1. LA RÉPUBLIQUE ALGÉRIENNE DÉMOCRATIQUE ET POPULAIRE
LE MINISTÈRE DE L’ENSEIGNEMENT SUPÉRIEUR ET DE LA RECHERCHE SCIENTIFIQUE
L’ÉCOLE NATIONALE SUPÉRIEURE DE SCIENCES DE LA MER ET DE L’AMÉNAGEMENT DU LITTORAL
Rapport du stage
Tenu du 24 à 28 Mai 2012 au Jardin d’essai à El Hamma, Alger
Procédé pratique de la reproduction artificielle
la
chez la carpe Koï Cyprinus carpio carpio
ZEGHIDA Salah-Eddine
Eddine
zsalah13@yahoo.fr Suivi par :
Mr Belhasnet
4ème année Aquaculture
2011/2012

2. Plan
Introduction………………………………………………………… 04
L’environnement du stage………………………………………….. 04
Objectifs du travail…………………………………………………...05
Nettoyage de la cascade……………………………………………...06
Sexage et sélection …………………………………………………..08
Transport des géniteurs.…………………………………………….. 10
Adaptation des géniteurs……………………………………………..12
Anesthésie des poissons ……………………………………………..12
Contrôle pondéral ……...…………………………………………….12
Traitement hormonal ………………………………………………...14
Injection ……………………………………………………………...15
Fécondation artificielle……………………………………………….16
Prélèvement des gamètes …………………………………………….18
Ajout de la solution fécondante ……………………………………...18
Elimination de l’adhésivité …………………………………………..19
Incubation des œufs ………………………………………………….20
Conclusion …………………………………………………………...21

3. Introduction
La maitrise de faire reproduire un animal aquacole d’intérêt commercial
est exigence très impérative pour un ingénieur en aquaculture.
Après avoir passé quelques mois à étudier le procédé de la reproduction
artificielle chez les espèces d’intérêt aquacole en classe sous aspect théorique,
l’heure nous est présenté pour accéder un pratique de cette technique
primordiale à réussir un élevage rentable quantitativement et rassurant
qualitativement.
Ce stage qui a eu lieu de 24 à 28 Mai 2012 au niveau du Jardin d’essai à
El-Hamma, Alger, nous a permis de faire un grand pas de connaissance et une
richesse d’expérience dans notre domaine.
L’environnement du stage
Le stage se déroulait la plupart du temps au niveau du parc zoologique du
Jardin d’essai du Hamma, situé dans le quartier de Hamma à Alger, est un
jardin luxuriant, qui s'étend en amphithéâtre, au pied du Musée National des
Beaux-arts d'Alger, de la rue Mohamed Belouizdad à la rue Hassiba Ben
Bouali, sur une superficie de 62 hectares.

4. Créé en 1832, il est considéré comme l'un des jardins d'essai et
d'acclimatation les plus importants au monde.
Le jardin d'essai est desservi par la station Jardin d'essai du métro
d'Alger1.
Dans le parc ou il se trouve un bureau et si on peut dire un laboratoire
d’aquaculture annexe de l’école de l’aquaculture qui est un centre de recherche
dans l’aquaculture, c’est là qu’on a fait notre stage.
Objectifs du travail
L’objectif est principalement la pratique de la technique de la
reproduction artificielle chez la carpe Koï, cette espèce aquatique d’ornement
d’origine japonaise, est de la famille des cyprinidés (Lennaeus, 1758),
convenable aux bassins d’eau froide, et présente une multitude de variétés de
couleur de sa peau ce qu’il fait d’elle un objet de l’aquariophilie, pas seulement
en Algérie mais un peu partout dans le monde.
1
Présentation du jardin est prise de l’introduction du site web « wikipédia.com » sur le sujet intitulé ‘’Jardin
d’essai du Hamma’’.

5. Le 24 Mai 2012 :
Nous avons commencé le travail à partir de 09:00H du matin.
Ce jour là nous avons :
Pêché les alevins du bassin d’élevage larvaire (Mise en charge du bassin avec
des post-larves Juin 2011)
Fig.01: Pêche des alevins avec une senne. Fig.02: Alevins d’une année.
Nous avons pêché presque cent alevins que nous avons transférés dans un
aquarium vivier.
Puis on a vidés le bassin.
Nettoyage de la cascade :
Nous avons pêché la cascade à moitié afin de faciliter la pêche des
poissons maintenus dans ce bassin.
La pêche était très difficile parce que les poissons se cachaient sous les
rochers de la cascade.
Les poissons pêchés (14 poissons: 20-25 cm) ont été transféré dans deux
petits bassins circulaires afin de sélectionner quelques géniteurs matures pour la
reproduction.

6. Fig.03: Poisson pêché dans la cascade
Après la pêche, nous avons vidé la cascade avec des bassines pour la
nettoyer. La cascade était pleine de vase vu qu’elle n’a pas été nettoyée depuis
plus de 2 ans.
Fig.04: Nettoyage de la cascade

7. Sexage et sélection :
Nous avons mis les poissons pêchés dans la cascade dans une bassine
contenant 10L d’eau avec de l’anesthésie (phénoxyl-éthanol : 5ml/10L) pour
sélectionner les géniteurs prêts pour la reproduction (voir les critères de
sélection et de sexage plus loin).
Fig.05: Femelles sélectionnées Fig.06: Mâles sélectionnés
Les géniteurs sélectionnés retournent dans les bacs circulaires sexe séparé.
Les autres sont transférés dans le bassin du jardin français et le grand étang.
Le 25 Mai 2012 :
Nous avons transféré les post-larves âgées de 4 jours dans le bassin
d’élevage larvaire.
Puis nous avons continué le nettoyage de la cascade.

8. Fig.07: Dévasage de la cascade Fig.08 : Emballage de la vase à jetée
Après on a transféré les alevins d’une année dans la cascade.
Le 26 Mai 2012 :
Nous avons transférés le reste des post larves vers le bassin d’élevage
larvaire.
On a fertilisé le bassin d’élevage larvaire avec des bottes d’herbes
sèches.
Botte d’herbe sèche
Fig.09: Mise en place des bottes d’herbes sèches
17:00h : pêche des géniteurs dans le grand étang :
On a utilisé une senne et un filet trémail pour la pêche.

9. Fig.10: Pêche des géniteurs
Transport des géniteurs :
Les géniteurs sélectionnés sont transportés dans des bassines de 50 litres à
pied vers la chambre de manipulation à l’intérieur du Zoo.
Sexage et sélection sur place : (après anesthésie)
Sélection :
On a choisi des géniteurs sains et sans malformation.
Sexage :
Le sexage a été fait d’après les critères suivants :
Femelle mature :
Vente gonflé et bombé, papille génital concave, orifice génital rond et
rosâtre, protubérance anale, écoulement d’un liquide jaunâtre par légère pression
abdominale.
Mâle mur :
Corps svelte, papille génital convexe, orifice génital en fente, expulsion de
laitance par légère pression abdominale.

10. Fig.11: Sexage
Détermination de l’état de maturation des géniteurs :
Prélèvement des ovocytes avec un tuyau à air
Transfert des ovocytes pour observation dans du liquide de SERR
Liquide de SERRA : alcool à 95° (6 volumes) + formol (3 volumes) + acide
acétique (1 volume).
L’observation n’a pas été faite vu le manque de produits.
Fig.12: Prélèvement des ovocytes Fig.13: Ovocytes

11. Adaptation des géniteurs :
T°C : 22°C et aération en permanence
Fig.14: Transfert des géniteurs dans les bassins de stabulation sexe séparé
Anesthésie des poissons :
0,5 ml/l de phénoxyl-éthanol
Fig.15: Anesthésie
Contrôle pondéral :
Pour déterminer la dose d’hypophyse à injecter pour chaque géniteur.

12. Fig.16: Pesage des géniteurs
Nous n’avons pas pesé les géniteurs parce qu’on n’avait pas de balance la
nuit.
On a estimé approximativement le poids des géniteurs grâce à
l’expérience du Mr. BELHASNET.
Géniteurs utilisés :
Femelle :
Nom Poids
Hlima 1500g
Fatima 1500g
Saadia 500g
Dhahbia 500g
Wardia 500g
Zoulikha 500g
Mâle :
Nom Poids
Zoubir 500g
Boualem 500g
Keddour 500g
Antar 500g
Abbas 1000g
Seddouki 1000g

13. Traitement hormonal :
Hormones et dose injectée :
On a utilisé l’hypophyse de carpe importée d’USA (EPC) et l’hypophyse
extraite des carpes chinoises par Dr. BELHASNET.
On a dilué l’hypophyse dans de l’eau physiologique.
Calcul des doses à injecter pour chaque géniteur :
Femelle :
3mg/kg de poids vif administré en deux injections :
Première injection : 1/10 de la dose totale
Deuxième injection : le reste de la dose
Nom Poids Dose total 1ère inject° Intervalle 2ème
mg/kg inject°
Hlima 1500g 4,5mg 0,45mg 240°h 4,05mg
Fatima 1500g 4,5 mg 0,45mg 240°h 4,05mg
Saadia 500g 1,5 mg 0,15mg 240°h 1,35mg
Dhahbia 500g 1,5 mg 0,15mg 240°h 1,35mg
Wardia 500g 1,5 mg 0,15mg 240°h 1,35mg
Zoulikha 500g 1,5mg 0,15mg 240°h 1,35mg
Mâle :
1mg/kg de poids vif en une seule injection lors de la deuxième injection
des femelles.
Nom Poids Dose totale mg/kg
Zoubir 500g 0,5mg
Boualem 500g 0,5mg
Keddour 500g 0,5mg
Antar 500g 0,5mg
Abbas 1000g 1mg
Seddouki 1000g 1mg

14. Calcul de la dose total d’hypophyse :
F= (4,5x2)+(1,5x4)=15mg
M= (0,5x4)+(1x2)=4mg
Dose=F+M=19mg
Dose totale =15+4+une marge de sécurité de 10%=20,9mg=21mg
Nombre d’hypophyse nécessaire :
Le poids moyen d’une glande=3mg
Nombre d’hypophyses nécessaires : 21mg/3mg=7 hypophyses
Préparation de la solution hormonale :
Broyez dans un mortier le nombre voulu d'hypophyses jusqu'à obtention
d'une bouillie ou d'une poudre fine.
Diluer l’hypophyse dans 10 ml d’eau physiologique.
Injection :
Injection intramusculaire dorsale. L’injection se fait avec une seringue
graduée de 5ml. On introduit la seringue avec un angle de 45°.
Géniteur Hlima:
Fig.17: Hlima
1ère injection : 20:00h
21mg 10ml d’eau physiologique

15. 0,45mg 0,2ml
Fig.18: injection hormonale
Après la première injection on a remet les géniteurs dans les bassins et on
les a couvert avec une senne.
Fig.19: bassin des géniteurs couvert avec une senne
On a mesuré la température chaque heure :
Heure T°C °h cumulés
20 :20 21 21
21 :20 21,5 42,5
22 :20 21,5 64
23 :20 22 86
00 :20 23 109

16. 01 :20 23 132
02 :20 22,5 154,5
03 :20 22,5 177
04 :20 23 200
05 :20 22,5 222,25
06 :20 22,8 245,3 (2ème
injection)
07 :20 22,8 268,1
27 Mai 2012 :
2ème injection : 07:13h
4,05 mg 2ml
Remettre les géniteurs dans les bassins.
Après la deuxième injection, on a mesuré la température chaque heure :
Heure T°C °h cumulés
7 :30 21 21
8 :30 21,5 42,5
9 :30 21,5 64
10 :30 22 86
11 :30 22 108
12 :30 22 130
13 :30 22,5 152,5
14 :30 23 175,5
15 :30 23 198 ,5
16 :30 23 221,5
17 :30 23 244,5
18 :30 23 267,5
19 :30 Ponte
Après 130°h on a introduit un mâle indicateur (il suit ardemment les
femelles juste en ovulation) dans le bassin des femelles.
Fécondation artificielle :
Stripping: à partir de 18:50h

17. C’est la récolte des gamètes mâles et femelles sous pression abdominale,
on a suivi la méthode sèche dite RUSS.
Prélèvement des gamètes :
Fig.20: prélèvement des ovules Fig.21: prélèvement de la laitance
Les produits sexuels récupérés sont d’abord mélangés à sec à l’aide d’une
plume pendant 30 secondes.
Fig.22: Mélange des produits sexuels
Ajout de la solution fécondante :
Solution fécondante: 3g d’urée+4g de NaCl+1L d’eau.

18. Fig.23: Préparation de la
solution de fécondation (on a
préparé 5L)
On a ajouté deux fois le volume des œufs de la solution fécondante et
mélangé pendant 5 minutes puis évacué la solution.
Fig.24: Ajout de la solution fécondante
Elimination de l’adhésivité :
Pour éliminer l’adhésivité des œufs 3 bains successifs de lait après chaque
15 minutes.
Solution du lait : 1L de lait +4L d’eau
Fig.25: Préparation de la
solution du lait

19. Fig.26: Elimination de l’adhésivité par le lait
Incubation des œufs :
Après l’élimination de l’adhésivité, on a lavé les œufs plusieurs fois avec
l’eau pure et on les a mis dans les bassins de stabulation pour l’incubation à une
température de 20-21°C.
Au fond du bassin on a mis une moustiquaire pour faciliter l’élimination
des déchets.
Fig.27: Mise en place de la moustiquaire

20. Fig.28: Œufs après plusieurs rinçages Fig.29: Incubation des œufs dans des bacs
Après deux jours d’incubation, l’incubation se poursuit en circuit ouvert
(après l’éclosion, il y aura une importante production d’ammoniaque).
Début d’éclosion à partir du quatrième jour.
Conclusion :
Ce stage était très bénéfique pour nous tous, on a appris beaucoup de
chose, de la pèche, de manipuler un géniteur, de pratiquer l’insémination
artificielle et surtout suivre toute l’opération durant 4 jours.
Faire reproduire un poisson d’intérêt aquacole est un processus qui
nécessite une présence permanente, une patience et une régularité d
manipulateur, bien que ce soit un métier indépendant qui exige la maitrise totale
d’une certaine technique qui ne peut pas être à la main de n’importe qui.