"Colloque 2017" Séquence 8.4

1. Caractérisation du biofilm dans les canalisations
d’élevage de volaille, et évaluation de l’effet de purges
sur la maitrise du biofilm et de la qualité de l’eau.
DENNERY Gaëlle
Chambre régionale d’Agriculture des Pays de la Loire / ITAVI . France.

2. Lille - 22 au 24 février 2017
Bâtiments d’Elevage de demain : construire l’avenir 2
Sommaire
1. Introduction
2. Matériels et Méthodes
3. Résultats
4. Discussions

3. Lille - 22 au 24 février 2017
Bâtiments d’Elevage de demain : construire l’avenir 3
L’eau : un intrant majeur en élevage de volailles
Cooling,
brumisation

4. Lille - 22 au 24 février 2017
Bâtiments d’Elevage de demain : construire l’avenir 4
Qualité d’eau : pas de réglementation mais des
recommandations humaines
Paramètres
Physico-chimiques
Préconisations
pH 5,5 < pH < 6,5
Dureté (TH) 10 à 15 °F
Fer ≤ 0,2 mg/l
Manganèse ≤ 0,05 mg/l
Nitrates ≤ 50 mg/l
Nitrites ≤ 0,1 mg/l
Matières organiques ≤ 2 mg/l
Paramètres
bactériologiques
Préconisations
(germes par volume
d'eau prélevé)
Germes totaux
à 22 °C ≤ 100 (dans 1 ml)
à 37 °C ≤ 10 (dans 1 ml)
Coliformes
totaux
0 (dans 100 ml)
E. Coli fécaux 0 (dans 100 ml)
Entérocoques
intestinaux
0 (dans 100 ml)
Bactéries sulfito-
réductrices
0 (dans 20 ml)

5. Le biofilm : un dépôt inévitable ?
• Dépôts organiques (résidus de
produits), souvent mêlés à des
dépôts minéraux (tartre, fer,
manganèse,…), vont favoriser le
développement de germes
(bactéries et champignons).
• L’ensemble constitue un film gras
au toucher recouvrant les parois
des canalisations.
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Bâtiments d’Elevage de demain : construire l’avenir 5
Germes
résistants
Tartre
Résidus
de produits
Dépôts de fer /
manganèse
Mycélium
Biofilm
invisible
Schéma d’une coupe transversale d’une canalisation recouverte de biofilm.

6. Lille - 22 au 24 février 2017
Bâtiments d’Elevage de demain : construire l’avenir 6
Maitrise de la qualité de l’eau
• Protocole de nettoyage et désinfection à chaque vide
sanitaire.
• Mise en place de traitements de l’eau en amont du
bâtiment, à adapter en fonction des indicateurs de
l’analyse d’eau.
• Suivi régulier du fonctionnement du traitement et de
la qualité de l’eau en bout de ligne d’abreuvement.
Ajout d’une base
forte :
Elimination des
dépôts organiques
Rinçage à
l’eau claire
sous pression
(1 à 2 bar)
Ajout d’un acide
fort :
Elimination des
dépôts minéraux
Rinçage à
l’eau claire
sous pression
(1 à 2 bar)
Désinfection
avec un produit
homologué
(chlore, iode,
peroxyde et acide
péracétique.)
Rinçage à
l’eau claire
sous pression
(1 à 2 bar)

7. Lille - 22 au 24 février 2017
Bâtiments d’Elevage de demain : construire l’avenir 7
L’état des lieux
• Aujourd’hui environ 50% des eaux sont satisfaisantes
bactériologiquement
• Le biofilm est associé à une qualité d’eau dégradée,
et peut représenter une source de recontamination
possible.
• Son élimination régulière est fortement
recommandée.

8. Lille - 22 au 24 février 2017
Bâtiments d’Elevage de demain : construire l’avenir 8
Purge sous pression des canalisations ?
• La réalisation de purges présente plusieurs intérêts :
– Pas d’utilisation d’intrants biocides
– Possibilité de l’automatiser pour diminuer le temps
d’astreinte
– Mais quelle efficacité sur le biofilm et la qualité de l’eau ?
– Quels coûts pour l’éleveur ?

9. Matériel et Méthode
Lille - 22 au 24 février 2017
Bâtiments d’Elevage de demain : construire l’avenir 9
J1 J4 J7 J10 J20 J28
 Caméra endoscopique
 Analyse B. et PC eau forage
+ sas + BL
 Caméra endoscopique
 Prélèvement fientes
 Analyse B. eau BL
 Caméra endoscopique
 Prélèvement fientes
Mesure de l’évaluation de l’effet de la purge de l’eau sur sa qualité
Elevage poulet de chair standard
J14
JX JX
Faire tourner la fibre sur elle-
même pour orienter l’angle de la
caméra
Il est conseillé de filmer à
contre sens du courant.

10. Matériel et méthodes
• 7 lots suivis dans 5 bâtiments, équipés de pipettes, de deux marques différentes.
• 3 élevages équipés en partie de systèmes de purges automatiques
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Elevage A (1 bat. E
- 1 lot de poulets
lourds)
Durée : 45 sec. par
ligne.
Fréquence : S1 : 6/jr,
S2 : 4/jr, puis 2/jr
jusqu’à la fin du lot.
Elevage B (2 bat.
T/E - 2 lots de
poulets standards)
Durée : 2 min par
ligne
Fréquence : 1/jr pdt
10 j. puis uniquement
après administration
de produits.
Elevage C (2 bat.
T/E - 1 lot de
poulets exports)
Durée : 10 min. par
ligne
Fréquence : 1/jr a
partir de J3

11. Grille de caractérisation du biofilm
• 3 types d’observations ont été définis à partir de la diversité
des situations rencontrées :
– le niveau de colonisation du biofilm caractérisé par la surface à
l’intérieur des canalisations recouverte par le biofilm et l’épaisseur du
biofilm. Cet indicateur est peut-être le plus important.
– L’arrière des pointeaux de pipettes par rapport au sens de circulation
de l’eau. Cela correspond à une zone difficilement nettoyable car à
l’abri de la pression lors des purges et rinçages.
– La présence de particules de biofilm en suspension dans l’eau qui
s’écoule.
• 3 catégories définies par le niveau bas et haut observé, avec
une situation intermédiaire.
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12. Lille - 22 au 24 février 2017
Bâtiments d’Elevage de demain : construire l’avenir 12

13. Lille - 22 au 24 février 2017
Bâtiments d’Elevage de demain : construire l’avenir 13

14. Mise au point d’un protocole d’observation
répétable
• Rentrer lentement la fibre optique dans la canalisation en bout
de ligne, sans couper l’eau.
• Ce faisant, observer les éventuelles particules en suspension
dans l’eau.
• Le plus loin possible (longueur du câble), observer l’angle à
l’arrière du pointeau de pipette le plus proche.
• Enfin retirer lentement la caméra en observant les parois et
l’éventuelle trace laissée dans le biofilm par la caméra pour
estimer son épaisseur ainsi que la répartition du biofilm à
l’intérieur de la canalisation. »
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15. Les résultats
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Bâtiments d’Elevage de demain : construire l’avenir 15

16. Santé Animale : Fientes Humides et Mortalité
• Amélioration du taux de fientes
humides.
• Des problèmes sanitaires sont
survenus sur 2 lots témoins sur 3 et 2
lots tests sur 4.
• Le taux de mortalité moyen des lots
témoins (4,77% ± 5,7%) est en
moyenne plus élevé que les lots tests
(1,81% ± 1,1%).
• On ne peut donc pas conclure à une
amélioration de la santé animale en
lien avec la réalisation ou non de
purges.
Evolution moyenne du taux de fientes
humides (% FH) avec ou sans purges
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17. Evolution du biofilm
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Qualité du nettoyage et
désinfection impacte la
présence de biofilm.
Qualité du nettoyage et
désinfection impacte la
présence de biofilm.
Des purges régulières ralentissent le
développement du biofilm, mais ne
le suppriment pas.
Des purges régulières ralentissent le
développement du biofilm, mais ne
le suppriment pas.

18. Qualité bactériologique de l’eau
• Une eau était considérée comme non
satisfaisante (score 1) si au moins
deux des critères bactériologiques
dépassaient les préconisations
habituelles. Le cas échéant le score 0
était attribué pour satisfaisant.
• Les lots témoins ont globalement
tendance a avoir une qualité d’eau
plus détériorée que les lots essais,
notamment lors de la phase du
démarrage (0-10j)
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19. Fréquence des purges
Evolution des scores de colonisation du biofilm selon la
fréquence de purges
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Fréquence élevée de purge
limite le développement du
biofilm
Fréquence élevée de purge
limite le développement du
biofilm

20. Volume d’eau utilisé
Volume total d’eau utilisé par lot selon les pratiques de purges,
ramené à un bâtiment de 1500 m² - 33 j.
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Bâtiments d’Elevage de demain : construire l’avenir 20
Fréquence élevée n’est pas
synonyme de
consommation élevée.
Dépend de la durée de la
purge.
Fréquence élevée n’est pas
synonyme de
consommation élevée.
Dépend de la durée de la
purge.

21. Pour résumer
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22. A retenir
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Bâtiments d’Elevage de demain : construire l’avenir 22

23. Pour aller plus loin
REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES
Aviagen Turkeys, Guide d’élevage dinde de chair, BUT Nicholas, 24p
Barton L.T., 1996, Poultry Science 75:854-856
Bostvironnois C., 2003, Journées de la recherche Cunicoles
Dennery G., Dezat E., Aubert C., 2012. L’eau en élevage avicole, une consommation
maitrisée.
Guérin JL., Balloy D., Villate D., 2011, Maladies des Volailles, Ed. France Agricole
ITAVI, Chambre d’agriculture des Pays de la Loire, 2007, Eau de boisson en élevage
avicole.
ITAVI, Chambre d’agriculture des Pays de la Loire, 2010, Eau de boisson en élevage
avicole
MINISTÈRE DE LA SANTÉ ET DES SOLIDARITÉS, Arrêté du 11 janvier 2007, NOR :
SANP0720201A.
Venne D., 2009, Bull. Acad. Vét. France - Tome 162 - N°3
Lille - 22 au 24 février 2017
Bâtiments d’Elevage de demain : construire l’avenir 23