SP Entomologie - Séances pratiques de la 4e édition du Cours international « Atelier Paludisme » - Jocelyn RATOVONJATO - Institut Pasteur de Madagascar - ratov@pasteur.mg

1. Travaux Dirigés :
Les techniques entomologiques
du paludisme
Atelier sur le Paludisme, IP Madagascar 22 mars 2006

2. F Rodhain,

3. Rôles des services d’entomologie
dans le contrôle du paludisme
Identifier les vecteurs responsables de la transmission
Fournir des informations de base sur les espèces vectrices
(relations vecteur/écologie, vecteur/parasite, vecteur/hôte, comportement)
– Surveiller l’impact des mesures de lutte
Participer à la formation

4. Définition d’un vecteur :
« Arthropode hématophage assurant la transmission biologique
active d’un agent pathogène d’un vertébré à un autre vertébré »
In : Précis d’Entomologie Médicale et Vétérinaire, F RHODAIN, C PEREZ

7. Les insectes ailés
Anophèles Aèdes
Culex Mansonia
Haemagogus
Moustiques
7-10 mm
Phlebotomes
3-4 mm
Simulies
2-3 mm
Culicoïdes
1 mm
Nematocères
Corps long
Antennes longues
Glossine
Brachycères
Corps court
Antennes courtes
Diptères
1 paire d'ailes
Source : A Spiegel, Cours CAIMR, IP Paris 2005

8. Nymphe (1-2jours) Œuf (2-3jours)
larve( (7 -21jours)
adulte (21 - 28jours)
Stade aérien
Stades aquatiques
Cycle biologique de moustique

9. Les captures

11. Méthodes de captures :
aspects qualitatifs

12. Lieux et et méthodes d’échantillonnage
• Moustiques agressifs :
sur homme à l’intérieur et à l’extérieur
(Endophagie/exophagie)
• Moustiques au repos :
par pyréthrage dans les maisons
abris extérieurs (Puits de MT, étable, etc.…)
(Endophilie/exophilie)
• Autres méthodes de piégeage : piège lumineux , à odeur, etc…
CAIMR,2005
IPM
IPM
IPM

13. Quel moustique capturé ?
Identification (1)

14. Quel moustique capturé ?
=> identification (2)
! "
IPMIPM

15. Principales parties du moustique

16. femelle mâle

17. Nervures d’une aile d’Anophèle

18. Pattes de moustique

19. Clé de détermination des adultes
Ex 1 : clé de genre
1. Abdomen sans écailles ou, au moins, avec les sternites largement chauves.
Palpes de la femelle presque aussi longs que la trompe ............................
………………………………………………………………………………Genre A
2 . Trompe rigide, à partie distale plus mince et recourbée vers le bas.
………………………………………………………………................... ..Genre B
– Trompe flexible, non effilée et recourbée dans sa partie distale.
Ex 2 : clé de genre
…
8 - Abdomen rarement à marques métalliques argentées ; si oui, le thorax n’est pas jaune ;
paratergites étroit et ordinairement écailleux………………………Genre C
…
7 (8) Pulvilli présents. Ecailles alaires étroites. Pattes sans
anneaux blancs…………………………………………………………...Genre D

20. #
$
Branchies sur le
9e segment
%& " '
Dessin : Éric Dufour
#

22. 1. Siphon absent……………………………………...Genre E
siphon présent ……………………………………………..2
2. Une grande plaque latérale chitineuse sur le 8ème
segment abdominal ………………………………………3
cette plaque absente ……………………………………..6
3. Brosses buccales modifiées (prédatrices) en fortes
épines courbées peu nombreuses. Peignes absents :
……………………………………………………….Genre F
Clé de détermination des larves

23. R
identification des complexes d’espèces
Par PCR
<= >Critères morphologiques
Quel moustique capturé ?
=> identification (3)
assistée par ordinateur

24. • estimation de la densité (dite anophélienne)
ex : densité/maison/jour
• nombre moyen de vecteurs piquant un homme/unité de temps
(souvent par nuit) <=>ma,
• rythme nycthéméral d'agressivité
• rythme saisonnier d'agressivité
Méthode de capture :
aspects quantitatifs

25. 6,9397,6586,220moyenne
0,3035
1,8165
0,6705
1,1455
1,6775
1,0175
2,874
3,942
31,577
18,565
10,393
9,2925
0,161
1,410
0,930
0,091
0,474
0,590
4,514
3,661
38,032
24,120
12,123
5,801
0,446
2,223
0,411
2,200
2,881
1,445
1,234
4,223
25,122
13,011
8,663
12,784
2005
Janvier
février
mars
avril
mai
juin
juillet
août
septembre
octobre
novembre
décembre
MoyenneExtérieurIntérieurMois
Nombre moyen de piqûres d’An. gambiae par homme et par nuit dans un village E
(m.a)

27. Anatomie d’un moustique

28. Ovaire nullipare
Ovaire pare (trachéoles étirées)
trachéoles en
pelotes

29. Parturité = Nb pares / Nb observées
Taux quotidien de survie :
L = durée du cycle gonotrophique : 2 à 3 jours
–Implication dans la lutte antivectorielle :
• lutte larvicide : p augmente
• lutte imagocide : p diminue
L
NulliparePare
Parep
+
=
Importance de la longévité (1)

30. ! " # $ %
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34
0+ (%- )
Cycle
sporogonique (10 jrs) Sporozoïtes
Source : A Spiegel, Cours CAIMR, IP Paris 2005

31. Dissection des glandes salivaires:
évaluation de l’infectivité

32. Estomac
Oocyste
• Dissection des glandes salivaires
- Observation de sporozoïtes (s) qui donne IS (% des vecteurs à GS+)
+++ Nombre de piqûres contaminées que reçoit un homme par unité de
temps (Taux d’Inoculation Entomologiques = EIR) h = ma.s
• Dissection des estomacs (intestins moyens) :
- Observation d’oocystes sur la parois du tube digestif
- Donne le taux de femelles infectées : indice oocystiques
Glandes salivaires

33. 91/2706Total
0/10
0/10
4/18
0/65
0/42
18/278
16/442
36/899
8/100
4/564
3/145
2/133
2005
Janvier
février
mars
avril
mai
juin
juillet
août
septembre
octobre
novembre
décembre
IntérieurMois
Indices sporozoïtiques mensuels d’An. gambiae village E

34. *

35. #+
• ELISA repas de sang : détection d’IgG
• Donne l’origine du repas de sang
• Taux d’anthropophilie
(H = Nb mos sang humain +/Nb total mos(avec sang)
• Indice a = fréquence quotidienne piqûre sur homme
• ELISA CSP
• Détecte la présence d’Ag CSP spécifique de l’espèce plasmodiale
infectant le moustique
• Donne le nombre de moustiques infectés : évaluation de l’IS pour
chaque espèce plasmodiale.

36. * 1 ' ' 0+
,
- .
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, 0
- .

37. 0 "

38. , 1
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2
, # !
30)

39. Matériels : (1) Tubes d’expositions

40. (3) Papiers imprégnés d’insecticides,
Concentrations diagnostiques, OMS

41. (2) Moustiques

42. 4
, # 34# 0
+ 0 15
, # .) .6(.67
, # 8 9

43. :
, 4 " 8 " 0
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