LES BABESIOSES ET LES THEILERIOSES Dr Benlaribi Imane Halima.pptx

• Babésioses: zoonoses,
émergentes sur tous les
continents habités,
• Parasites: Apicomplexa,
hématozoaires du genre
Babesia,
• Transmission: tiques
Ixodidae, Ixodes +++.
• Réservoir: mammifères.
• Homme: hôte accidentel.
J.Maslin et al. Babésioses, EMC 2004.
S. C. Parija. Texbook of parasitic zoonoses, 2022.

• Piroplasmose: aspect piriforme de Babesia.
• Clinique: anémie hémolytique fébrile (malaria-
like syndrome).
Babésiose européenne:
Parasite: Babesia divergens.
Grande forme.
EU1= B. venatorum
Vecteur: Ixodes ricinus.
Babésiose bovine.
Splénectomisés
+++mortelle
Babésiose américaine:
Parasite: Babesia microti
Petite forme.
B. duncani (WA-1), MO-1.
Vecteur: Ixodes scapularis.
Babésiose des rongeurs.
Souvent inaperçue
J.Maslin et al. Babésioses, EMC 2004.

1888
• Victor Babes, biologiste romain, germe dans les hématies «Hematococcus
bovis », la maladie « hémoglobinurie bactérienne du bœuf » et que cet
hemosporidie est l’agent de « la fièvre du Texas » du bétail romain.
1889
• Smith et Kilborne, fièvre de texas chez les bœufs, germe semblable à celui
decrit par Babes, « Pyrosoma bigeminum », +longues que le rayon de
l’hématie (grandes formes), rôle des Tiques dans la transmission.
1892
• Babès, microorganisme semblable chez des moutons malades «
Hematococcus ovis », leur longueur est inférieure à celle du rayon de
l’hématie (petites formes).
G. DINULESCU, M. BABÈS. Sur la priorité de la découverte des babésies, Classification et terminologie.
Scholtens RG, Braff EH, Healy GR, Gleason N. Un cas de babésiose chez l'homme aux États-Unis. Un m. J. Trop. Méd. Hyg. 1968.

1893
• Starcovici a donné à cette dernière Hémosporidie le nom de « Babesia
ovis ».
1957
• 1er Cas humain à B. divergens (Europe) chez un éleveur de bovins,
splénectomisé, yougoslave .
1966
• 1er cas humain à B. microti chez un patient de Californie (USA) .
G. DINULESCU, M. BABÈS. Sur la priorité de la découverte des babésies, Classification et terminologie.
Scholtens RG, Braff EH, Healy GR, Gleason N. Un cas de babésiose chez l'homme aux États-Unis. Un m. J. Trop. Méd. Hyg. 1968.

• Protista.
Règne
• Protozoa
Sous règne
• Apicomplexa (Levine, 1980)
Phylum
• Hematozoa (Vivier, 1982)
Classe
• Piroplasmorida (Wenyon, 1926)
Ordre
• Babesiidae .
Famille
• Babesia (Starcovici, 1893).
• Theileria
Genre
S. M. Adl et al. Revisions to the Classification, Nomenclature, and Diversity of Eukaryotes. Journal of Eukaryotic Microbiology 2019, 66, 4–119

Figure: Phylogenetic tree based on a fraction (411-
452bp) of 18S rRNA gene of selected Babesia spp.
Piroplasmes occidentaux,
Groupe Duncani ou prototheileridés
Archéopiroplasmides
Groupe Microti
Theileridés
Unguilibabesids
Babesids
+
Criado-Fornelio et al., 2003 , Lack et al., 2012 , Schnittger et al., 2012

+100 espèces,
Babésioses humaines:
https://www.cdc.gov/dpdx/babesiosis/index.html
B. microti
B. duncani (WA-1)
B. MO-1
B. divergens
EU1= B. venatorum
Espèce semblable à B.
microti

• 3 stades:
– Sporozoite:
– Trophozoite:
– Mérozoite:

• Sporozoite:
– Forme infestant,
– Transmis par morsure de
la tique,
– Piriforme,
– Complexe apical:
rhoptries et
micronème…
– Pénètre les GR.

Forme
annulaire
En croix de
Malte
Aspect
germiné
1,5 à 5 µm
0,5 à 2,5 µm
Trophozoïte Mérozoïte

• 2012:1er séquençage complet du
génome de B. microti:
• B. éloigné des autres
apicomplexes,
• Génome de B. microti: 4
chromosomes+ 1 gène
mitochondrial +1 apicoplaste
circulaire.
– Génome nucléaire ≈ 6,5 Mb, le
plus petit génome apicomplexe,
– Génome mitochondrial ≈ 11,1 kb
– Génome apicoplaste ≈ 28,7 kb.
•

• En phase de développement.
• Nanotechnologie + spectrométrie de masse:
profil protéomique de B. microti.
• + de 500 protéines parasitaires ont été
identifiées et jouent un rôle dans:
– Transport,
– Métabolisme des glucides et de l'énergie,
– Protéolyse,
– Métabolisme de l'ADN et de l'ARN,
– Signalisation,
– Traduction,
– Biosynthèse des lipides,
– Motilité et l'invasion.
• Certains Ags de surface: rôle dans la RI.
• Ag BmSA1 et Ag BMR1_03g00947:
déclenchent une RI de l'hôte.
• 2 Protéines invasives des mérozoïtes:
– Ag de surface 1 des mérozoïtes (MSA-1)
– La protéine 1 associée à la rhoptry (RAP-1).

• Morsure des Tiques.
• Famille des Ixodidae:
seuls vecteurs connus.
• Transmission du
parasite/ vecteur:
Transovarienne +
Transtadiale.
Ornithodorus erraticus ,
Argasidés , transmet B.
meri , du Psammomys
obesus en Afrique
Michael J. Yabsley and Barbara C. Shock. Natural history of Zoonotic Babesia: Role of wildlife reservoirs. Intl J
Parasites and Wildlife.2013

• Transmission
transfusionnelle:
Amérique du Nord+++,
zone d’endémie+.

• Transmission verticale
(mère –fœtus):
– Transplacentaire durant
la grossesse: plusieurs
cas à B.microti, Nord-Est
des EUA.
– Prénatal (pendant
l’accouchement): rares
cas (CDC).

• Arthropodes, Acariens,
Ixodidés.
• Ectoparasites
hématophages des
vertébrés.
• Aspect globuleux avec un
"corps", un rostre
antérieur,04 paires de
pattes locomotrices.

Figure : Larve (A), nymphe (B), mâle adulte (C), femelle adulte (D) et femelle gorgée
d'œufs (E) d' Ixodes scapularis.
www.cdc.gov/parasites/ .
30mm
Hexapode,
0,5- 1mm
3-5mm
Hématophage: 2 sexe, tous stades.

Babésiose européenne:
Parasite: Babesia divergens.
Grande forme.
EU1= B. venatorum
Vecteur: Ixodes ricinus.
Babésiose bovine.
Splénectomisés
+++mortelle
Babésiose américaine:
Parasite: Babesia microti
Petite forme.
MO-1,WA-1.
Vecteur: Ixodes scapularis.
Babésiose des rongeurs.
Souvent inaperçue

Babesia divergens Babesia microti
Souris à pattes blanches
« Peromyscus leucopus »

P. J. Krause. Human babesiosis. International Journal for Parasitology. 2019, Pages 165-174

Mérogonie
Gamogonie
Sporogonie
3 Phases

Gamogonie
Sporogonie
N’a pas été
documentée pour les
« petites » Babesia,
telles que B. microti

S. I. Bonnet, C. Nadal. Experimental Infection of Ticks: An Essential Tool for the Analysis of Babesia Species Biology and Transmission. Link:
https://www.mdpi.com/2076-0817/10/11/1403

EUA:
2013: 1 796 cas
diagnostiqués dans 27
États¹.
2018: 2 161 cas not é
dans 28 Etats²,
¹P. Audry et al.2016. med trop.
² S. C. Parija. Texbook of parasitic zoonoses, 2022.
P. J. Krause. Human babesiosis. International Journal for
Parasitology. 2019, Pages 165-174

EUA:
30 ans
162 cas par transfusion
4 décès
P. Audry et al.2016. med trop.

EUROPE:
2011
40 cas signalés
+++France, Irlande,
Grande-Bretagne,
+ Suède, Suisse, Espagne,
Portugal et Croatie.
Centeno-Lima et al., 2003 , Moreno Giménez et al., 2006 , Martinot et al., 2011

ASIE:
Rares
Japon, à Taïwan, en Corée,
en Inde et en Chine
Wei et al., 2001 , Arai et al., 2003 , Marathe et al.,
2005 , Kim et al., 2007 .

ASIE:
• Espèces semblables
à B. microti:
Japon, Taïwan, Chine.
• Babesia . sp. (KO1)
apparenté à B. ovis:
Corée.
Wei et al., 2001 , Arai et al., 2003 , Marathe et al.,
2005 , Kim et al., 2007 .

AFRIQUE:
Rarement diagnostiqué,
Egypte, Afrique du Sud,
Soudan, Mozambique,
Cote d’Ivoire, Nigeria.
Michael et al., 1987. El-Bahnasawy et Morsy, 2008 , El-Bahnasawy et al., 2011. Bush et al., 1990
P. Audry et al.2016. med trop

AFRIQUE:
• 3 cas en Égypte:
– 1er cas : ouvrier agricole
splénectomisé.
Sérologie (+), guérison
après traitement.
– 2 autres cas: maladies
bénignes, disparu après
le traitement.

AFRIQUE:
• 2 cas suspects en Afrique
du Sud (parasites intra-
érythrocytaires Babesia:
– 1 rétabli après un
traitement (quinine +
tétracycline),
– 1 décédé malgré le
traitement.

AFRIQUE:
• Plusieurs Babesia sp. sig
nalés chez des animaux
sauvages et
domestique.
• Aucune analyse de
séquence n'a été
effectuée sur des cas
humains,
Mazyad et al., 2010 .

AFRIQUE:
• Aucun réservoir
de Babesia spp. sont
actuellement connus.
• Peu d'études ont
enquêté sur les
vecteurs.

AFRIQUE:
Étude sur la péninsule du
Sinaï (Égypte):
B. divergens -like
sp. et B. sp. EU1 chez
I. ricinus .

AUSTRALIE:
• 1er cas en 2010
• Des patient sans antécédents de voyage:
– Ac anti B. microti et B. duncani.
• Babésioses chez des animaux domestiques et
sauvages.
• Aucun réservoir ni vecteur identifié.
Mayne, 2011

AMERIQUE DU SUD:
• 3 cas de babésiose non caractérisée:
– 2 au Brésil,
– 1 en Colombie.
Ríos et al., 2003 , Rech et al 2004

Espèce Distribution géographique Vecteur(s) Hôtes réservoirs
Complexe Babesia microti
Babesia microtis
États-Unis (nord-est, haut Midwest
et centre de l'Atlantique)
Ixodes scapularis Rongeurs
Babesia sp. Kobé Asie (Japon, Russie, Corée) Inconnu Rongeurs
Babesia sp. Chine Ixodes persulcatus Rongeurs
Babesia sp. Munich L'Europe Ixodes ricin Rongeurs
B. microti -like sp. Australie Inconnu Rongeur?
Babesia sp. TN1 États-Unis (Tennessee) Inconnu Inconnu
Babesia sp. KO1 Corée Inconnu Inconnu
Babesia duncani (= Babesia sp.
WA1)
États-Unis (Californie, Washington) Ixodes scapularis Inconnu
Babesia sp. Type CA États-Unis (Californie) Inconnu Inconnu
Babesia sp. MO1
États-Unis (Missouri, Kentucky,
Washington, Massachusetts)
Ixodes dentatus Lagomorphes
Babesia sp. ( semblable à B.
divergens )
Chine Inconnu Inconnu
Babesia sp. ( semblable à B.
divergens )
Îles Canaries, Espagne Inconnu Inconnu
Babesia divergent L'Europe Ixodes ricin Bovins
Babesia sp. UE1 (= B. venatorum ) L'Europe Ixodes ricin Cervidés
Babesia sp. Mexique Inconnu Inconnu
Babesia spp. Amérique du Sud (Colombie, Brésil) Inconnu Inconnu
Babesia spp. Afrique (Afrique du Sud, Égypte) Inconnu Inconnu
Tableau: Caractéristiques de l'histoire naturelle des principaux agents des babésioses humaines.

SUJET A RISQUE
• Profession:
– Sujets travaillant en zone
rurale, chasseurs,
militaires, forestiers,
éleveurs.
• Voyageur:
– randonneurs, campeurs.

SUJET A RISQUE
• Age:
– > 50 ans: forme sévère.
• Sexe:
– Masculin++/ profession.

SUJET A RISQUE
• Sujets splénectomisés:
80%forme symptomatique
en Europe.
• Immunodéprimés: -
fréquente, pas chez les
VIH+.
• Forme sévère au EU:
Atteinte coronaire,
insuffisante respiratoire,
alcoolisme, diabète.

Babésiose à B.microti
• Incubation :
– 1 à 6 semaines/ tique.
– 1 semaine à 6 mois/ transfusion.

• 4 formes:
– Asymptomatique,
– Syndrome pseudogrippal,
– Symptomatologie +modérée évoquant un paludisme
– Fièvre aigue et brutale.
• ¼ adultes +1/2 enfants:
– Asymptomatique.

• Signes:
– Fièvre brutal+ sueurs profuses d’installation
progressive,
– Asthénie,
– Malaise général,
– Céphalées,
– Myalgies,
– Anorexie.

• Guérison:
– Plusieurs semaines et mois.

Babésiose à B. divergens :
Grave chez les sujets splénectomisés
• Incubation:
– 1à 3 semaines,

Grave chez les sujets splénectomisés
• Signes:
– Asthénie,
– Fièvre brutal et non périodique,
– Frissons,
– Lombalgies,
– Sueurs profuses,
– Céphalées,
– Douleurs abdominales.

Grave chez les sujet splénectomisés
• Examen:
– Ictère cutanéo-muqueux de couleur orangé,
– HPSM variable,
– Urine foncé (hémolyse intravasculaire).

Complications :
• Œdème pulmonaire détresse respiratoire
aiguë.
• CIVD.
• Insuffisance cardiaque congestive.
• Hémolyse  Insuffisance rénale.
• Trouble de conscience  coma  décès.

Babésiose à B. duncani et B.
venatorum :
• ≈ B. microti,
• Grave chez les sujets immunodéprimés.

Anémie hémolytique :
éclatement des GR/ mérozoites

bilirubine libre, hémoglobunirie, ictère.

Anoxie et défaillance multiviscérale.

Thrombopénie:
Séquestration
+
Destruction par les macrophage/
hypersplénisme.

Fièvre et myalgie:
Production excessive de cytokines pro-
inflammatoire.

Œdème pulmonaire:
Séquestration des GR parasités

A. E. Rodriguez. Current and prospective tools for the control of cattle-infecting Babesia parasites, 2013

Interrogatoire:
• Séjour dans la campagne, promenade en forêt en zone
d’ endémie.
• Activité rurale.
• Notion de morsure de tique.
• Splénectomie.

Eléments d'orientation:
• Anémie hémolytique non corrigée par
transfusion.
• Hb
• Hémoglobinémie↑↑
• Hémoglobinurie.
• Réticulocytes ↑.
• Thrombopénie.

• Haptoglobine 
• Bilirubine libre↑
• Urée et créatinine sanguine ↑ = insuffisance
rénale.

Fièvre + anémie hémolytique aigue + morsure
de tiques
+
Splénectomie

Babésiose

Diagnostic direct :
• Frottis sanguin coloré au MGG :
– Formes annulaires ++,
– Formes en poires,
– Formes germinées,
– Formes en tétrades.

Diagnostic direct :
– Parasitémie (1 -80%):
• Très élevée: B. divergens (>50%),
• Faible: +++ B. microti.

Diagnostic direct :
– Absence de pigments.
– Polyparasitisme +++: > 3

Figure : Babesia sp. dans des frottis sanguins épais colorés au Giemsa.

Figure : Babesia sp. dans un mince frottis sanguin coloré au Giemsa.

Figure: Babesia sp. dans un mince frottis sanguin coloré au Giemsa.

Figure: Babesia sp. dans un mince frottis sanguin coloré au Giemsa. Notez les
tétrades, une forme de division caractéristique de Babesia .

Figure: Babesia sp. dans un mince frottis sanguin; forme tétrade, paires
alignées.

Figure: Babesia microti dans un frottis sanguin mince coloré au Giemsa. Babesia sp. ne
peut pas être identifié au niveau de l'espèce uniquement par la morphologie; des tests
supplémentaires, tels que la PCR, sont toujours recommandés.

Figure: Babesia microti dans un frottis sanguin mince coloré au Giemsa. Babesia sp. ne
peut pas être identifié au niveau de l'espèce uniquement par la morphologie; des
tests supplémentaires, tels que la PCR, sont toujours recommandés. Notez la forme
tétrade dans cette image.

Figure: Babesia microti dans un frottis sanguin mince coloré au Giemsa. Notez les
formes vacuolées intra-érythrocytaires indiquées par les flèches noires.

Figure: Babesia MO-1 dans un frottis sanguin mince coloré au Giemsa. Notez la tétrade.

Figure: Babesia duncani dans un frottis sanguin mince coloré au Giemsa. Babesia
sp. ne peut pas être identifié au niveau de l'espèce uniquement par la
morphologie; des tests supplémentaires, tels que la PCR, sont toujours recommandés.

Babesia /Plasmodium
• Pléomorphes (varient
en forme et en taille),
• Peuvent être vacuolés,
• Ne produisent pas de
pigment.
• Forme en tétrade
« croix de Malte ».

Diagnostic direct :
• Test QBC à l'acridine
orange:
– Urgence

Diagnostic direct :
• Culture in vitro :
– En phase stationnaire
microaérophile (MASP):
prolifération des
parasites dans une
couche déposée de
cellules sanguine

Diagnostic direct :
• Culture in vitro :
– Composition:
– Milieu tamponné HAPES
199+
– Sérum bovin +
– CR infectés et sains
– pH 7.
– Incubation à 37°C? 5%
CO2
– (+): virage du rouge au
noir du milieu,

Diagnostic direct :
• Inoculation à l'animal :
– Permet le diagnostic
d'espèce
– B.microti
– B.divergens

Diagnostic direct :
• PCR:
– Faible parasitèmie (une technique colorimétrique
<0,001%).
– Différenciation difficile entre Babesia sp. et
Plasmodium sp. sur frottis sanguin.
– Enquêtes sur les nouvelles variantes (ou espèces)
de Babesia.
– Diagnostic de l’espèce: ADN 18sr, ARN ribosomal, ITS1
et 2.
S. C. Parija. Texbook of parasitic zoonoses, 2022

Diagnostic indirect :
• Indication:
– Donneurs de sang
asymptomatiques,
– Suivi post thérapeutique,
– Discrimination entre l'
infection à Plasmodium
falciparum et l'infection
à Babesia sp.

• Immunofluorescence
indirecte (IFA):
– Ag B. microti: détecte les
Ac chez 88 à 96 % des
patients infectés par B.
microti .
– Lames d’Ag: érythrocytes
lavés et parasités produits
chez des hamsters.

indirecte (IFA):
– Titres  ≥1/1024: 1ères
semaines,
–  progressivement sur 6
mois: titres 1/16 à
1/256,
– Titres faibles: 1 an ou +.

indirecte (IFA):
Réactions croisées de
faible titre chez patients
inféctés /Plasmodium

Ag homologue
+
Seuil élevé.

• Formes symptomatique:
pas de TRT,
• Symptomatique: per os
– Atovaquone (750
mgX3/j)+ Azithromycine
(500-1000mg/j),
– Clindamycine (600mgX3/j)
+ Quinine (650mgX3/j)
– Durée: 7-10 j.
B. microti et B. venatorum

• Symptomatique: IV
– Clindamycine
(600mgX3/j) + Quinine
(650mgX3/j)
– Durée: 7-10 j.
B. divergens et B. duncani
P. J. Krause. Human babesiosis. International Journal for Parasitology. 2019, Pages 165-174

Forte parasitémie >10% (B. microti, moins
pour B. divergens):
Exsanguino – transfusion

parasitémie
+
éliminer métabolites toxiques

• Éviter les promenades
dans les forêts
infestées.
• Porter des vêtements
longs et clairs,
chaussures fermés, se
doucher après retour.

• Extraction immédiate de
la tique:
– Tuer la tique avec une
goutte d’éther+ d’alcool,
– Tirer droit vers l'extérieur
et d'un cou sec,
– Ne pas détacher la tète du
corpsneurotoxines
Paralysie des muscles
respiratoires

• Produits répulsifs
(NDMT).
• TRT des animaux
domestiques.
• Pas de vaccin humain.

• Theilerioses : piroplasmoses ,
• Hôte: mammifères, homme.
• Parasite: Theileria.

Bovins:
Theileria parva Theileria annulata
(Theiler,1904)
(fièvre de la côte est) (Theilériose tropicale)

Homme (IC+ID)/rongeurs:
Theileria microti
Tique: Ixodes scapularis.

Morsure de tique.
Pas de transmission transovarienne.

Mérogonie lymphocytaire pré-érythrocytaire

Mérogonie érythrocytaire (>4)

Gamogonie: intestin de tique

Sporogonie: glande salivaire de tique

Gamogonie
Sporogonie
Pas transmission
transovarienne

Theilériose humaine :
• Amérique:
– EUA,
– Mexique.
• Europe :
– Grande-Bretagne,
– Allemagne,
– Europe centrale.

• Asymptomatique,
• Forme fulminante mortelle (5%):
– Anémie hémolytique sévère,
– CIVD,
– Insuffisance rénale et respiratoire.
• Sujets splénectomisé âgés ou immuno-
compromis → infection plus graves.

• Frottis sanguin coloré par MGG:
– Forme annulaire, en virgule, en tétrade.
– T.microti B. divergens.
• IFI, western blot.
• PCR: dgc de l’espèce.

Maladies humaines transmises par les tiques
sont connues depuis longtemps.

Méthodes de biologie moléculaire: apport
important pour le dgc des babésioses et
theilerioses (nouveaux cas) et d’espèce et
variant.

Vaccin animal disponible
Prospective vaccinale chez l’homme

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