Télécharger en tant que PDF, PPTX
Contenu connexe
SP Entomologie
- 1. Travaux Dirigés : Lestechniques entomologiques du paludisme Atelier sur le Paludisme, IP Madagascar 22 mars 2006
- 2.
- 3. Rôles des servicesd’entomologie dans le contrôle du paludisme Identifier les vecteurs responsables de la transmission Fournir des informations de base sur les espèces vectrices (relations vecteur/écologie, vecteur/parasite, vecteur/hôte, comportement) – Surveiller l’impact des mesures de lutte Participer à la formation
- 4. Définition d’un vecteur: « Arthropode hématophage assurant la transmission biologique active d’un agent pathogène d’un vertébré à un autre vertébré » In : Précis d’Entomologie Médicale et Vétérinaire, F RHODAIN, C PEREZ
- 7. Les insectes ailés AnophèlesAèdes Culex Mansonia Haemagogus Moustiques 7-10 mm Phlebotomes 3-4 mm Simulies 2-3 mm Culicoïdes 1 mm Nematocères Corps long Antennes longues Glossine Brachycères Corps court Antennes courtes Diptères 1 paire d'ailes Source : A Spiegel, Cours CAIMR, IP Paris 2005
- 8. Nymphe (1-2jours) Œuf(2-3jours) larve( (7 -21jours) adulte (21 - 28jours) Stade aérien Stades aquatiques Cycle biologique de moustique
- 9.
- 11. Méthodes de captures: aspects qualitatifs
- 12. Lieux et etméthodes d’échantillonnage • Moustiques agressifs : sur homme à l’intérieur et à l’extérieur (Endophagie/exophagie) • Moustiques au repos : par pyréthrage dans les maisons abris extérieurs (Puits de MT, étable, etc.…) (Endophilie/exophilie) • Autres méthodes de piégeage : piège lumineux , à odeur, etc… CAIMR,2005 IPM IPM IPM
- 13. Quel moustique capturé? Identification (1)
- 14. Quel moustique capturé? => identification (2) ! " IPMIPM
- 15. Principales parties dumoustique
- 16.
- 17. Nervures d’une ailed’Anophèle
- 18.
- 19. Clé de déterminationdes adultes Ex 1 : clé de genre 1. Abdomen sans écailles ou, au moins, avec les sternites largement chauves. Palpes de la femelle presque aussi longs que la trompe ............................ ………………………………………………………………………………Genre A 2 . Trompe rigide, à partie distale plus mince et recourbée vers le bas. ………………………………………………………………................... ..Genre B – Trompe flexible, non effilée et recourbée dans sa partie distale. Ex 2 : clé de genre … 8 - Abdomen rarement à marques métalliques argentées ; si oui, le thorax n’est pas jaune ; paratergites étroit et ordinairement écailleux………………………Genre C … 7 (8) Pulvilli présents. Ecailles alaires étroites. Pattes sans anneaux blancs…………………………………………………………...Genre D
- 20. # $ Branchies sur le 9esegment %& " ' Dessin : Éric Dufour #
- 22. 1. Siphon absent……………………………………...GenreE siphon présent ……………………………………………..2 2. Une grande plaque latérale chitineuse sur le 8ème segment abdominal ………………………………………3 cette plaque absente ……………………………………..6 3. Brosses buccales modifiées (prédatrices) en fortes épines courbées peu nombreuses. Peignes absents : ……………………………………………………….Genre F Clé de détermination des larves
- 23. R identification des complexesd’espèces Par PCR <= >Critères morphologiques Quel moustique capturé ? => identification (3) assistée par ordinateur
- 24. • estimation dela densité (dite anophélienne) ex : densité/maison/jour • nombre moyen de vecteurs piquant un homme/unité de temps (souvent par nuit) <=>ma, • rythme nycthéméral d'agressivité • rythme saisonnier d'agressivité Méthode de capture : aspects quantitatifs
- 25. 6,9397,6586,220moyenne 0,3035 1,8165 0,6705 1,1455 1,6775 1,0175 2,874 3,942 31,577 18,565 10,393 9,2925 0,161 1,410 0,930 0,091 0,474 0,590 4,514 3,661 38,032 24,120 12,123 5,801 0,446 2,223 0,411 2,200 2,881 1,445 1,234 4,223 25,122 13,011 8,663 12,784 2005 Janvier février mars avril mai juin juillet août septembre octobre novembre décembre MoyenneExtérieurIntérieurMois Nombre moyen depiqûres d’An. gambiae par homme et par nuit dans un village E (m.a)
- 27.
- 28. Ovaire nullipare Ovaire pare(trachéoles étirées) trachéoles en pelotes
- 29. Parturité = Nbpares / Nb observées Taux quotidien de survie : L = durée du cycle gonotrophique : 2 à 3 jours –Implication dans la lutte antivectorielle : • lutte larvicide : p augmente • lutte imagocide : p diminue L NulliparePare Parep + = Importance de la longévité (1)
- 30. ! " #$ % & ' '() * ' ' + , -+ () *) *) *) *) *) *) *) *) *) . / + 0+ / 1 !1 . !1 / + 0+ + 2 / 34 0+ (%- ) Cycle sporogonique (10 jrs) Sporozoïtes Source : A Spiegel, Cours CAIMR, IP Paris 2005
- 31. Dissection des glandessalivaires: évaluation de l’infectivité
- 32. Estomac Oocyste • Dissection desglandes salivaires - Observation de sporozoïtes (s) qui donne IS (% des vecteurs à GS+) +++ Nombre de piqûres contaminées que reçoit un homme par unité de temps (Taux d’Inoculation Entomologiques = EIR) h = ma.s • Dissection des estomacs (intestins moyens) : - Observation d’oocystes sur la parois du tube digestif - Donne le taux de femelles infectées : indice oocystiques Glandes salivaires
- 33.
- 34.
- 35. #+ • ELISA repasde sang : détection d’IgG • Donne l’origine du repas de sang • Taux d’anthropophilie (H = Nb mos sang humain +/Nb total mos(avec sang) • Indice a = fréquence quotidienne piqûre sur homme • ELISA CSP • Détecte la présence d’Ag CSP spécifique de l’espèce plasmodiale infectant le moustique • Donne le nombre de moustiques infectés : évaluation de l’IS pour chaque espèce plasmodiale.
- 36. * 1 '' 0+ , - . % / " ' , 0 - .
- 37.
- 38. , 1 " , -. 2 , # ! 30)
- 39. Matériels : (1)Tubes d’expositions
- 40. (3) Papiers imprégnésd’insecticides, Concentrations diagnostiques, OMS
- 41.
- 42. 4 , # 34#0 + 0 15 , # .) .6(.67 , # 8 9
- 43. : , 4 "8 " 0 ,