ml.
Les taux moyens de mortalité des larves L3 de S. frugiperda
traitées avec les différentes souches du virus enregistrés
étaient de 80,0 ± 5,8%, 40,0 ± 10,4%, 63,3 ± 4,4%, 68,3 ±
4,4% et 7,3 ± 2,5% pour respectivement les souches ARG,
UNAL, FX, NIC et les témoins, 15 jours après application
(Figure 4).
Les taux moyens de mortalité étaient de 95,0 ± 2,9%, 86,7 ± 7,3%, 75,0 ±
2,9%, 83,3 ± 9,3% et 3,3 ± 0,8%, pour respectivement les souches virales
ARG, UNAL, FX, NIC et les témoins, 15 jours après application (Figure
5).
Au regard de tout ce qui précède, on peut conclure que l’utilisation d’un virus de type NPV est une alternative efficace potentielle pour
contrôler S. frugiperda. Il faudrait mener d’autres études sur d’autres stades larvaires afin de mieux comprendre la relation entre les différents
stades larvaires et les différentes concentrations.
Abrahams, P., Beale, T., Cock, M., Corniani, N., Day, R., Godwin, J., Murphy, S., Richards, G., Vos, J., 2017. Fall Armyworm Status. Impacts and control options in
Africa: Preliminary Evidence Note. 14p.
Adamczyk, J. J. Jr., Leonard, B. R., Graves, J. B., 1999. Toxicity of selected insecticides to fall armyworms (Lepidoptera: Noctuidae) in laboratory bioassay studies.
Florida Entomologist, 82(2): 230-236.
Cabi, 2017. Scientists discover new crop-destroying Armyworm is now "spreading rapidly" in Africa. Wallingford, UK: CABI.
Kenzi, M. Z., Wahaj, M., 2016. Ėtude sur l’alimentationdu poulet de chaire à base du maïs Zenata et Ain kebira. Mémoire pour l’obtention du diplôme Master en
Agronomie, Option : Technologie des industries agroalimentaires Faculté des Sciences de la nature et de la vie. Université ABOU- BAKR BELKAID Tlemcen, 5-73.
Sellami, S., Tounsi, S., Jamoussi, K., 2015. La Lutte biologique, alternative aux Produits phytosanitaires chimiques. Journal of new science, 19(5): 1-8
Figure 6: Valeur des DL 50 suite à l’infestation des larves L3
de S. frugiperda à différentes doses de NIC
Figure 7: Valeur des DL 50 suite à l’infestation des larves L3
de S. frugiperda à différentes doses de ARG
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mortalit
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Jours après inoculation
Témoin SfNPV-ARG SfNPV-UNAL SfNPV-FX SfNPV-NIC
Figure 4: Taux moyens de mortalité des larves de S. frugiperda
avec différentes souches du virus à la concentration de 108 POB/ml
Figure 5: Taux moyens de mortalité des larves de S. frugiperda avec
différentes souches du virus à la concentration de 109 POB/ml
Les figures 6 et 7 illustrent les variations de la dose
létale tuant 50% de larves (DL 50) en 5 jours suite à
l’infestation des larves de troisième stade par les
différentes souches de virus.
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(conidies/insecte)
Jours après inoculation
DL50 IC haut
IC bas
Tel:+229-96999663
E-mail:alamouthophile@gmail.com
Figure 2: Les souches du virus Figure 3: Le maïs germé
Figure1a: Larves de S. frugiperda
(Prasanna et al., 2018)
Figure1c: Adulte de S. frugiperda
( Prasanna et al., 2018)
Le maïs (Zea mays L.) est devenu la céréale la plus consommée dans le monde devant le riz et le blé (Kenzi et al., 2016), mais sa culture est
menacée par certains bioagresseurs, notamment la chenille légionnaire d’automne (Figure1a, 1b, 1c), Spodoptera frugiperda (J.E. Smith) (Cabi,
2017) qui inflige un impact considérable sur le rendement. La stratégie la plus utilisée pour lutter contre ce ravageur est l’utilisation d'insecticides
chimiques de synthèse et des variétés génétiquement modifiées (maïs Bt). Cependant, l’espèce développe régulièrement une résistance face à
plusieurs pesticides et à certaines variétés de maïs transgénique (Adamczyk et al., 1999; Abraham et al., 2017). Récemment, d'autres alternatives
plus prometteuses de lutte contre les insectes ravageurs ont été développées et sont axées par exemple sur la lutte microbiologique (Sellami et al.,
2015). C’est le cas de l’utilisation des virus pour combattre l’insecte.
1. Introduction
2. Objectifs
3. Méthodes
4. Résultats
5. Conclusion et suggestion
Références bibliographiques
Figure 1b: Maïs attaqué par
S. Frugiperda ( Hama et al., 2016)
Ben-ally Akintola ALAMOU1, Appolinaire ADANDONON1, Ouorou Kobi DOURO KPINDOU2, Ghislain TEPA YOTTO1;2
1 Ecole de Gestion et de Production Végétale et Semencière (EGPVS), Université Nationale d’Agriculture (UNA) 2 Institut International d'Agriculture Tropicale (IITA)
RÉPUBLIQUE DU
BÉNIN
MINISTÈRE
DE L'ENSEIGNEMENT SUPÉRIEUR
ET DE LA RECHERCHE
SCIENTIFIQUE
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Témoin SfNPV-ARG SfNPV-UNAL SfNPV-FX SfNPV-NIC
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Log(DL50)
(conidies/insecte)
Jours après inoculation
DL50 IC haut
IC bas
Cette dose est de 2.39 x 1016 POB/insecte pour la
souche NIC (Figure 6) et de 2,25x1012 POB/insecte pour
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Il faudrait mener d’autres études sur d’autres stades larvaires afin de mieux comprendre la relation entre les différents stades larvaires et les différentes concentrations. Abrahams, P., Beale, T., Cock, M., Corniani, N., Day, R., Godwin, J., Murphy, S., Richards, G., Vos, J., 2017. Fall Armyworm Status. Impacts and control options in Africa: Preliminary Evidence Note. 14p. Adamczyk, J. J. Jr., Leonard, B. R., Graves, J. B., 1999. Toxicity of selected insecticides to fall armyworms (Lepidoptera: Noctuidae) in laboratory bioassay studies. Florida Entomologist, 82(2): 230-236. Cabi, 2017. Scientists discover new crop-destroying Armyworm is now "spreading rapidly" in Africa. Wallingford, UK: CABI. Kenzi, M. Z., Wahaj, M., 2016. Ėtude sur l’alimentationdu poulet de chaire à base du maïs Zenata et Ain kebira. Mémoire pour l’obtention du diplôme Master en Agronomie, Option : Technologie des industries agroalimentaires Faculté des Sciences de la nature et de la vie. Université ABOU- BAKR BELKAID Tlemcen, 5-73. Sellami, S., Tounsi, S., Jamoussi, K., 2015. La Lutte biologique, alternative aux Produits phytosanitaires chimiques. Journal of new science, 19(5): 1-8 Figure 6: Valeur des DL 50 suite à l’infestation des larves L3 de S. frugiperda à différentes doses de NIC Figure 7: Valeur des DL 50 suite à l’infestation des larves L3 de S. frugiperda à différentes doses de ARG 0,0% 20,0% 40,0% 60,0% 80,0% 100,0% 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 mortalit é Jours après inoculation Témoin SfNPV-ARG SfNPV-UNAL SfNPV-FX SfNPV-NIC Figure 4: Taux moyens de mortalité des larves de S. frugiperda avec différentes souches du virus à la concentration de 108 POB/ml Figure 5: Taux moyens de mortalité des larves de S. frugiperda avec différentes souches du virus à la concentration de 109 POB/ml Les figures 6 et 7 illustrent les variations de la dose létale tuant 50% de larves (DL 50) en 5 jours suite à l’infestation des larves de troisième stade par les différentes souches de virus. 0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 Log(DL50) (conidies/insecte) Jours après inoculation DL50 IC haut IC bas Tel:+229-96999663 E-mail:alamouthophile@gmail.com Figure 2: Les souches du virus Figure 3: Le maïs germé Figure1a: Larves de S. frugiperda (Prasanna et al., 2018) Figure1c: Adulte de S. frugiperda ( Prasanna et al., 2018) Le maïs (Zea mays L.) est devenu la céréale la plus consommée dans le monde devant le riz et le blé (Kenzi et al., 2016), mais sa culture est menacée par certains bioagresseurs, notamment la chenille légionnaire d’automne (Figure1a, 1b, 1c), Spodoptera frugiperda (J.E. Smith) (Cabi, 2017) qui inflige un impact considérable sur le rendement. La stratégie la plus utilisée pour lutter contre ce ravageur est l’utilisation d'insecticides chimiques de synthèse et des variétés génétiquement modifiées (maïs Bt). Cependant, l’espèce développe régulièrement une résistance face à plusieurs pesticides et à certaines variétés de maïs transgénique (Adamczyk et al., 1999; Abraham et al., 2017). Récemment, d'autres alternatives plus prometteuses de lutte contre les insectes ravageurs ont été développées et sont axées par exemple sur la lutte microbiologique (Sellami et al., 2015). C’est le cas de l’utilisation des virus pour combattre l’insecte. 1. Introduction 2. Objectifs 3. Méthodes 4. Résultats 5. Conclusion et suggestion Références bibliographiques Figure 1b: Maïs attaqué par S. Frugiperda ( Hama et al., 2016) Ben-ally Akintola ALAMOU1, Appolinaire ADANDONON1, Ouorou Kobi DOURO KPINDOU2, Ghislain TEPA YOTTO1;2 1 Ecole de Gestion et de Production Végétale et Semencière (EGPVS), Université Nationale d’Agriculture (UNA) 2 Institut International d'Agriculture Tropicale (IITA) RÉPUBLIQUE DU BÉNIN MINISTÈRE DE L'ENSEIGNEMENT SUPÉRIEUR ET DE LA RECHERCHE SCIENTIFIQUE a b 0,0% 20,0% 40,0% 60,0% 80,0% 100,0% 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 mortalité Jours après inoculation Témoin SfNPV-ARG SfNPV-UNAL SfNPV-FX SfNPV-NIC c Remerciement: 0 20 40 60 80 100 120 140 160 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 Log(DL50) (conidies/insecte) Jours après inoculation DL50 IC haut IC bas Cette dose est de 2.39 x 1016 POB/insecte pour la souche NIC (Figure 6) et de 2,25x1012 POB/insecte pour la souche ARG (Figure 7).