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PATHOGEN È SE DES L É SIONS H É PATIQUES DU VHC :   MOD É LISATION  ANIMALE   Hervé LERAT INSERM U955 Département de Virologie Moléculaire et Immunologie Physiopathologie et Thérapeutique des Hépatites Virales Chroniques (Pr. Pawlotsky)   Hôpital Henri Mondor, Créteil, France.
Nécessité de développement de modèles animaux ,[object Object],Pathologies viro-induites:  contribution du virus?
Modèles animaux pour l’étude des pathologies induites par le VHC ,[object Object],[object Object],[object Object],Modèles d’infection ,[object Object]
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[object Object],[object Object],[object Object],Modèles animaux pour l’étude des pathologies induites par le VHC Modèles d’expression des protéines virales ,[object Object],[object Object],[object Object],[object Object],[object Object]
Modèles transgéniques pour le VHC   Lésions hépatiques induites par VHC spécifiques CTL Inhibition voie FAS Wakita, 1998 Core-E1-E2-p7-NS2 Production ROS augmentée Korenaga, 2002  Core-E1-E2-p7 Dysplasie pour le mutant S99Q Wang, 2004 Core (mutants) Modulation de l’apoptose induite par la voie FAS Honda, 1999 Core-E1-E2 Modulation de l’apoptose induite par la voie FAS, IR (IRS-1) Honda, 2000  Core  Stéatose ,  Inhibition de MTTP et VLDL sécrétion, IR CHC ,   stress   oxydatif, stress RE Modulation de la voie de l’IFN, Moriya 1997 Core  Core-E1-E2-p7 Core-E1-E2 Core-E1-E2 Core Core Core  Protéine(s) virale(s) Stéatose ,  CHC,   sensibilité au   stress oxydatif Lerat, 2002 Steatose ,  CHC   Naas, 2005 Co-carcinogène   (+DEN) Inhibition of Fas-mediated apoptosis  Kamegaya, 2005 Co-carcinogène   (+DEN) Kamegaya, 2005 Co-carcinogène   (+CCl4) Kato, 2003 Lymphome et  adénomes hépatocellulaires Ishikawa, 2003 Principales pathologies Article princeps
Modèles transgéniques pour le VHC   (suite) Augmentation de l’incidence des  CHC  et de la  Stéatose Keasler, Lerat et al. 2006 Polyprotéine entière + HbX Modulation de la voie TNFα Frelin, 2006 NS3-4A Exocrinopathie: Sialadenitis (glandes salivaires)  Koike, 1997 E1-E2  Polyprotéine entière Polyprotéine entière NS5A Protéine(s) virale(s) Stéatose , nécrose  Inhibition de la voie IFN (STAT) Blindenbacher, 2003 Stéatose ,  CHC , sensibilité au stress oxydatif inhibition voie FAS et réponse immune intra-hépatique Inhibition des protéines pro-apoptotiques CIDE-B et Bid CHC   par surcharge en fer, inhibition de l’hepcidine Lerat, 2002 Modulation de la voie TNFα Majumder, 2003 Principales pathologies Article princeps
Les modèles transgéniques FL-N/35 et S-N/863  (Lerat et al., Gastroenterology, 2002) micro-injections C57BL6J x C3H/HeJ X  C57BL6J souris F0,  ADN  VHC  + souris F1,  ARN  VHC  + X C57BL6J jusqu’à F8 Foie S-N/863 SL-139 FL-N/35 S-N SV40 PolyA FL-N E1 E2 core NS4a NS3 NS4b NS5a NS5b NS2 p7 Promoteur albumine Promoteur albumine E1 E2 p7 SV40 PolyA core
Carcinomes hépatocellulaires 1 cm 1 cm FL-N/35-170 FL-N/35-171 A Lerat et al., Gastroenterology 2002.
CHC viro-induits: mécanismes moléculaires?
CHC viro-induits: mécanismes moléculaires? Modulation du cycle cellulaire Incorporation de BrdU HCV TG Non TG ARNm Cyclin B1  MYC 1 3 5 7 9 mRNA (Fold increase) HCV TG Non TG HCV TG Non TG Détection PCNA HCV TG Non TG
Down-regulation of apoptosis in HCV-transgenic mice % apoptotic hepatocytes 0 10 20 30 40 50 non TG HCV TG P<0. 05 in vivo P<0.01 ex vivo HCV TG Non TG Hoechst + - Fluorescence intensity 0 1 6 15 Non TG HCV TG activated Casp 3 (17kDa) Hours post  FasL injection
Down-regulation of pro-apoptotic proteins in HCV-transgenic mice (Disson et al., Gastroenterology, 2004) Bid GAPDH LIVER KIDNEY HCV tg - + - + Bid 24 kD Activated caspase 8 Bid-N 10 kD Bid-t 14 kD Cytochrome C + Apoptosis WT HCV tg 0 0.4 0.2 0.6 0.8 1 1.2 Bid protein level (AU) Bid N=13 N=10 p<0.01
Towards a mechanism for HCV-induced carcinogenesis? Apoptotic signaling alteration in HCV mice HCV APOPTOSIS caspase 3 caspase 9 cytochrome C caspase 8 Fas FasL Bid Cell membrane mitochondria HCV CIDE-B DNA fragmentation A step toward cancer CIDE-B Annexin V HCV TG + - Erdtmann et al., J Biol Chem 2003.
Persistence of adenovirus infection in  HCV+ hepatocytes (Disson et al., Gastroenterology, 2004) Day 3 Day 21 non TG HCV TG Ad   Gal 10 8  pfu/g D +3 Liver biopsy D +21 (sacrifice) Liver and spleen  removal  -gal histology + enzymatic assay
Persistence of adenovirus infection in  HCV+ hepatocytes (Disson et al., Gastroenterology, 2004) 10 + 4 10 + 5 10 + 6 10 + 7 +3 +21 +3 +21 10 + 3 10 + 4 10 + 5 10 + 6 ßGAL activity in the liver (RLU) ßGAL activity in the spleen (RLU) LIVER SPLEEN p<0.05 N.S. Ad   Gal 10 8  pfu/g D +3 Liver biopsy D +21 (sacrifice) Liver and spleen  removal  -gal histology + enzymatic assay
CHC viro-induits: mécanismes moléculaires? Lésions mitochondriales Surcharge en FER CHC inflammation fibrose Lésions ADN Coloration Perls (Fer) Nishina, Gastroenterology 2008 Chaîne de transport  électrons (1) VHC (capside) ROS Glutathion Ca2+ Coloration au dihydroethidium (ROS)
Towards mechanisms for HCV-induced carcinogenesis? Chronicity of infection LIVER CARCINOMA HCV expression Immune response Inhibition Increased cell division Up-regulation of cyclins and oncogenes DNA Damage ROS production Apoptosis evasion Down-regulation of pro-apoptotic protein
Stéatose micro-vésiculaire Lerat et al., Gastroenterology 2002. Non TG VHC TG VHC TG VHC TG
Stéatose micro-vésiculaire coloration Oil Red O analyse  in silico HCV TG NON TGM F M 0 5 10 15 20 25 12.5 ± 0.4 13 ± 0.8 14.4 ± 0.8 14.1 ± 0.3 n=12 n=12 n=10 n=7 p<0.001 % de l’aire total
HEPATOCELLULAR STEATOSIS Stéatose viro-induite: mécanismes moléculaires? de novo  TG  synthesis TG secretion default Increased TG  serum uptake TG degradation  default (oxydation) ER Stress ? VIRAL PROTEINS ? ? ? ?
Défaut d’exportation des triglycérides. La sécrétion des VLDL hépatiques chez la souris à jeun a été mesurée par l’augmentation des triglycérides plasmatiques (A et B) et de l’apolipoprotéine B (C) après inhibition de la lipoprotéine lipase par le triton WR1339 (B et C). Plasmatic TG (g/L) 0,4 0,6 0,8 1,0 1,2 A WT HCV-tg 14 14 n 4 6 8 10 12 14 Plasmatic TG (g/L) B WT HCV-tg 13 13 n 1 2 3 4 5 6 Plasmatic ApoB  (g/L) C WT HCV-tg 13 13 n
Inhibition de la « Microsomal Transfer Protein » WT HCV-tg 150 200 250 300 350 400 450 500 pmoles/100µg/4h Activité MTP
Stimulation de la lipogenèse Citrate  Acetyl-CoA ATP-CL Malonyl-CoA Acyl-CoAs TG Lipogenèse ACC FAS SCD1 * p=0.01 ** p=0.02 WT HCV-tg ARNm  (augmentation relative) n 11 FAS SCD1 0 2 4 9 EM ACC ACL 11 14 11 11 8 8 16 8 8 * ** ** ** p=0.02 RT-qPCR
Stimulation de la lipogenèse * p=0.01 FAS/GAPDH  WT HCV-tg 0.5 1.0 1.5 2.0 2.5 * 4 9 n Western Blot Citrate  Acetyl-CoA ATP-CL Malonyl-CoA Acyl-CoAs TG Lipogenèse ACC FAS SCD1
Régulation de la lipogenèse SREBP1c Domaine de transactivation (Noyau) SREBP1c  Précurseur (RE puis Golgi) Citrate  Acetyl-CoA ATP-CL Malonyl-CoA Acyl-CoAs TG Lipogenèse ACC FAS SCD1
SREBP1c Domaine de transactivation (Noyau) SREBP1c  Précurseur (RE puis Golgi) Régulation de la lipogenèse Citrate  Acetyl-CoA ATP-CL Malonyl-CoA Acyl-CoAs TG Lipogenèse ACC FAS SCD1 SREBP1c (clivé) SREBP1c (précurseur) Lamine A/C Actine noyau microsomes WT HCV-tg Western Blot
SREBP1c Domaine de transactivation (Noyau) SREBP1c  Précurseur (RE puis Golgi) Régulation de la lipogenèse ARNm (augmentation relative) n 14 16 0 1 2 3 4 WT HCV-tg RT-qPCR Citrate  Acetyl-CoA ATP-CL Malonyl-CoA Acyl-CoAs TG Lipogenèse ACC FAS SCD1
Lipogenèse induite par le stress du RE? SREBP1c Domaine de transactivation (Noyau) SREBP1c  Précurseur (RE puis Golgi) PERK ATF6 IRE-1 Stress RE RE Epissage ARNm XBP1 P-eiF2 α Arrêt traduction Dégradation protéique Citrate  Acetyl-CoA ATP-CL Malonyl-CoA Acyl-CoAs TG Lipogenèse ACC FAS SCD1
Lipogenèse induite par le stress du RE? SREBP1c Domaine de transactivation (Noyau) SREBP1c  Précurseur (RE puis Golgi) PERK ATF6 IRE-1 Stress RE RE Epissage ARNm XBP1 P-eiF2 α Arrêt traduction Dégradation protéique Citrate  Acetyl-CoA ATP-CL Malonyl-CoA Acyl-CoAs TG Lipogenèse ACC FAS SCD1 eIF2-P/eIF2 0 1 2 3 4 WT HCV-tg Western blot Non-épissé Epissé Non-Tg HCV Tg + ARNm XBP1 RT-PCR
Lipogenèse induite par le stress du RE? EDEM 7 4 PDI 11 8 WT HCV-tg CHOP TRB3 15 18 7 4 n GRP78 16 15 ARNm (augmenation relative) 0 2 4 6 12 RT-QPCR 1 2 3 0 4 9 Phospho-Perk Phospho-Perk / PERK Western Blot
Résumé PERK ATF6 IRE-1 Stress RE RE Epissage ARNm XBP1 P-eiF2 α Arrêt traduction Dégradation protéique SREBP1c Domaine de transactivation (Noyau) SREBP1c  Précurseur (RE puis Golgi) Citrate  Acetyl-CoA ATP-CL Malonyl-CoA Acyl-CoAs TG Lipogenèse ACC FAS SCD1 VLDL MTP Exportation TG ApoB Accumulation TG intracellulaires STEATOSE  HEPATIQUE = =
NO YES YES de novo  TG  synthesis TG secretion default Increased TG  serum uptake HEPATOCELLULAR STEATOSIS TG degradation  default (oxydation) ER Stress VIRAL PROTEINS ? ? Towards mechanisms for HCV-induced steatosis?
[object Object],[object Object],[object Object],[object Object],[object Object],[object Object],Conclusions
Problèmes inhérents aux modèles de transgenèse développés pour le VHC ,[object Object],[object Object],[object Object],[object Object],[object Object]
Perspectives ,[object Object],[object Object],[object Object],[object Object],[object Object]

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Lerat Du Hepatites Virales

  • 1. PATHOGEN È SE DES L É SIONS H É PATIQUES DU VHC : MOD É LISATION ANIMALE Hervé LERAT INSERM U955 Département de Virologie Moléculaire et Immunologie Physiopathologie et Thérapeutique des Hépatites Virales Chroniques (Pr. Pawlotsky) Hôpital Henri Mondor, Créteil, France.
  • 2.
  • 3.
  • 4.
  • 5. Kremsdorf et Brezillon, World J Gastroenterol 2007 Modèles d’infection (rongeurs)
  • 6. Kremsdorf et Brezillon, World J Gastroenterol 2007 Modèles d’infection (rongeurs)
  • 7. Kremsdorf et Brezillon, World J Gastroenterol 2007 Modèles d’infection (rongeurs)
  • 8.
  • 9.
  • 10. Modèles transgéniques pour le VHC Lésions hépatiques induites par VHC spécifiques CTL Inhibition voie FAS Wakita, 1998 Core-E1-E2-p7-NS2 Production ROS augmentée Korenaga, 2002 Core-E1-E2-p7 Dysplasie pour le mutant S99Q Wang, 2004 Core (mutants) Modulation de l’apoptose induite par la voie FAS Honda, 1999 Core-E1-E2 Modulation de l’apoptose induite par la voie FAS, IR (IRS-1) Honda, 2000 Core Stéatose , Inhibition de MTTP et VLDL sécrétion, IR CHC , stress oxydatif, stress RE Modulation de la voie de l’IFN, Moriya 1997 Core Core-E1-E2-p7 Core-E1-E2 Core-E1-E2 Core Core Core Protéine(s) virale(s) Stéatose , CHC, sensibilité au stress oxydatif Lerat, 2002 Steatose , CHC Naas, 2005 Co-carcinogène (+DEN) Inhibition of Fas-mediated apoptosis Kamegaya, 2005 Co-carcinogène (+DEN) Kamegaya, 2005 Co-carcinogène (+CCl4) Kato, 2003 Lymphome et adénomes hépatocellulaires Ishikawa, 2003 Principales pathologies Article princeps
  • 11. Modèles transgéniques pour le VHC (suite) Augmentation de l’incidence des CHC et de la Stéatose Keasler, Lerat et al. 2006 Polyprotéine entière + HbX Modulation de la voie TNFα Frelin, 2006 NS3-4A Exocrinopathie: Sialadenitis (glandes salivaires) Koike, 1997 E1-E2 Polyprotéine entière Polyprotéine entière NS5A Protéine(s) virale(s) Stéatose , nécrose Inhibition de la voie IFN (STAT) Blindenbacher, 2003 Stéatose , CHC , sensibilité au stress oxydatif inhibition voie FAS et réponse immune intra-hépatique Inhibition des protéines pro-apoptotiques CIDE-B et Bid CHC par surcharge en fer, inhibition de l’hepcidine Lerat, 2002 Modulation de la voie TNFα Majumder, 2003 Principales pathologies Article princeps
  • 12. Les modèles transgéniques FL-N/35 et S-N/863 (Lerat et al., Gastroenterology, 2002) micro-injections C57BL6J x C3H/HeJ X C57BL6J souris F0, ADN VHC + souris F1, ARN VHC + X C57BL6J jusqu’à F8 Foie S-N/863 SL-139 FL-N/35 S-N SV40 PolyA FL-N E1 E2 core NS4a NS3 NS4b NS5a NS5b NS2 p7 Promoteur albumine Promoteur albumine E1 E2 p7 SV40 PolyA core
  • 13. Carcinomes hépatocellulaires 1 cm 1 cm FL-N/35-170 FL-N/35-171 A Lerat et al., Gastroenterology 2002.
  • 15. CHC viro-induits: mécanismes moléculaires? Modulation du cycle cellulaire Incorporation de BrdU HCV TG Non TG ARNm Cyclin B1 MYC 1 3 5 7 9 mRNA (Fold increase) HCV TG Non TG HCV TG Non TG Détection PCNA HCV TG Non TG
  • 16. Down-regulation of apoptosis in HCV-transgenic mice % apoptotic hepatocytes 0 10 20 30 40 50 non TG HCV TG P<0. 05 in vivo P<0.01 ex vivo HCV TG Non TG Hoechst + - Fluorescence intensity 0 1 6 15 Non TG HCV TG activated Casp 3 (17kDa) Hours post FasL injection
  • 17. Down-regulation of pro-apoptotic proteins in HCV-transgenic mice (Disson et al., Gastroenterology, 2004) Bid GAPDH LIVER KIDNEY HCV tg - + - + Bid 24 kD Activated caspase 8 Bid-N 10 kD Bid-t 14 kD Cytochrome C + Apoptosis WT HCV tg 0 0.4 0.2 0.6 0.8 1 1.2 Bid protein level (AU) Bid N=13 N=10 p<0.01
  • 18. Towards a mechanism for HCV-induced carcinogenesis? Apoptotic signaling alteration in HCV mice HCV APOPTOSIS caspase 3 caspase 9 cytochrome C caspase 8 Fas FasL Bid Cell membrane mitochondria HCV CIDE-B DNA fragmentation A step toward cancer CIDE-B Annexin V HCV TG + - Erdtmann et al., J Biol Chem 2003.
  • 19. Persistence of adenovirus infection in HCV+ hepatocytes (Disson et al., Gastroenterology, 2004) Day 3 Day 21 non TG HCV TG Ad  Gal 10 8 pfu/g D +3 Liver biopsy D +21 (sacrifice) Liver and spleen removal  -gal histology + enzymatic assay
  • 20. Persistence of adenovirus infection in HCV+ hepatocytes (Disson et al., Gastroenterology, 2004) 10 + 4 10 + 5 10 + 6 10 + 7 +3 +21 +3 +21 10 + 3 10 + 4 10 + 5 10 + 6 ßGAL activity in the liver (RLU) ßGAL activity in the spleen (RLU) LIVER SPLEEN p<0.05 N.S. Ad  Gal 10 8 pfu/g D +3 Liver biopsy D +21 (sacrifice) Liver and spleen removal  -gal histology + enzymatic assay
  • 21. CHC viro-induits: mécanismes moléculaires? Lésions mitochondriales Surcharge en FER CHC inflammation fibrose Lésions ADN Coloration Perls (Fer) Nishina, Gastroenterology 2008 Chaîne de transport électrons (1) VHC (capside) ROS Glutathion Ca2+ Coloration au dihydroethidium (ROS)
  • 22. Towards mechanisms for HCV-induced carcinogenesis? Chronicity of infection LIVER CARCINOMA HCV expression Immune response Inhibition Increased cell division Up-regulation of cyclins and oncogenes DNA Damage ROS production Apoptosis evasion Down-regulation of pro-apoptotic protein
  • 23. Stéatose micro-vésiculaire Lerat et al., Gastroenterology 2002. Non TG VHC TG VHC TG VHC TG
  • 24. Stéatose micro-vésiculaire coloration Oil Red O analyse in silico HCV TG NON TGM F M 0 5 10 15 20 25 12.5 ± 0.4 13 ± 0.8 14.4 ± 0.8 14.1 ± 0.3 n=12 n=12 n=10 n=7 p<0.001 % de l’aire total
  • 25. HEPATOCELLULAR STEATOSIS Stéatose viro-induite: mécanismes moléculaires? de novo TG synthesis TG secretion default Increased TG serum uptake TG degradation default (oxydation) ER Stress ? VIRAL PROTEINS ? ? ? ?
  • 26. Défaut d’exportation des triglycérides. La sécrétion des VLDL hépatiques chez la souris à jeun a été mesurée par l’augmentation des triglycérides plasmatiques (A et B) et de l’apolipoprotéine B (C) après inhibition de la lipoprotéine lipase par le triton WR1339 (B et C). Plasmatic TG (g/L) 0,4 0,6 0,8 1,0 1,2 A WT HCV-tg 14 14 n 4 6 8 10 12 14 Plasmatic TG (g/L) B WT HCV-tg 13 13 n 1 2 3 4 5 6 Plasmatic ApoB (g/L) C WT HCV-tg 13 13 n
  • 27. Inhibition de la « Microsomal Transfer Protein » WT HCV-tg 150 200 250 300 350 400 450 500 pmoles/100µg/4h Activité MTP
  • 28. Stimulation de la lipogenèse Citrate Acetyl-CoA ATP-CL Malonyl-CoA Acyl-CoAs TG Lipogenèse ACC FAS SCD1 * p=0.01 ** p=0.02 WT HCV-tg ARNm (augmentation relative) n 11 FAS SCD1 0 2 4 9 EM ACC ACL 11 14 11 11 8 8 16 8 8 * ** ** ** p=0.02 RT-qPCR
  • 29. Stimulation de la lipogenèse * p=0.01 FAS/GAPDH WT HCV-tg 0.5 1.0 1.5 2.0 2.5 * 4 9 n Western Blot Citrate Acetyl-CoA ATP-CL Malonyl-CoA Acyl-CoAs TG Lipogenèse ACC FAS SCD1
  • 30. Régulation de la lipogenèse SREBP1c Domaine de transactivation (Noyau) SREBP1c Précurseur (RE puis Golgi) Citrate Acetyl-CoA ATP-CL Malonyl-CoA Acyl-CoAs TG Lipogenèse ACC FAS SCD1
  • 31. SREBP1c Domaine de transactivation (Noyau) SREBP1c Précurseur (RE puis Golgi) Régulation de la lipogenèse Citrate Acetyl-CoA ATP-CL Malonyl-CoA Acyl-CoAs TG Lipogenèse ACC FAS SCD1 SREBP1c (clivé) SREBP1c (précurseur) Lamine A/C Actine noyau microsomes WT HCV-tg Western Blot
  • 32. SREBP1c Domaine de transactivation (Noyau) SREBP1c Précurseur (RE puis Golgi) Régulation de la lipogenèse ARNm (augmentation relative) n 14 16 0 1 2 3 4 WT HCV-tg RT-qPCR Citrate Acetyl-CoA ATP-CL Malonyl-CoA Acyl-CoAs TG Lipogenèse ACC FAS SCD1
  • 33. Lipogenèse induite par le stress du RE? SREBP1c Domaine de transactivation (Noyau) SREBP1c Précurseur (RE puis Golgi) PERK ATF6 IRE-1 Stress RE RE Epissage ARNm XBP1 P-eiF2 α Arrêt traduction Dégradation protéique Citrate Acetyl-CoA ATP-CL Malonyl-CoA Acyl-CoAs TG Lipogenèse ACC FAS SCD1
  • 34. Lipogenèse induite par le stress du RE? SREBP1c Domaine de transactivation (Noyau) SREBP1c Précurseur (RE puis Golgi) PERK ATF6 IRE-1 Stress RE RE Epissage ARNm XBP1 P-eiF2 α Arrêt traduction Dégradation protéique Citrate Acetyl-CoA ATP-CL Malonyl-CoA Acyl-CoAs TG Lipogenèse ACC FAS SCD1 eIF2-P/eIF2 0 1 2 3 4 WT HCV-tg Western blot Non-épissé Epissé Non-Tg HCV Tg + ARNm XBP1 RT-PCR
  • 35. Lipogenèse induite par le stress du RE? EDEM 7 4 PDI 11 8 WT HCV-tg CHOP TRB3 15 18 7 4 n GRP78 16 15 ARNm (augmenation relative) 0 2 4 6 12 RT-QPCR 1 2 3 0 4 9 Phospho-Perk Phospho-Perk / PERK Western Blot
  • 36. Résumé PERK ATF6 IRE-1 Stress RE RE Epissage ARNm XBP1 P-eiF2 α Arrêt traduction Dégradation protéique SREBP1c Domaine de transactivation (Noyau) SREBP1c Précurseur (RE puis Golgi) Citrate Acetyl-CoA ATP-CL Malonyl-CoA Acyl-CoAs TG Lipogenèse ACC FAS SCD1 VLDL MTP Exportation TG ApoB Accumulation TG intracellulaires STEATOSE HEPATIQUE = =
  • 37. NO YES YES de novo TG synthesis TG secretion default Increased TG serum uptake HEPATOCELLULAR STEATOSIS TG degradation default (oxydation) ER Stress VIRAL PROTEINS ? ? Towards mechanisms for HCV-induced steatosis?
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