Prélèvement sanguin au moyen d’un système clos et stérile. Il s’effectue, en principe, de préférence sans garrot, ou si indispensable avec un garrot désserré, et en choisissant un site de ponction éloigné de toute perfusion. Pour prélèvement sanguin

2. PREPARATION DU
PRELEVEMENT
Remplir entièrement le bon de prescription.
Vérifier qu’il soit daté et signé.
Consulter le catalogue des examens pour
s’informer sur les examens prescrits et les heures
d’ouverture du laboratoire.
 Consulter le dossier du patient pour s’informer
d’éventuelles précautions à prendre pour le
prélèvement.
 Préparer le nombre d’étiquettes du séjour en cours
du patient correspondant au nombre de tubes à
prélever.
S/A

3. PREPARATION DU PATIENT
Faire un lavage antiseptique des mains
Procédure CLIN P.E 04.05.01.02
 Préparer le matériel de prélèvement et
prévenir le patient de l’acte de soins.
 Vérifier l’identité du patient (voir la procédure
d’identitovigilance) et la concordance avec les
étiquettes et le bon de prescription.
 Installer le patient et disposer la protection à
usage unique.
S/A

4. LA PONCTION
 Suivre la procédure du CLIN P.E 04.08.01.08
Veiller à :
 Poser le garrot et repérer le site de ponction en moins d’une
minute car risque d’hémolyse, d’activation plaquettaire…
(voir : CHOIX DU LIEU DE PRELEVEMENT)
 Ponctionner la veine en évitant de faire « pomper » car
risque d'augmenter le potassium et de fausser le résultat)
(Voir: CAS PARTICULIERS) (Voir : CONDUITE A TENIR EN
CAS D’INCIDENT DE PRELEVEMENT)
 Remplir les tubes dans l’ordre. Aucun transfert de sang d’un
tube à un autre ne doit être fait.
(Voir ORDRE DE PRELEVEMENT DES TUBES)
 Homogénéiser les tubes par 3 retournements
S/A

5. APRES LA PONCTION
 Etiqueter les tubes auprès du patient,
compléter le bon de prescription si nécessaire.
 Emballer les tubes dans le sachet, sans oublier
le bon de prescription, coller une étiquette du
patient sur le sachet
 Faire les transmissions écrites
S/A

6. ENVOI DU PRELEVEMENT AU
LABORATOIRE
Déposer immédiatement le prélèvement à la
réception centrale ou au point de ramassage voir
la Procédure de transport des prélèvements
S/A

7. CHOIX DU LIEU DE
PRELEVEMENT
La localisation sera dépendante de l’état de la peau du
patient (blessures, dermatoses, perfusions…) par ordre
de priorité :
 les veines du pli du coude (M veineux), la veine
céphalique en priorité,
 les veines du dos de la main (veine ulnaire ou radiale
superficielles),
 les veines grandes saphènes en région malléolaire.
Le bras choisi sera le bras opposé à la perfusion
(patient perfusé), à la fistule artério-veineuse (patient
hémodialysé).
S/A

8. S/A

9. S/A

10. Veines et nerfs du dos de la main S/A

11. CAS PARTICULIERS POUR LA
PONCTION
CONDUITE A TENIR EN CAS D’ARRET
D’ECOULEMENT DE SANG
 Contrôler que le tube est bien enfoncé sur le matériel de
prélèvement
 Vérifier que l’aiguille a suffisamment pénétré la peau et
se trouve dans la veine
 S’assurer que l’aiguille n’a pas traversé la veine
 La paroi interne de la veine peut adhérer à l’aiguille et
venir l’obstruer : faire pivoter légèrement l’aiguille pour
que la paroi veineuse collabée se détache.
 Remettre le garrot.
S/A

12. S/A

13. S/A

14.  CONDUITE A TENIR POUR LES BEBES ET JEUNES
ENFANTS
 Anesthésique local type Emla® 1 heure avant le prélèvement
(1h<Emla>3h)
 Il est conseillé pour les bébés de retirer l’anesthésique local
½ heure avant le prélèvement car il peut y avoir un risque de
fragilité veineuse au moment du prélèvement
 En cas de difficulté à « repérer » une veine chez les jeunes
enfants, il est possible de laisser couler de l’eau chaude (37°)
sur le bras ou d’apposer une compresse chaude quelques
minutes avant la pose du garrot
Pour les tubes « micro méthode » (qui ne sont pas sous vide)
après avoir retiré le bouchon, le déposer avec précaution
afin d’éviter de perdre l’anticoagulant qui s’y trouverait.
S/A

15. ORDRE DE PRELEVEMENT DES
TUBES
Cet ordre pourra être modifié en fonction de la
prescription médicale et des contraintes
biologiques.
Toujours prélever en priorité le tube destiné à
une étude microbiologique (hémoculture) afin
d’éviter une contamination, puis les tubes à
hémostase (citrate de sodium).
Respecter strictement le niveau optimal de
remplissage du tube.
S/A

16.  Ponction réalisée avec une aiguille à ailette : purger la tubulure avec un
tube NEUTRE
 Dans l’ordre : Hémoculture / BLEU/ JAUNE / ROUGE / VERT /
MAUVE / GRIS / NOIR /autres tubes
1. Tube destiné à une étude microbiologique (hémoculture)
2. Tube avec citrate de sodium (Bouchon bleu clair)
3. Tube sans additif dit « Tube sec » (Bouchon jaune et rouge)
4. Tube avec héparinate de lithium (Bouchon vert clair et vert foncé)
5. Tube avec EDTA (Bouchon mauve et rose)
6. Tube avec fluorure de sodium et oxalate de potassium (Bouchon gris)
7. Autres tubes : ACD…. Tube avec citrate de sodium à VS (Bouchon
noir)
S/A

18. Étapes de la ponction veineuse S/A

19. Échelle d’hémolyse S/A

20. S/A

21. S/A

22. CoagulationPTT permet l’évaluation de certains
facteurs de coagulation en mesurant le
temps nécessaire à la formation d’un
caillot suite à l’ajout d’un activateur. Ce
test est utilisé pour contrôler une thérapie
à l’héparine I.V.
INR ou RNI mesure l’activité de
certains facteurs de coagulation. Il
renseigne sur le temps que prend le sang
pour qu’un caillot de fibrine se forme. Ce
test est utile pour ajuster le traitement au
coumadin
S/A

23. Biochimie
 Na (Sodium) Ce test mesure la concentration sanguine en
sodium. Permet d’évaluer l’équilibre hydrique et de
dépister des états de déshydratation.
 K (Potassium) Ce test mesure la concentration sanguine de
potassium. Permet de suivre le fonctionnement rénal et de
dépister des excès (hypokaliémie) ou perte importante de
potassium (hyperkaliémie).
 Cl (Chlorure) Ce test mesure la concentration sanguine en
ion chlorure. Aide à évaluer l’équilibre des liquides dans
l’organisme.
 Créat (créatinine) Analyse de la concentration dans le sang
de la créatinine. La créatinine renseigne sur la capacité de
filtration des reins. Renseigne sur la progression
d’insuffisance rénale.
 Glycémie (Glucose) Ce test mesure la concentration en
glucose dans le sang. Ce test permet de suivre l’évolution
et la diète chez les diabétiques.
Gel
activateur
de caillot
S/A

24. Hématologie
 FSC (Formule sanguine complète) La formule sanguine complète
consiste à mesurer et observer la qualité des différents éléments
cellulaires du sang: les globules blancs (ou leucocytes), les globules
rouges (ou érythrocytes) et les plaquettes sanguines. Ce test nous
indique le nombre des éléments figurés que l’on retrouve dans un
litre de sang.
 Érythrocytes : Utile pour indiquer une anémie ou une hémorragie
récente.
 Leucocytes : Utile pour déceler une infection ou un processus
inflammatoire.
 Plaquettes : Utile pour mesurer l’effet de la chimiothérapie, dépister
un cancer du sang ou une hémorragie récente.
 Hb (Hémoglobine) La concentration d’hémoglobine nous indique la
quantité totale en grammes d’hémoglobine dans un litre de sang dans
le sang périphérique. Chaque globule rouge contient des molécules
d’hémoglobine (Hb) qui permettent le transport de l’O2 et du CO2.
Utile pour dépister et mesurer la gravité de l’anémie.
 Ht (Hématocrite) Renseigne indirectement sur le nombre et le
volume des globules rouges. Exprimé sous forme de pourcentage, il
sert de numération rapide des globules rouges.
EDTA
S/A

25. Vitesse de sédimentation
La vitesse de sédimentation est le temps
nécessaire aux éléments figurés du
sang pour sédimenter c'est-à-dire
tomber librement au bas d'une
colonne de sang incapable de
coaguler.
Ce test est non-spécifique mais il
permet d’orienter un diagnostique de
maladies inflammatoires comme le
rhumatisme articulaire, la péricardite
et la maladie de Crohn.
S/A

26. Troponine T (vert pomme)
Le dosage de la troponine T
est un des meilleurs outils de
diagnostic de l’infarctus
même si l’ECG demeure
normal.
S/A

27. Hémocultures
Une hémoculture est un prélèvement de sang
veineux, qui est ensuite mis en culture afin
d'y rechercher des microbes pathogènes.
Il sert à déterminer à quels antibiotiques
les microorganismes sont sensibles ou
résistants et indique l’antibiotique le plus
efficace pour le traitement.
 Hémocultures régulières
 Hémoculture FAN (lorsque que le
client prend des antibiotiques Hémocultures
aérobie et
anaérobie FAN
S/A

28. Complications possibles
Ecchymose ou hématome
Piqûre accidentelle
Syncope ou perte de conscience
Nausées, vomissements
Atteinte du nerf médian
S/A