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Université Ferhat Abbas - Sétif
Département de Biochimie
Mémoire de Magister
Présenté par :
HARRAR Abdenassar
Encadré par :
Dr. BELHATTAB Rachid
2011-2012
Activités antioxydante et
antimicrobienne d’extraits de
Rhamnus alaternus L.
harrar_abdelnacer@hotmail.fr
https://www.researchgate.net/profile/Abdenassar_Harrar
Plantes médicinales Nouveaux médicaments
Matière végétale
Molécules bioactives
PharmacieCosmétologieIndustrie alimentaire
Molécules bioactives
Les polyphénols
Acides phénoliques Flavonoïdes Tannins
Vertus thérapeutiques
Cancers Maladies
cardio-vasculaires
Peroxydation lipidique Attaques
microbiennes
Stresse
oxydant
Infections
microbiennes
Stresse
oxydant
Espèces réactives de
l’oxygène (ROS)
Radicalaires Non radicalaires
Radiations UV
Pollution
Tabac
Exercices physiques
Médicaments
Réactifs chimiques
Electron non apparié
Très réactifs
Neutraliser ou réduire
Radical libre
Antioxydant
Infections
bactériennes
Usage des
antibiotiques
Thérapeutique
La prescription
Inappropriée
de ces agents
Souches
multi-résistantes
Nouveaux médicaments
à base des plantes
Cependant
l’évaluation des propriétés
phytopharmaceutiques
antioxydante
antimicrobienne
Une tache très
intéressante et utile
Les plantes
Rhamnus alaternus
Arbuste toujours vert
Certains auteurs de pays méditerranéens
ont entrepris des études limitées
A notre connaissance cette espèce végétale
n’a pas fait l’objet d’études antérieures
En Algérie
L’objectif de notre étude
D’estimer la teneur en ces composés
actifs essentiels (les polyphénols)
Obtenus dans les différentes parties
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Antioxydante
Antimicrobienne
Classification
Famille
Genre
Sous genre
Rhmanus
alaternus
Sous espèce
Rhamnaceae
Reynosia
Rhamnus
Espèce
R. alaternus eu-alaternus
Maire
Nomenclature
En Arabe
Am’lile’ce ou
Oud El-khir
En anglais Buckthorn.
En Français Nerprun
En Espagnol Aladierna
En Italien Alaterno
Usage traditionnel
Digestif
Diurétique
Hypotensif
Traitement des compilations
Hépatiques
Dermatologiques
Laxatif
Composition biochimique
L’étude phyto-chimique
Anthraquinones coumarines Tannins Flavonoïdes
R
O
O
HO
OH OH
CH
3
R = H Emodine
R = OH Alaternine
R
O
O
HO
OH OH
CH
3
R = H Physcion
R = OH Chrysophanol
Flavonoïdes
O
O
HO
OH
OH
OH
OH
Quercétine
OH
O
O
HO
OH
Apigénine
OHO
OH
OH
OH
OH
Kaempferol
Préparation des extraits
Extrait aqueux
Décoction
Partie aérienne Racines20 g
500 ml H2O
20 g
20 g
Pendant 10 min
500 ml H2O
20 g
Laissée reposer pendant 15 min
Filtration
Etuve
Aliquotes du filtrat
24 h
40 °C
Extrait méthanolique de la partie aérienne
Macération
200 ml
Méthanol
50 g
Maximum d’agitation
24 h
T° ambiante
200 ml
Méthanol
50 g
Filtration
Marc
L’opération est répétée une fois
Evaporateur rotatif
Evaporation à sec
T° 40 - 50 °C FiltratFiltrat
Extrait méthanolique des racines
Extraction au Soxhlet
50 g
Cartouche
6 cycles
Evaporateur rotatif
Méthanol T°
d’évaporation
40 °C
EATF EAR EMR EMTF
6
8
10 11
Rendements des extraits (% m/m)
EMTF : Extrait méthanolique tiges et feuilles
EMR : Extrait méthanolique des racines
EAR : Extrait aqueux des racines
EATF : Extrait aqueux tiges et feuilles
Dosage des polyphénols
Méthode du Folin-Ciocalteu (polyphénols totaux)
Extrait 20 µl
H2O distillée
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100 µl
Agiter vigoureusement
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T° ambiante Abri de la lumière
Bleu
Taux des PPT
760 nm
y = 0,0031 x - 0,0898
R² = 0,9803
0
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
0.6
0.7
0 50 100 150 200 250
Absorbanceà760nm
Concentration d'acide caféique en µg/ml
Droite d’étalonnage de l’acide caféique
EMTF EMR EAR EATF
7 7
19
36
Teneurs en PPT des quatre extraits en mg EAC/g de MF
Dosage des flavonoïdes totaux
Extrait
1 ml
AlCl 3 à 2 %
1 ml
15 min d’incubation
Abri de la lumièreT° ambiante
Jaune
Taux des
Flavonoïdes 430 nm
y = 0.0344x + 0.0181
R² = 0.9992
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
1.4
1.6
0 10 20 30 40 50
Absorbanceà430nm
Concentration de la quercétine en µg/ml
Droite d’étalonnage de la quercétine
Teneurs en flavonoïdes des quatre extraits en mg EQ/g de MF
EMR EMTF EAR EATF
5 6
14
18
Dosage des flavones et flavonols
Extrait
AlCl 3 à 10 %
Ethanol
CH 3 COONa
H2O distillée
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0,1 ml
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Abri de la lumière
T° ambiante
y = 0.0066x - 0.004
R² = 0.9991
0
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
0.6
0.7
0.8
0 20 40 60 80 100 120
Absorbanceà415nm
Concentration de la quercétine en µg/ml
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EMR EMTF EAR EATF
2 2
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Teneurs en flavones et flavonols des quatre extraits en mg
EQ/g de MF
Activité antioxydante et anti radicalaire
Test au DPPH
Extrait
DPPH
. 0,06 mM
1 ml
1 ml
30 min d’incubation
Abri de la lumière
T° ambiante
DPPH réduit
517 nm
y = 0,5245x + 22,558
R² = 0,9897
0
10
20
30
40
50
60
70
80
0 20 40 60 80 100 120
%d'inhibition
Concentration µg/ml
Variation de l’inhibition du
DPPH en fonction de la
concentration de l’extrait EMR
52 µg/ml
y = 0,7412x + 1,3096
R² = 0,9712
0
10
20
30
40
50
60
70
80
0 20 40 60 80 100 120
%d'inhibition
Concentration µg/ml
Variation de l’inhibition du
DPPH en fonction de la
concentration de l’extrait EAR
66 µg/ml
y = 0,7588x + 0,3076
R² = 0,9997
0
10
20
30
40
50
60
70
80
0 20 40 60 80 100 120
%d'inhibition
Concentration µg/ml
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DPPH en fonction de la
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66 µg/ml
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R² = 0,9993
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10
20
30
40
50
60
70
0 20 40 60 80 100 120
%d'inhibition
Concentration µg/ml
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DPPH en fonction de la
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71 µg/ml
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0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
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%d'inhibition
Concentration µg/ml
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DPPH en fonction de la
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BHT EMR EATF EAR EMTF
37
52
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Activité anti-radicalaire des extraits
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Test de blanchissement du β- carotene
LOOH
Acide linoléique
β-carotène
O2
LOO
Radical peroxyl
β-carotèneLOOH
Acide linoléique
O2
LOO
Radical peroxyl
LOOH
Acide linoléique
β-carotène
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Test qualitatif Test quantitatif
Visuel sur gélose spectrophotomètre  = 470 nm
470 nm
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50 µl 20 µl
10 µl
40 µl
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30 µl
50 µl
20 µl
10 µl
40 µl
EATF
10 µl
20 µl
30 µl
50 µl
40 µl
EMR
EMTF
30 µl
50 µl
20 µl
10 µl
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Quercétine, BHT et éthanol
BHT 50 µl
BHT 30 µl
Ethanol
Quercétine 30 µl
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Augmentation du diamètre en fonction de la dose
Halos de
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25 27 28 32
37 38
Test quantitatif : spectrophotomètre  = 470 nm
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
0 10 20 30 40 50 60
Absorbanceà470nm
Temps (h)
EATF
EAR
EMTF
EMR
BHT (c+)
(c-)
Cinétique de blanchissement du β- carotène à 470 nm en absence et
en présence des extraits de R. alaternus et du BHT
Extraits
- Antioxydant
ou Extrait
BHT
C (-) EATF EAR EMR EMTF BHT
16%
72%
79% 82% 82%
95%
Activité anti-oxydante relative des extraits de R. alaternus et BHT
après 48 h
Activité antimicrobienne
Méthode de diffusion des disques sur un milieu gélosés solides
Mueller – Hinton (Bactéries) Sabouraud (les champignon)
Bactéries à Gram + bactéries à Gram –
Lysteria monocytogenes ATCC 15313
Enterococcus faecalis ATCC 49452
Bacillus cereus ATCC 10876
Staphylococcus aureus ATCC 25923
Acinetobacter baumanii ATCC 19606
Citrobacter freundii ATCC 8090
Salmonella typhimurium ATCC 13311
Escherichia coli ATCC 25922
Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853
Klebsiella pneumoniae ATCC 700603
Proteus mirabilis ATCC 35659
Les champignons
Aspergillus flavus
Asperagillus niger
Candida albicans
Les souches bactériennes
Repiquage dans la gélose nutritive
Incubées à 37°C
Pendant 24 h
Colonies bien isolées10 ml d’eau distillée stérile
Dilution
0.5 Mc Farland ou DO de 0.08 à 0.10 à 625 nm
Ensemencement
Incubation pendant 18 à 24 heures à 37°C
Diamètres des halos d’inhibitions
Lecture des antibiogrammes
Les champignons
activés pendant 7 jours à T° de 28°C
La lecture des antibiogrammes est faite après 72
heures d’incubation à 28°C
Zones d’inhibition obtenues avec les bactéries sensibles
au EMR de R. alaternus
Escherichia coli Staphylococcus aureus Pseudomonas aeruginosa
Enterococcus faecalis Klebsiella pneumoniae
CMI et CMB exprimées pour l’extrait EMR sur les
souches testées en mg/ml
Souches
Extraits
Escherichia
coli ATCC
25922
Pseudomona
s aeruginosa
ATCC 27853
Staphylococc
us aureus
ATCC 25923
Klebsiella
pneumoniae
ATCC
700603
Lysteria
monocytogen
es ATCC
15313
EMR
CMI = 6,25
CMB = 12,5
CMI = 0,195
CMB = 25
CMI = 6,25
CMB = 12,5
CMI = 6,25
CMB = 100
CMI = 6,25
CMB = 12,5
Conclusion
Les quatre extraits présentent des quantités importantes en
polyphénols, une quantité considérable de flavonoïdes, cette plante
est riche en flavonoïdes de types flavones et flavonols.
Les extraits de R. alaternus possèdent une bonne activité
antioxydant et antiradicalaire.
Les extraits de R. alaternus ont une action faible sur les
champignons et relativement faible sur les bactéries testées.
Perspectives
Faire une étude biochimique sur les fruits de Rhamnus alaternus.
Développer des médicaments antiradicalaires à base de plantes,
doués d’une activité antioxydante.
Déterminer de nouvelles substances bioactives naturelles
pourront répondre aux différents problèmes de la santé et d’être
un alternatif des médicaments synthétiques.
Merci pour
votre
attention

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  • 1. Université Ferhat Abbas - Sétif Département de Biochimie Mémoire de Magister Présenté par : HARRAR Abdenassar Encadré par : Dr. BELHATTAB Rachid 2011-2012 Activités antioxydante et antimicrobienne d’extraits de Rhamnus alaternus L. harrar_abdelnacer@hotmail.fr https://www.researchgate.net/profile/Abdenassar_Harrar
  • 2.
  • 3.
  • 4. Plantes médicinales Nouveaux médicaments Matière végétale Molécules bioactives PharmacieCosmétologieIndustrie alimentaire
  • 5. Molécules bioactives Les polyphénols Acides phénoliques Flavonoïdes Tannins Vertus thérapeutiques Cancers Maladies cardio-vasculaires Peroxydation lipidique Attaques microbiennes Stresse oxydant Infections microbiennes
  • 7. Espèces réactives de l’oxygène (ROS) Radicalaires Non radicalaires Radiations UV Pollution Tabac Exercices physiques Médicaments Réactifs chimiques Electron non apparié Très réactifs Neutraliser ou réduire Radical libre Antioxydant
  • 8. Infections bactériennes Usage des antibiotiques Thérapeutique La prescription Inappropriée de ces agents Souches multi-résistantes Nouveaux médicaments à base des plantes Cependant
  • 10. Rhamnus alaternus Arbuste toujours vert Certains auteurs de pays méditerranéens ont entrepris des études limitées A notre connaissance cette espèce végétale n’a pas fait l’objet d’études antérieures En Algérie L’objectif de notre étude D’estimer la teneur en ces composés actifs essentiels (les polyphénols) Obtenus dans les différentes parties de la plante Evaluer leur pouvoir biologique Antioxydante Antimicrobienne Classification Famille Genre Sous genre Rhmanus alaternus Sous espèce Rhamnaceae Reynosia Rhamnus Espèce R. alaternus eu-alaternus Maire Nomenclature En Arabe Am’lile’ce ou Oud El-khir En anglais Buckthorn. En Français Nerprun En Espagnol Aladierna En Italien Alaterno
  • 11. Usage traditionnel Digestif Diurétique Hypotensif Traitement des compilations Hépatiques Dermatologiques Laxatif
  • 12. Composition biochimique L’étude phyto-chimique Anthraquinones coumarines Tannins Flavonoïdes R O O HO OH OH CH 3 R = H Emodine R = OH Alaternine R O O HO OH OH CH 3 R = H Physcion R = OH Chrysophanol
  • 14.
  • 15.
  • 16. Préparation des extraits Extrait aqueux Décoction Partie aérienne Racines20 g 500 ml H2O 20 g 20 g Pendant 10 min 500 ml H2O 20 g Laissée reposer pendant 15 min Filtration Etuve Aliquotes du filtrat 24 h 40 °C
  • 17. Extrait méthanolique de la partie aérienne Macération 200 ml Méthanol 50 g Maximum d’agitation 24 h T° ambiante 200 ml Méthanol 50 g Filtration Marc L’opération est répétée une fois Evaporateur rotatif Evaporation à sec T° 40 - 50 °C FiltratFiltrat
  • 18. Extrait méthanolique des racines Extraction au Soxhlet 50 g Cartouche 6 cycles Evaporateur rotatif Méthanol T° d’évaporation 40 °C
  • 19. EATF EAR EMR EMTF 6 8 10 11 Rendements des extraits (% m/m) EMTF : Extrait méthanolique tiges et feuilles EMR : Extrait méthanolique des racines EAR : Extrait aqueux des racines EATF : Extrait aqueux tiges et feuilles
  • 20. Dosage des polyphénols Méthode du Folin-Ciocalteu (polyphénols totaux) Extrait 20 µl H2O distillée 1,58 ml Réactif de Folin-Ciocalteu 100 µl Agiter vigoureusement Laisser agir 6 min Na 2CO 3 (7.5%) 300 µl 2 heures d’incubation T° ambiante Abri de la lumière Bleu Taux des PPT 760 nm y = 0,0031 x - 0,0898 R² = 0,9803 0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0 50 100 150 200 250 Absorbanceà760nm Concentration d'acide caféique en µg/ml Droite d’étalonnage de l’acide caféique
  • 21. EMTF EMR EAR EATF 7 7 19 36 Teneurs en PPT des quatre extraits en mg EAC/g de MF
  • 22. Dosage des flavonoïdes totaux Extrait 1 ml AlCl 3 à 2 % 1 ml 15 min d’incubation Abri de la lumièreT° ambiante Jaune Taux des Flavonoïdes 430 nm y = 0.0344x + 0.0181 R² = 0.9992 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 1.2 1.4 1.6 0 10 20 30 40 50 Absorbanceà430nm Concentration de la quercétine en µg/ml Droite d’étalonnage de la quercétine
  • 23. Teneurs en flavonoïdes des quatre extraits en mg EQ/g de MF EMR EMTF EAR EATF 5 6 14 18
  • 24. Dosage des flavones et flavonols Extrait AlCl 3 à 10 % Ethanol CH 3 COONa H2O distillée 0,5 ml 1,5 ml 0,1 ml 0,1 ml 2,8 ml 30 min d’incubation 415 nm Abri de la lumière T° ambiante y = 0.0066x - 0.004 R² = 0.9991 0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0.8 0 20 40 60 80 100 120 Absorbanceà415nm Concentration de la quercétine en µg/ml Droite d’étalonnage de la quercétine
  • 25. EMR EMTF EAR EATF 2 2 6 7 Teneurs en flavones et flavonols des quatre extraits en mg EQ/g de MF
  • 26. Activité antioxydante et anti radicalaire Test au DPPH Extrait DPPH . 0,06 mM 1 ml 1 ml 30 min d’incubation Abri de la lumière T° ambiante DPPH réduit 517 nm y = 0,5245x + 22,558 R² = 0,9897 0 10 20 30 40 50 60 70 80 0 20 40 60 80 100 120 %d'inhibition Concentration µg/ml Variation de l’inhibition du DPPH en fonction de la concentration de l’extrait EMR 52 µg/ml y = 0,7412x + 1,3096 R² = 0,9712 0 10 20 30 40 50 60 70 80 0 20 40 60 80 100 120 %d'inhibition Concentration µg/ml Variation de l’inhibition du DPPH en fonction de la concentration de l’extrait EAR 66 µg/ml
  • 27. y = 0,7588x + 0,3076 R² = 0,9997 0 10 20 30 40 50 60 70 80 0 20 40 60 80 100 120 %d'inhibition Concentration µg/ml Variation de l’inhibition du DPPH en fonction de la concentration de l’extrait EATF 66 µg/ml y = 0,4475x + 18,405 R² = 0,9993 0 10 20 30 40 50 60 70 0 20 40 60 80 100 120 %d'inhibition Concentration µg/ml Variation de l’inhibition du DPPH en fonction de la concentration de l’extrait EMTF 71 µg/ml y = 0.7047x + 23.736 R² = 0.9951 0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 0 20 40 60 80 100 120 %d'inhibition Concentration µg/ml Variation de l’inhibition du DPPH en fonction de la concentration de BHT 37 µg/ml
  • 28. BHT EMR EATF EAR EMTF 37 52 66 66 71 Activité anti-radicalaire des extraits Valeurs des IC 50
  • 29. Test de blanchissement du β- carotene LOOH Acide linoléique β-carotène O2 LOO Radical peroxyl β-carotèneLOOH Acide linoléique O2 LOO Radical peroxyl LOOH Acide linoléique β-carotène Extrait Test qualitatif Test quantitatif Visuel sur gélose spectrophotomètre  = 470 nm 470 nm
  • 30. Test visuel sur gélose 30 µl 50 µl 20 µl 10 µl 40 µl EAR 30 µl 50 µl 20 µl 10 µl 40 µl EATF 10 µl 20 µl 30 µl 50 µl 40 µl EMR EMTF 30 µl 50 µl 20 µl 10 µl 40 µl Quercétine, BHT et éthanol BHT 50 µl BHT 30 µl Ethanol Quercétine 30 µl Quercétine 50 µl Augmentation du diamètre en fonction de la dose Halos de rétention de couleur
  • 31. Diamètres en mm des halos de rétention de couleur dans le cas du dépôt de 50 µl des extraits 25 27 28 32 37 38
  • 32. Test quantitatif : spectrophotomètre  = 470 nm 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 1.2 0 10 20 30 40 50 60 Absorbanceà470nm Temps (h) EATF EAR EMTF EMR BHT (c+) (c-) Cinétique de blanchissement du β- carotène à 470 nm en absence et en présence des extraits de R. alaternus et du BHT Extraits - Antioxydant ou Extrait BHT
  • 33. C (-) EATF EAR EMR EMTF BHT 16% 72% 79% 82% 82% 95% Activité anti-oxydante relative des extraits de R. alaternus et BHT après 48 h
  • 34. Activité antimicrobienne Méthode de diffusion des disques sur un milieu gélosés solides Mueller – Hinton (Bactéries) Sabouraud (les champignon) Bactéries à Gram + bactéries à Gram – Lysteria monocytogenes ATCC 15313 Enterococcus faecalis ATCC 49452 Bacillus cereus ATCC 10876 Staphylococcus aureus ATCC 25923 Acinetobacter baumanii ATCC 19606 Citrobacter freundii ATCC 8090 Salmonella typhimurium ATCC 13311 Escherichia coli ATCC 25922 Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 Klebsiella pneumoniae ATCC 700603 Proteus mirabilis ATCC 35659 Les champignons Aspergillus flavus Asperagillus niger Candida albicans
  • 35. Les souches bactériennes Repiquage dans la gélose nutritive Incubées à 37°C Pendant 24 h Colonies bien isolées10 ml d’eau distillée stérile Dilution 0.5 Mc Farland ou DO de 0.08 à 0.10 à 625 nm Ensemencement Incubation pendant 18 à 24 heures à 37°C Diamètres des halos d’inhibitions Lecture des antibiogrammes Les champignons activés pendant 7 jours à T° de 28°C La lecture des antibiogrammes est faite après 72 heures d’incubation à 28°C
  • 36. Zones d’inhibition obtenues avec les bactéries sensibles au EMR de R. alaternus Escherichia coli Staphylococcus aureus Pseudomonas aeruginosa Enterococcus faecalis Klebsiella pneumoniae
  • 37. CMI et CMB exprimées pour l’extrait EMR sur les souches testées en mg/ml Souches Extraits Escherichia coli ATCC 25922 Pseudomona s aeruginosa ATCC 27853 Staphylococc us aureus ATCC 25923 Klebsiella pneumoniae ATCC 700603 Lysteria monocytogen es ATCC 15313 EMR CMI = 6,25 CMB = 12,5 CMI = 0,195 CMB = 25 CMI = 6,25 CMB = 12,5 CMI = 6,25 CMB = 100 CMI = 6,25 CMB = 12,5
  • 38. Conclusion Les quatre extraits présentent des quantités importantes en polyphénols, une quantité considérable de flavonoïdes, cette plante est riche en flavonoïdes de types flavones et flavonols. Les extraits de R. alaternus possèdent une bonne activité antioxydant et antiradicalaire. Les extraits de R. alaternus ont une action faible sur les champignons et relativement faible sur les bactéries testées.
  • 39. Perspectives Faire une étude biochimique sur les fruits de Rhamnus alaternus. Développer des médicaments antiradicalaires à base de plantes, doués d’une activité antioxydante. Déterminer de nouvelles substances bioactives naturelles pourront répondre aux différents problèmes de la santé et d’être un alternatif des médicaments synthétiques.

Notes de l'éditeur

  1. Messieurs les jurys, honorable assistance essalamou alaikoum et permettez-moi de vous présenter mon sujet intitulé